三结构域蛋白8（TRIM8）抑制剂在抑制心肌肥厚中的功能及应用

摘要

本发明公开了一种三结构域蛋白8（TRIM8）抑制剂在抑制心肌肥厚中的功能及应用，属于基因的功能与应用领域。本发明确定了TRIM8的表达与心肌肥厚之间的相互关系，研究结果表明在发生心肌肥厚的模型中，TRIM8的表达和正常组相比显著升高；抑制TRIM8表达显著抑制了心肌肥厚、纤维化，保护心功能，促进TRIM8过表达则显著促进了心肌肥厚、纤维化，恶化心功能。因此，TRIM8可作为药物靶标，用于筛选保护心脏功能、抗心脏纤维化和/或预防、缓解和/或治疗心肌肥厚的药物；TRIM8的抑制剂用于制备保护心脏功能、抗心肌肥厚和/或预防、缓解和/或治疗心肌肥厚的药物，为心肌肥厚的治疗提供了一条有效的新途径。

说明书

技术领域

本发明属于基因的功能与应用领域，特别涉及一种三结构域蛋白8（TRIM8）抑制剂在抑制心肌肥厚中的功能及应用。

背景技术

心肌肥厚是心脏为适应各种长期过度的压力和/或容积负荷刺激而产生的心肌细胞体积增大，重量增加。心肌肥厚中心肌细胞由于蛋白合成增加，引起体积增大、直径或长度增加，肌节数量增多。同时，心肌细胞表型也由成熟型向胚胎型转化，并伴随心肌间质细胞增殖和心脏细胞外基质改建，引起心肌重构[1,2]。临床上许多心脏疾病可以引起心肌肥厚，常见病因包括原发性或继发性高血压病、心脏瓣膜病、冠心病，以及先天性心脏病等[3]。尽管以心肌细胞增大、心肌收缩力增强为特点的早期心肌肥厚表现为一种维持正常心输出量的代偿机制，但是由于长期心肌肥厚会增加心肌耗氧量，引起心肌缺血和心肌细胞凋亡，同时心肌肥厚降低心室顺应性，导致代偿机制失衡[4]。研究表明随着心肌肥厚重构的进展，缺血性心脏病、恶性心律失常、充血性心衰、猝死等严重心血管事件的发生率增加6～10倍[5]。

在细胞和分子水平上，心肌细胞肥大过程主要涵盖3个环节：胞外肥大信号刺激、胞内信号通路转导及核内基因转录活化[6]。不同的肥大信号诱发特异的基因表达模式，信号转导通路在这一过程中扮演重要角色[7]。目前，明确与心肌肥厚相关的信号通路主要包括：钙调素依赖性蛋白激酶（CaMK）、钙调神经磷酸酶（calcineurin）、丝裂原活化蛋白激酶（MAPK）、磷酸脂酰肌醇-3激酶（PI3K）/丝-苏氨酸蛋白激酶（Akt）和两面神激酶（JAK）/信号传导及转录激活因子（STAT）信号转导通路。其中MAPK由细胞外信号调节激酶（ERKs），c-junN末端激酶9JNKs）和p38-MAPK三个亚家族组成[8]。PI3K活化后激活下游重要靶点Akt，Akt可进一步作用于下游底物引起雷帕霉素靶体蛋白(mTOR)和糖原合成激酶（GSK3β）的激活以及FoxO的失活[9]。尽管目前对于心肌肥厚发生发展的病理生理机制有了初步认识，但是其具体分子的调控网络仍未完全明确，临床防治手段仍然十分有限。

三结构域蛋白8（TRIM（Tripartitemotif）8）属于环指蛋白家族的TRIM亚家族成员，其编码基因定位于10号染色体长臂2区4带3亚带（10q24.3）[10]。TRIM8蛋白由551个氨基酸组成，在人体及小鼠各组织器官中广泛表达，其中心脏表达水平较高[11]。TRIM8从N端到C端具有5个结构域，分别是RING结构域、B-box1结构域、B-box2结构域、卷曲螺旋结构域和具有细胞核定位功能的C末端[12]。研究发现，TRIM8可以通过调控SOCS1、TAK1、PIAS3和P53等关键信号通路分子，参与包括固有免疫反应和肿瘤发生在内的多种病理生理过程[11-15]，但目前仍没有TRIM8在心血管系统疾病中作用的相关研究报道。

参考文献：

[1].RohiniA,AgrawalN,KoyaniCN,SinghR.Moleculartargetsandregulatorsofcardiachypertrophy.PharmacolRes,2010.61(4):p.269-80.

