Early life history studies of Yellowfin tuna, Thunnus albacares. I. Food selection of Yellowfin tuna, Thunnus albacares, larvae reared in the laboratory. II. Age validation and growth of Yellowfin tuna, Thunnus albacares, larvae reared in the laboratory

摘要

English:udFood selection of first-feeding yellowfin tuna larvae was studied in the laboratory during Octoberud1992. The larvae were hatched from eggs obtained by natural spawning of yellowfin adults held in seaudpens adjacent to Ishigaki Island, Okinawa Prefecture, Japan. The larvae were fed mixed-prey assemblagesudconsisting of size-graded wild zooplankton and cultured rotifers.udYellowfin larvae were found to be selective feeders during the first four days of feeding. Copepodudnauplii dominated the diet numerically, by frequency of occurrence and by weight. The relative importanceudof juvenile and adult copepods (mostly cyclopoids) in the diet increased over the 4-day period.udRotifers, although they comprised 31 to 40 percent of the available forage, comprised less than 2.1 percentudof the diet numerically. Prey selection indices were calculated taking into account the relativeudabundances of prey, the swimming speeds of yellowfin larvae and their prey, and the microscale influenceudof turbulence on encounter rates. Yellowfin selected for copepod nauplii and against rotifers, andudconsumed juvenile and adult copepods in proportion to their abundances.udYellowfin larvae may select copepod nauplii and cyclopoid juveniles and adults based on the sizeudand discontinuous swimming motion of these prey. Rotifers may not have been selected because theyudwere larger or because they exhibit a smooth swimming pattern. The best initial diet for the culture ofudyellowfin larvae may be copepod nauplii and cyclopoid juveniles and adults, due to the size, swimmingudmotion, and nutritional content of these prey. If rotifers alone are fed to yellowfin larvae, the rotifersudshould be enriched with a nutritional supplement that is high in unsaturated fatty acids.udMouth size of yellowfin larvae increases rapidly within the first few days of feeding, which minimizesudlimitations on feeding due to prey size. Although yellowfin larvae initiate feeding on relativelyudsmall prey, they rapidly acquire the ability to add relatively large, rare prey items to the diet. This modeudof feeding may be adaptive for the development of yellowfin larvae, which have high metabolic ratesudand live in warm mixed-layer habitats of the tropical and subtropical Pacific. Our analysis also indicatesuda strong potential for the influence of microscale turbulence on the feeding success of yellowfin larvae.ud---udExperiments designed to validate the periodicity of otolith increments and to examine growthudrates of yellowfin tuna larvae were conducted at the Japan Sea-Farming Association’s (JASFA) YaeyamaudExperimental Station, Ishigaki Island, Japan, in September 1992. Larvae were reared from eggsudspawned by captive yellowfin enclosed in a sea pen in the bay adjacent to Yaeyama Station. Resultsudindicate that the first increment is deposited within 12 hours of hatching in the otoliths of yellowfin larvae,udand subsequent growth increments are formed dailyollowing the first 24 hours after hatching rudlarvae up to 16 days of age. Somatic and otolith gwth ras were examined and compared for yolksacuda first-feeding larvae reared at constant water tempatures of 26�and 29°C. Despite the moreudrapid develo of larvae reared at 29°C, growth rates were nnificaifferent between theudtwo treatments. Howeve to poor survival after the first four days, it was ssible to examineudgrowth rates beyond the onset of first feeding, when growth differences may become more apparent.udSomatic and otolith growth were also examined for larvae reared at ambient bay water temperaturesudduring the first 24 days after hatching. timates of laboratory growth rates were come toudpreviously reported values for laboratory-reared yelllarvae of a similar age range, but were lowerudthan growth rates reported for field-collected larvae. The discrepancy between laboratory and fieldudgrowth rates may be associated with suboptimal growth conditions in the laboratory.udSpanish:udDurante octubre de 1992 se estudió en el laboratorio la seleccalimento por larvaúnudaleta amarillmera alimentación. Las larvas provinieron de huevos obtenidosel desove naturaludde aletas amarillas adultos mantenidos en corrales marinos adyacentes a la Isla