摘要
1 绪论
1.1 鹿茸的概述
1.2 鹿茸活性成分国内外研究现状
1.3 鹿茸活性多肽的研究现状
1.3.1 活性多肽的简介
1.3.2 鹿茸活性多肽的功能介绍
1.3.3 鹿茸活性多肽的研究进展
1.4 鹿茸生物活性肽制备、分离纯化及分析方法
1.4.1 鹿茸活性多肽的制备方法
1.4.2 鹿茸活性多肽的分离纯化方法
1.4.3 鹿茸活性多肽的分析方法
1.5 研究的目的及意义
1.6 研究的主要内容
2 双酶法制备马鹿茸降血糖肽研究
2.1 引言
2.2 材料与仪器
2.2.1 材料
2.2.2 仪器和设备
2.3 实验方法
2.3.1 马鹿茸冻干粉的制备
2.3.2 蛋白酶酶活力测定
2.3.3 蛋白酶的选择方法
2.3.4 双酶水解实验
2.3.5 水解度测定
2.3.6 蛋白质回收率测定
2.3.8 数据处理
2.4 结果与分析
2.4.1 蛋白酶酶活力测定结果
2.4.2 马鹿茸总肽键数htot值的确定
2.4.3 蛋白酶的选择
2.4.4 酶解顺序的测定
2.4.5 双酶水解实验
2.4.6 双酶水解正交实验
2.4.7 不同浓度双酶酶解终产物对α-葡萄糖苷酶抑制率的影响结果
2.5 本章小结
3 马鹿茸降血糖肽的分离纯化研究
3.1 引言
3.2 材料与仪器
3.2.1 材料
3.2.2 仪器和设备
3.3 实验方法
3.3.1 马鹿茸降血糖肽超滤
3.3.2 马鹿茸降血糖肽凝胶色谱分离
3.3.3 数据处理
3.4 结果与分析
3.4.1 超滤工艺参数对膜通量的影响
3.4.2 超滤离心管的清洗
3.4.3 超滤后两组分对α-葡萄糖苷酶抑制率的影响
3.4.4 超滤后小分子多肽的紫外最大吸收波长的测定
3.4.5 Sephadex LH-20凝胶色谱分离条件优化
3.5 本章小结
4 马鹿茸降血糖肽对HepG2细胞和RINm5F细胞影响的研究
4.1 引言
4.2 材料与仪器
4.2.1 材料
4.2.2 仪器和设备
4.3 实验方法
4.3.1 细胞复苏
4.3.2 细胞培养
4.3.3 HepG2细胞胰岛素抵抗模型的建立
4.3.4 HepG2细胞的葡萄糖消耗作用及细胞增殖作用
4.3.5 胰岛β细胞增殖作用
4.4.2 HepG2细胞的葡萄糖消耗及细胞增殖作用
4.4.3 胰岛β细胞增殖作用
4.4.4 STZ损伤的胰岛β细胞修复作用
4.5 本章小结
5 马鹿茸降血糖肽分子量测定及氨基酸序列分析
5.1 引言
5.2 材料与仪器
5.2.1 材料
5.2.2 仪器和设备
5.3 实验方法
5.3.1 Tricine-SDS-PAGE凝胶电泳
5.3.2 马鹿茸降血糖肽纯化组分PⅢ的氨基酸序列测定
5.4 结果与分析
5.4.2 马鹿茸降血糖肽纯化组分PⅢ的氨基酸序列
5.5 本章小结
结论
参考文献
攻读学位期间发表的学术论文
致谢
声明
东北林业大学;