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【6h】

ZEA对SC细胞周期分布的影响及自噬的作用

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目录

摘要

缩略语表

第一章 文献综述

1 玉米赤霉烯酮的理化性质

2 玉米赤霉烯酮的毒性研究进展

2.1 玉米赤霉烯酮的生殖与发育毒性

2.2 玉米赤霉烯酮的免疫毒性

2.3 玉米赤霉烯酮的致瘤性

2.4 玉米赤霉烯酮的肝毒性与肾毒性

3 玉米赤霉烯酮的生殖毒性机理研究进展

3.1 激素介导效应

3.2 诱导细胞凋亡

3.3 氧化应激

4 细胞周期及其主要调控因子

4.1 细胞周期

4.2 细胞周期的主要调控因子

5 自噬

5.1 自噬的分类

5.2 自噬发生的过程

5.3 自噬的调控

5.4 PI3K/Akt/m TOR信号转导通路

6 研究目的及意义

第二章 ZEA对SC细胞周期分布的影响

1 材料与方法

1.1 试验动物

1.2 主要试剂与仪器

1.3 溶液的配制

1.4 SC细胞分离与培养

1.5 CCK-8法检测ZEA对SC细胞活率的影响

1.6 流式细胞术分析ZEA对SC细胞周期分布的影响

1.7 免疫荧光方法检测磷酸化组蛋白H3(p-Histone H3)的表达情况

1.8 Western Blot检测细胞周期相关蛋白的表达

1.9 数据的统计与分析

2 结果

2.1 ZEA对SC细胞活率的影响

2.2 ZEA对SC细胞周期的影响

2.3 ZEA对细胞周期G2期标志性蛋白表达的影响

2.4 ZEA对SC细胞磷酸化组蛋白H3(p-Histone H3)表达的影响

3 讨论

第三章 ZEA对SC细胞自噬的影响

1 材料与方法

1.1 试验动物

1.2 主要试剂与仪器

1.3 透射电镜检测自噬体

1.4 MDC染色检测自噬囊泡

1.5 免疫荧光法观察SC细胞中自噬LC3聚点

1.6 Western-blot检测自噬相关蛋白LC3等的表达

1.7 数据的统计与分析

2 结果

2.1 ZEA染毒后SC细胞自噬体形成情况

2.2 ZEA染毒后SC细胞自噬囊泡形成情况

2.3 ZEA诱导SC细胞中自噬LC3聚点的形成

2.4 ZEA对LC3 Ⅱ、Beclin-1、p62等自噬体标志性蛋白的影响

2.5 ZEA诱导的自噬流检测

3 讨论

第四章 PI3K/Akt/m TOR信号通路在ZEA诱导SC细胞自噬中的作用

1 材料与方法

1.1 试验动物

1.2 主要试剂与仪器

1.4 免疫荧光检测PI3K抑制剂处理SC后自噬LC3聚点

1.5 统计学分析

2 结果

2.2 PI3K/Akt/m TOR信号通路在ZEA诱导SC细胞中自噬LC3聚点的作用

2.3 PI3K/Akt/mTOR信号通路对p-Akt/Akt、P-mTOR/mTOR、LC3Ⅱ/LC3Ⅰ、p62表达的影响

3 讨论

第五章 ZEA诱导的自噬在SC细胞周期分布中作用

1.5 流式细胞术分析PI3K/Akt/m TOR信号通路对细胞周期的影响

1.6 Western Blot检测细胞周期相关蛋白的表达

1.7 数据的统计与分析

2 结果

2.1 自噬在ZEA对SC细胞周期影响中的作用

2.2 自噬对ZEA诱导SC细胞周期蛋白表达的影响

2.3 PI3K/Akt/m TOR通路在ZEA对SC细胞周期影响中的作用

2.4 PI3K抑制剂对G2/M期标志性蛋白表达的影响

3 讨论

全文结论

致谢

攻读学位期间发表论文

参考文献

声明

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摘要

玉米赤霉烯酮(ZEA)又称F-2毒素,该毒素广泛存在于动物饲料以及人们的食粮中,其中ZEA的生殖发育毒性、免疫毒性对畜牧业的发展和全人类的健康具有潜在威胁。近年来,ZEA的雄性生殖毒性越来越受到人们的关注,但到目前为止,有关ZEA雄性生殖毒性及其毒性机理认识与研究仍存在不足。众所周知,睾丸支持细胞(Sertolicells,SC)的数量不仅为成年雄性动物睾丸的发育提供营养物质,还影响其生精能力,SC细胞在精子发生过程中起着不可替代的作用。本试验通过建立体外模型,利用透射电镜、流式细胞术和western-blot等技术,研究了ZEA对SC细胞周期分布的影响及自噬的作用,旨为揭示ZEA雄性生殖毒性的机理。