Ishigaki, Prefectura deudOkinawa (Japón). Se alimentó a las larvas con presas mixtas de zooplancton silvestre clasificado porudtamaño y rotíferos cultivados.udSe descubrió que las larvas de aleta amarilla se alimentan de forma selectiva durante los cuatroudprimeros días de alimentación. Los nauplios de copépodo predominaron en la dieta en número, por frecuenciaudde ocurrencia y por peso. La importancia relativa de copépodos juveniles y adultos (principalmenteudciclopoides) en la dieta aumentó en el transcurso del período de 4 días. Los rotíferos, pese a que formabanuddel 31 al 40% del alimento disponible, respondieron de menos del 2,1% de la dieta en número. Se calcularonudíndices de selección de presas tomando en cuenta la abundancia relativa de las presas, la velocidad de nataciónudde las larvas de aleta amarilla y de sus presas, y la influencia a microescala de la turbulencia sobreudlas tasas de encuentro. Los aletas amarillas seleccionaron a favor de nauplios de copépodo y en contra deudlos rotíferos, y consumieron copépodos juveniles y adultos en proporción a su abundancia.udEs posible que las larvas de aleta amarilla seleccionen nauplios de copépodo y ciclopoides juvenilesudy adultos con base en el tamaño y movimiento de natación discontinuo de estas presas. Es posibleudque no se hayan seleccionado los rotíferos a raíz de su mayor tamaño o su patrón continuo de natación.udEs posible que la mejor dieta inicial para el cultivo de larvas de aleta amarilla sea nauplios deudcopépodo y ciclopoides juveniles y adultos, debido al tamaño, movimiento de natación, y contenidoudnutritivo de estas presas. Si se alimenta a las larvas de aleta amarilla con rotíferos solamente, se deberíaudenriquecerlos con un suplemento nutritivo rico en ácidos grasos no saturados.udEl tamaño de la boca de las larvas de aleta amarilla aumenta rápidamente en los primeros pocosuddías de alimentación, reduciendo la limitación de la alimentación debida al tamaño de la presa. Pese audque las larvas de aleta amarilla inician su alimentación con presas relativamente pequeñas, se hacen rápidamenteudcapaces de añadir presas relativamente grandes y poco comunes a la dieta. Este modo de alimentaciónudpodría ser adaptivo para el desarrollo de larvas de aleta amarilla, que tienen tasa metabólicasudaltas y viven en hábitats cálidos en la capa de mezcla en el Pacífico tropical y subtropical. Nuestroudanálisis indica también que la influencia de turbulencia a microescala es potencialmente importanteudpara el éxito de la alimentación de las larvas de aleta amarilla.ud---udEn septiembre de 1992 se realizaron en la Estación Experimental Yaeyama de la Japan Sea-udFarming Association (JASFA) en la Isla Ishigaki (Japón) experimentos diseñados para validar la periodicidadudde los incrementos en los otolitos y para examinar las tasas de crecimiento de las larvas deudatún aleta amarilla. Se criaron las larvas de huevos puestos por aletas amarillas cautivos en un corraludmarino en la bahía adyacente a la Estación Yaeyama. Los resultados indican que el primer incrementoudes depositado menos de 12 horas después de la eclosión en los otolitos de las larvas de aleta amarilla,udy que los incrementos de crecimiento subsiguientes son formados a diario a partir de las primeras 24udhoras después de la eclosión en larvas de hasta 16 días de edad. Se examinaron y compararon las tasasudde crecimiento somático y de los otolitos en larvas en las etapas de saco vitelino y de primera alimentaciónudcriadas en aguas de temperatura constante entre 26°C y 29°C. A pesar del desarrollo másudrápido de las larvas criadas a 29°C, las tasas de crecimiento no fueron significativamente diferentesudentre los dos tratamientos. Debido a la mala supervivencia a partir de los cuatro primeros días, no fueudposibación, uando lasuddiferencias en el crecimiento podrían hacerse más aparentes. Se examinó también el crecimientoudsomático y de los otolitos para larvas criadas en temperaturas de agua ambiental en la bahía durante losud24 días inmediatamente después de la eclosión. Nuestras estimaciones de las tasas de crecimiento enudel laboratorio fueron comparables a valores reportados previamente para larvas de aleta amarilla deudedades similares criadas en el laboratorio, pero más bajas que las tasas de crecimiento reportadas paraudlarvas capturadas en el mar. La discrepancia entre las tasas de crecimiento en el laboratorio y el marudpodría estar asociada con condiciones subóptimas de crecimiento en el lab