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应用免疫磁珠分离及LAMP技术快速检测配方奶粉中克罗诺杆菌

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摘要

总体技术路线图

前言

第一章 免疫磁珠捕获法检测克罗诺杆菌的模拟研究

1.1 材料

1.2 试验方法

1.3 结果

1.4 讨论

1.5 小结

第二章 克罗诺杆菌免疫磁珠分离及LAMP快速检测方法的建立

2.1 材料

2.2 试验方法

2.3 结果

2.4 讨论

2.5 小结

第三章 IMS-LAMP方法检测配方奶粉中克罗诺杆菌的初步应用

3.1 材料

3.2 实验流程

3.3 结果

3.4 讨论

3.5 小结

全文总结

参考文献

攻读学位期间成果

附录

中英文缩略词表

致谢

声明

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摘要

背景和目的:克罗诺杆菌(Cronobacter spp.)是一种重要的新型食源性致病菌,是囊括了原来所有阪崎肠杆菌(Enterobacter sakazakii)的新属,该属的细菌是人和动物肠道内寄生的一种有周生鞭毛,能运动,兼性厌氧的革兰阴性无芽孢杆菌。该菌呈世界性分布,主要通过婴幼儿配方奶粉经消化道感染儿童,引起新生儿脑膜炎、败血症和坏死性结肠炎,甚或遗留神经系统后遗症或导致死亡。 自1961年首次报道由克罗诺杆菌引起的两例脑膜炎病例,随后在全球范围内相继出现了由该菌引起的疾病报道。2001年4月,在美国某医院新生儿重症监护室一早产儿发烧、心动过速,脑脊液培养发现克罗诺杆菌,诊断为脑膜炎,用抗生素治疗无效,9d后死亡。扩大检查该院49名婴儿的粪便和尿液,发现10人为阪崎肠杆菌阳性,其原因是使用了某批Portagen的婴儿配方奶粉。而且在该批奶粉中也检查出了克罗诺杆菌,结果导致Portagen婴儿配方奶粉于2002年4月被召回。1998年,在比利时有12名婴儿因哺喂同一牌号的婴儿配方奶粉而发生小肠结肠炎坏死。在这些婴儿的粪便和该批奶粉中同时分离出克罗诺杆菌,当该批奶粉停用后,未有新的病例发生。2004年安徽阜阳劣质婴儿配方奶粉事件引起我国政府的高度重视,并且首次从87份婴儿配方奶粉中分离到11株该菌,检出率达12.16%。尽管专家目前认为是由于奶粉的营养比例问题导致小孩畸形和死亡,但是从生病小孩的临床症状看,小孩头部肿大和反应迟钝与克罗诺杆菌感染的症状相似,可能该菌在致病中起到重要作用。近期研究表明,克罗诺杆菌是一种广泛存在的微生物,不仅能够存在于污染的食品和食品工厂当中,而且在几乎所有的环境中均能够分离得到。到目前为止已从奶酪、猪肉、蔬菜、谷类、草药、香辛料,和经过UHT灭菌的牛奶等食品中分离出克罗诺杆菌。克罗诺杆菌致死率为10~80%,但是作为一种条件性致病菌,对新生儿具有更为严重的危害性,其严重威胁到公共卫生安全和人类健康。 目前,针对克罗诺杆菌的检测方法主要有FDA推荐的分离培养、生化及血清学鉴定、免疫学方法和PCR。传统的检测和定量方法主要是采用选择性培养基,通过增菌和选择培养来实现,但其中主要存在三大问题,一是通常情况下,致病菌在食品检测样品中的量很少,在样品处理和检测中容易出现人为的差错;二是非常繁琐和耗时,检测速度慢,通常需要6d以上;三是许多致病菌在常规检测中属难培养或不可培养微生物,灵敏度较低;免疫学方法的特异性和灵敏度均较低;PCR法敏感、准确、快速,可替代传统检测方法,但由于需要昂贵的仪器设备、繁琐的电泳过程,以及对检测人员较高的技术要求,而使其难以在基层单位推广和普及。