[2].GuptaS,DasB,SenS.Cardiachypertrophy:mechanismsandtherapeuticopportunities.AntioxidRedoxSignal,2007.9(6):p.623-52.

[3].BuiAL,HorwichTB,FonarowGC.Epidemiologyandriskprofileofheartfailure.NatRevCardiol,2011.8(1):p.30-41.

[4].OkaT,AkazawaH,NaitoAT,KomuroI.Angiogenesisandcardiachypertrophy:maintenanceofcardiacfunctionandcausativerolesinheartfailure.CircRes,2014.114(3):p.565-71.

[5].ZileMR,GottdienerJS,HetzelSJ,McMurrayJJ,KomajdaM,McKelvieR,BaicuCF,MassieBM,CarsonPE.Prevalenceandsignificanceofalterationsincardiacstructureandfunctioninpatientswithheartfailureandapreservedejectionfraction.Circulation,2011.124(23):p.2491-501.

[6].BalakumarP,JagadeeshG.Multifariousmolecularsignalingcascadesofcardiachypertrophy:canthemuddywatersbeclearedPharmacolRes,2010.62(5):p.365-83.

[7].HeinekeJ,MolkentinJD.Regulationofcardiachypertrophybyintracellularsignallingpathways.NatRevMolCellBiol,2006.7(8):p.589-600.

[8].RoseBA,ForceT,WangY.Mitogen-activatedproteinkinasesignalingintheheart:angelsversusdemonsinaheart-breakingtale.PhysiolRev,2010.90(4):p.1507-46.

[9].AoyagiT,MatsuiT.Phosphoinositide-3kinasesignalingincardiachypertrophyandheartfailure.CurrPharmDes,2011.17(18):p.1818-24.

[10].VincentSR,KwasnickaDA,FretierP.AnovelRINGfinger-Bbox-coiled-coilprotein,GERP.BiochemBiophysResCommun,2000.279(2):p.482-6.

[11].ToniatoE,ChenXP,LosmanJ,FlatiV,DonahueL,RothmanP.TRIM8/GERPRINGfingerproteininteractswithSOCS-1.JBiolChem,2002.277(40):p.37315-22.

[12]ReymondA,MeroniG,FantozziA,etal.Thetripartitemotiffamilyidentifiescellcompartments[J].EMBOJ,2001,20(9):2140-2151

[13].LiQ,YanJ,MaoAP,LiC,RanY,ShuHB,WangYY.Tripartitemotif8(TRIM8)modulatesTNFalpha-andIL-1beta-triggeredNF-kappaBactivationbytargetingTAK1forK63-linkedpolyubiquitination.ProcNatlAcadSciUSA,2011.108(48):p.19341-6.

[14].OkumuraF,MatsunagaY,KatayamaY,NakayamaKI,HatakeyamaS.TRIM8modulatesSTAT3activitythroughnegativeregulationofPIAS3.JCellSci,2010.123(Pt13):p.2238-45.

[15].CaratozzoloMF,VallettiA,GiganteM,AielloI,MastropasquaF,MarzanoF,DitonnoP,CarrieriG,SimonnetH,D'ErchiaAM,RanieriE,PesoleG,SbisaE,TulloA.TRIM8anti-proliferativeactionagainstchemo-resistantrenalcellcarcinoma.Oncotarget,2014.5(17):p.7446-57。

发明内容

为解决上述现有技术的缺陷和不足，本发明的目的在于确定TRIM8的表达和心肌肥厚的相互关系，提供一种TRIM8作为药物靶标在筛选保护心脏功能和/或预防、缓解和/治疗心肌肥厚及其纤维化的药物中的应用，提供一个用于保护心脏功能和/或预防、缓解和/或治疗心肌肥厚和纤维化的靶基因TRIM8的新用途。

本发明的目的通过下述技术方案实现：

本发明通过试验确定了TRIM8表达与心肌肥厚之间的关系：

1、发生心肌肥厚时心肌细胞肥大标志物ANP、Myh7表达明显上调，TRIM8表达明显上调

本发明分别选用正常人和扩心患者心脏，正常假手术（Sham）小鼠和通过主动脉弓缩窄手术（AB）造成心肌肥厚的小鼠心脏，以及分别通过对照组（PBS）或血管紧张素2（AngII）或苯肾上腺素（PE）刺激后的心肌细胞，分别检测了ANP、Myh7、TRIM8的蛋白表达情况。结果表明，扩张型心肌病患者和发生心肌肥厚的小鼠心脏中的心肌细胞肥大标志物ANP、Myh7的表达明显上调，TRIM8的表达明显上调，同样在经血管紧张素II（AngII）或苯肾上腺素（PE）刺激后的心肌细胞中ANP、Myh7的表达也明显上调，TRIM8的表达明显上调（图1、图2、图3）。