  1、ZEA对SC细胞周期分布的影响。以原代大鼠SC细胞为材料,利用CCK-8法检测了ZEA对SC细胞活率的影响并筛选出小于40μmol/L的ZEA为使用浓度,随后选取不同浓度ZEA(0,0.1、1、10、20、30μmol/L)处理24h,利用流式细胞术、免疫荧光技术和Western-blot等细胞周期分布及细胞周期相关蛋白的影响。结果显示:相比较与对照组,随着ZEA浓度的升高,ZEA处理组SC细胞活力均受到显著或极显著性抑制,(P<0.05或P<0.01);当ZEA浓度高于10μmol/L时,G0/G1期比例显著下降(P<0.05)、G2/M期的比例极显著升高(P<0.01);10μmol/L ZEA及以上剂量组均极显著上调p-Cdc2/Cdc2、下调CyclinB1、Cdc25B、p-Histone H3等蛋白表达水平(P<0.01);免疫荧光法检测的细胞有丝分裂期的Maker蛋白p-Histone H3表达的结果与免疫印迹结果一致。结果表明:ZEA可以通过影响G2期调控点关键因子——CyclinB1的表达、p-Cdc2/Cdc2激酶和Cdc25B磷酸酶的活性来抑制体外培养中SC细胞的增殖,并将细胞周期阻滞在G2期。
  2、ZEA对SC细胞自噬的影响。用不同浓度的ZEA(0,0.1、1、10、20、30μmol/L)处理大鼠原代SC细胞24h后,免疫荧光法、透射电镜、Western-blot等技术检测了ZEA对SC细胞细胞自噬水平诱导的影响。结果显示:20μmol/L的ZEA处理SC细胞可导致细胞胞质内自噬体形成;随着ZEA浓度的升高,SC细胞内LC3聚点数增多,各染毒组均较对照组有极显著差异(P<0.01);用单丹磺酰尸胺(MDC)染色法观察晚期自噬溶酶体的变化,发现各染毒组细胞内酸性囊泡的数目均较对照组极显著增多(P<0.01),且呈剂量依赖性;与对照组相比,p62蛋白表达显著下降,当ZEA的浓度达到10μmol/L时Atg5的表达量逐渐减少,各染毒组均较对照组有显著或极显著差别(P<0.05或P<0.01);各染毒组细胞自噬相关蛋白LC3Ⅱ、Beclin-1、Atg7的表达显著升高(P<0.05或P<0.01)。为进一步检测细胞自噬流的状态,试验使用自噬晚期抑制剂巴弗洛霉素A1(bafilomycin A1,Baf A1)刺激细胞,结果显示,Bafilomycin A1+20μmol/LZEA组LC3蛋白表达量较单独Bafilomycin A1处理组的表达量呈差异极显著升高(P<0.01),但泛素化蛋白p62的降解较ZEA单独处理组呈差异极显著降低(P<0.01)。结果表明,ZEA对SC细胞产生细胞毒性,并诱导SC细胞发生自噬。
  3、PI3K/Akt/mTOR信号通路在ZEA诱导SC细胞自噬中的作用。用不同浓度的ZEA(0、0.1、1、10、20μmol/L)的ZEA处理大鼠原代SC细胞24h,利用免疫印迹法检测PI3K/Akt/mTOR通路中关键蛋白的磷酸化水平;为进一步探究该信号通路在ZEA在SC细胞自噬诱导中的作用,随后加入PI3K通路抑制剂LY294002(10μmol/L)与20μmol/LZEA单独或联合处理细胞24h,通过western-blot、免疫荧光法检测Akt、m TOR蛋白磷酸化水平和LC3含量的变化,以及细胞内LC3的聚点现象。结果显示:随着ZEA浓度的上升,PI3K、mTOR、P70S6K、GSK2β蛋白的磷酸化水平逐渐下降,20μmol/L时各蛋白磷酸化水平较对照组有显著或极显著差异(P<0.05或P<0.01);与ZEA组比较,LY294002与ZEA联合组细胞Akt、mTOR蛋白磷酸化水平极显著下降(P<0.01),LC3Ⅱ表达量呈极显著升高(P<0.01),细胞内LC3聚点数量显著升高,荧光强度显著增强。结果表明:ZEA可以通过启动并下调PI3K/AKT/mTOR信号通路,该信号通路的启动在ZEA诱导SC细胞自噬中起负调控作用。
  4、ZEA诱导的自噬以及PI3K/AKT/mTOR信号通路的启动在SC细胞周期分布中作用。为探讨自噬在ZEA对SC细胞周期影响中的作用及自噬影响ZEA对SC细胞周期分布的具体机制,试验分别采用ZEA(20μmol/L)与自噬抑制剂-氯喹(CQ)、促进剂-雷帕霉素(RAPA)、以及自噬相关通路PI3K通路抑制剂(LY294002)联合处理SC细胞后,利用流式细胞术、免疫荧光技术和Western-blot等技术检测了细胞周期分布、周期相关蛋白等的表达。结果显示:与ZEA组相比,CQ+ZEA组细胞周期的G2/M期的比例降低(P<0.05),RAPA+ZEA组细胞周期的G2/M期的比例升高(P<0.05);CQ+ZEA组CyclinB1、Cdc2/p-Cdc2等蛋白的表达量降低(P<0.05),RAPA+ZEA组显著升高(P<0.05)。与ZEA组相比,LY294002+ZEA组细胞G2/M期阻滞的比例降低(P<0.05),细胞周期关键激酶Cdc2/p-Cdc2的活性增强(P<0.05)。结果表明,启动并下调自噬相关通路PI3K/Akt/mTOR后,可以部分逆转ZEA诱导SC细胞G2/M期的阻滞。
  结论认为,ZEA能抑制细胞增殖,影响SC细胞的周期的分布,并诱导G2期阻滞;在一定浓度范围内,ZEA可以通过启动并下调PI3K/AKT/mTOR信号通路诱导细胞自噬的发生,从而部分逆转ZEA诱导SC细胞G2/M期的阻滞。

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