因此,建立一种特异富集、快速、简便、准确的检测方法,对克罗诺杆菌感染的流行病学调查和防治工作十分重要。 1、样品富集技术——免疫磁珠分离法(immunomagnetic separation,IMS)生物样品往往是复杂的混合物,除少数特殊样品外,不能直接用于检测,因此需要进行样品前处理这一重要步骤。传统的样品处理方法是从样品中分离目的微生物,通常使用选择性培养基来获得单个纯化的目的微生物。如果对于受到损伤的和热应激微生物还需经过增菌培养,增菌过程应包括前增菌、选择性增菌和后增菌,因此从样品中检测病原微生物需很长的时间,而实际检测时间主要是等待增菌的时间,这样就远远不能适应快速检测的需要。由于免疫磁珠分离法能特异性吸附目的细菌,受到了不少学者的关注。 免疫磁珠是由直径3~5微米,有一定磁性,且分散度良好的微珠经不同单克隆抗体包被而成的颗粒,而免疫磁珠分离方法是于70年代中期发展起来的一项免疫学技术,其分离原理是通过磁珠表面包被的细胞特异性抗体与细胞表面标记分子间特异结合,使抗原阳性细胞与抗原阴性细胞相分离,具备了固相化试剂特有的优点以及免疫学反应的高度专一性,被广泛应用于多种血液细胞的分离,蛋白质的纯化,以及对食品、水、生物样品、环境等标本中病原微生物的分离和检测工作中,显示出良好的开发应用前景。 IMS用于微生物检测领域的原理是:用特异性抗体包被在磁珠表面来捕获检样(或增菌液)中的目标微生物,然后在磁场的作用下被吸附沉淀,使菌株与影响和干扰检测灵敏度的检样残渣和其他杂菌分离开,起到浓缩作用,从而提高检测的灵敏度和检出率。IMS方法操作简便,只需在检测样品或者增菌液中加入免疫磁珠,室温振荡混匀一定的时间后,在磁场作用下反复用缓冲液洗涤即可,捕获目标菌的免疫磁珠不用与目标菌分离,直接进行后续实验。具有分离速度快、效率高、可重复性好;操作简单,不需要昂贵的仪器设备;不影响被分离细胞或其它生物材料的生物学性状和功能等优点,从而在微生物检测方面具有很大的优势。 2、快速检测技术——环介导等温扩增(loop-mediated isothermalamplification,LAMP)环介导等温扩增(LAMP)是日本学者Notomi等建立的一种新的核酸等温扩增技术,其原理是,针对靶基因的6或8个区域设计4或6种特异性引物,利用一种链置换DNA聚合酶(Bst DNA polymerase)在等温条件(约65℃)保温几十分钟,即可完成核酸扩增反应。LAMP能够高效、快速、灵敏、特异地扩增靶DNA,操作简便,成本低,适于大规模样品的检测和基层单位推广应用,现已广泛应用于疾病诊断、病原微生物检测以及动物胚胎的性别鉴定等。 因此,本实验将结合上述两种技术,采用免疫磁珠分离富集样品中克罗诺杆菌,建立其快速的LAMP检测技术。首先建立克罗诺杆菌免疫磁珠特异性捕获技术,并进行磁珠模拟研究。然后针对克罗诺杆菌的特异性外膜蛋白OmpA基因,设计内外引物,运用LAMP技术检测被富集的克罗诺杆菌,建立用于克罗诺杆菌快速灵敏的IMS-LAMP检测方法。并利用已经建立的免疫磁珠分离乳制品中克罗诺杆菌的方法,对人工污染克罗诺杆菌的乳制品进行LAMP检测,同时采集209份市售配方奶粉进行检测,结果与传统国标法进行比较。 方法: 1、建立克罗诺杆菌免疫磁珠特异性捕获技术,并进行磁珠模拟研究。制备克罗诺杆菌(ATCC29544、ATCC51329、奶粉分离株)、非目标菌(大肠杆菌、副溶血性弧菌、痢疾志贺菌、普通变形杆菌、沙门菌、金黄色葡萄球菌等)的菌悬液,利用克罗诺杆菌特异性免疫磁珠进行捕获,接种平板后进行菌落计数,并计算免疫磁珠的特异性吸附效率。同时设计干扰试验,在含有104cfu/ml的大肠杆菌菌悬液中,加入不同浓度的目标菌,用磁珠进行捕获,评估免疫磁珠的特异性富集效率。在经3h和6h预增菌的含有已知量目标菌的奶粉模拟标本及未增菌的粪便模拟标本中,分别加入磁珠进行捕获,评估基于免疫磁珠捕获法的克罗诺杆菌检测流程的可行性。 2、根据克罗诺杆菌外膜蛋白ompA基因序列(Accession number: DQ000206)的保守区,设计出特异的LAMP引物,对各扩增条件进行优化,建立25μL的LAMP反应体系。 3、以20株实验菌株基因组DNA为模板,建立LAMP与PCR法检测方法,并对比两者的特异性;将过夜培养的克罗诺杆菌ATCC29544标准菌株进行稀释,分别进行LAMP和PCR扩增,比较两者的灵敏度。 4、模拟样品的检测:购买奶粉样品(克罗诺杆菌阴性)3份,分别用ATCC29544进行接种,随后做LAMP和PCR检测,并与国标法进行比较。 5、收集国产婴幼儿配方奶粉209份,通过免疫磁珠富集,IMS-LAMP技术检测,并与国标法进行比较。 结果: 1、菌落计数表明,制备的克罗诺杆菌免疫磁珠对克罗诺杆菌ATCC29544、ATCC51329和实验室分离株的捕获效率均超过30%,对6种非目标菌的非特异性吸附效率<3%。干扰试验结果显示,与常规商接平板接种法相比,免疫磁珠捕获法的敏感性提高了约100倍;奶粉和粪便模拟试验的结果显示,免疫磁珠捕获法的最低检测限分别可达101 cfu/25 g和101 cfu/mL,并提高了标本中目标菌的检出率。 2、成功建立优化的克罗诺杆菌LAMP反应体系,具体为(25μL):6mmol/LMgCl2,0.6mmol/L dNTPs,0.8mol/L甜菜碱,1.6μmo/L内引物,0.4μmo/L外引物,1μL的Bst DNA聚合酶(8U),10×Thermopol buffer以及2μL模板;最佳反应条件:58℃,反应60min。经过免疫磁珠富集后,LAMP法检出克罗诺杆菌ATCC29544的特异性较PCR法高,LAMP的检测限为101 cfu/ml。 3、对于模拟样品,LAMP和PCR与国标检测结果一致,均可检出3份模拟克罗诺杆菌阳性样品。 4、对209份实际婴幼儿配方奶粉进行检测,其中IMS-LAMP检测为16份阳性,国标法检测15份阳性,无统计学差异,因此其检测结果一致、可信,但大大缩短了检测时间。 结论:本研究建立克罗诺杆菌免疫磁珠特异性捕获技术,同时以克罗诺杆菌的外膜蛋白OmpA基因序列作为靶序列,设计一套LAMP引物进行扩增,并对各反应条件进行优化,保证了方法的可靠性和特异性。对大肠杆菌、沙门氏菌、志贺氏菌等肠道致病菌以及金黄色葡萄球菌等非克罗诺杆菌共10株进行LAMP扩增,均未出现阳性结果,特异性强。对细菌培养物检测限为101cfu/mL,在检测灵敏度上具有更大的优势。建立的IMS-LAMP法能直接对奶粉等食品中的克罗诺杆菌进行检测,与传统国标检测方法相比,大大缩短了检测时间,节省了人力、物力。而且IMS-LAMP方法操作简单,反应快速,在恒温条件下进行,标准培养物2~3h完成,奶粉样品26h完成(国标法需要6d),耗时短;同时,使用恒温水浴装置即可完成反应,不需要使用昂贵、精密的仪器设备,实现反应及产物检测一步完成,操作简便,检测成本低。 综上所述,本研究建立的克罗诺杆菌IMS-LAMP检测方法具有特异性强、灵敏度高、方便快捷、成本低等特点,为克罗诺杆菌的检测提供了新的发展方向,有望成为简易的常规检测手段,尤其适用于基层检验检疫机构,对于提高食品卫生水平、保证食品安全和推动食品国际贸易发展具有重要的意义。

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