2、TRIM8干扰（AdshTRIM8）及过表达（AdTRIM8）腺病毒对经AngII诱导的心肌细胞肥大模型的影响

本发明发现在经血管紧张素II（AngII）诱导的体外心肌肥厚模型中，TRIM8过表达心肌细胞出现明显肥大，TRIM8不表达心肌细胞的肥大明显被抑制（图4）。

3、TRIM8基因敲除显著抑制了心肌肥厚、纤维化的程度，保护心功能；TRIM8基因过表达显著促进了心肌肥厚及其纤维化的程度，恶化心功能

本发明选用野生型小鼠、TRIM8基因敲除小鼠及心脏特异性TRIM8转基因小鼠和非转基因小鼠进行试验，并将每种小鼠分成假手术组和手术组，每组10只小鼠。手术组给予主动脉弓缩窄手术，假手术组不予主动脉弓缩窄，然后通过对假手术组和手术组的各组小鼠进行心脏心肌肥厚、纤维化及心功能的测定，研究TRIM8基因敲除/过表达对主动脉弓缩窄诱导的心肌肥厚的影响。结果表明：敲除TRIM8基因所致的TRIM8缺陷显著抑制心肌肥厚、纤维化，保护心功能；过表达TRIM8基因显著恶化心肌肥厚、纤维化以及心功能（图5-12）。

4、TRIM8基因敲除抑制P38/JNK1/2信号通路；TRIM8基因过表达促进P38/JNK1/2信号通路

本发明用野生型小鼠、TRIM8基因敲除小鼠及心脏特异性TRIM8转基因小鼠和非转基因小鼠分别进行假手术和主动脉弓缩窄手术，然后在术后4周对各组小鼠心脏提取蛋白质进行SDS-PAGE-免疫印迹试验（Westernblot），结果显示TRIM8基因敲除抑制P38/JNK1/2信号通路；TRIM8基因过表达促进P38/JNK1/2信号通路（图13，图14）。

由以上结果可知发生心肌肥厚时，TRIM8表达上调，TRIM8基因缺陷抑制P38/JNK1/2信号通路的激活，抑制了心肌肥厚及其纤维化，保护心功能，TRIM8基因过表达促进P38/JNK1/2信号通路的激活，显著促进了心肌肥厚、纤维化，恶化心功能。因此，TRIM8基因可作为药物靶点，构建TRIM8基因过表达的体外细胞模型或动物模型，用于筛选预防、缓解和/或治疗心肌肥厚疾病的药物；TRIM8基因也可作为基因治疗中的靶基因，设计并制备预防、缓解和/或治疗心肌肥厚的药物和/或生物学试剂，通过基因工程技术达到预防、缓解和/或治疗心肌肥厚的目的。例如以TRIM8为靶基因，设计可干扰TRIM8表达的双链siRNA，通过化学方法合成以后，注射入人体通过RNA干扰的方法使TRIM8基因沉默来治疗心肌肥厚疾病；还可以设计并构建TRIM8的突变体，注射后进入细胞，竞争TRIM8原形的作用底物，从而抑制TRIM8的功能，起到治疗目的；此外，还可以以TRIM8为靶点设计小分子化合物抑制剂，利用TRIM8基因过表达的体外细胞模型或动物模型，通过筛选，发现其中能够特异性抑制TRIM8的分子，从而为心肌肥厚的治疗提供新的治疗性分子。

针对TRIM8的上述功能，提供TRIM8作为药物靶标在筛选保护心脏功能和预防、缓解和/或治疗心肌肥厚及其纤维化的药物中的应用。

针对TRIM8的上述功能，提供TRIM8的抑制剂在制备保护心脏功能和预防、缓解和/或治疗心肌肥厚及纤维化的药物中的应用。

一种保护心脏功能的药物，包含TRIM8的抑制剂。

一种预防、缓解和/或治疗心肌肥厚及纤维化的药物，包含TRIM8的抑制剂。

所述的TRIM8的抑制剂具有本领域公知的含义，其可以是能够特异抑制TRIM8对靶基因的调控作用的任何物质，可以是在细胞中特异抑制TRIM8表达的物质，也可以是与TRIM8具有特异性相互作用的物质。优选为TRIM8基因的siRNA、TRIM8基因的RNA干扰载体，TRIM8的抗体及其他能够抑制TRIM8表达的抑制剂中的一种。

一种筛选用于保护心脏功能和预防、缓解和/或治疗心肌肥厚及其纤维化的药物的方法，为筛选TRIM8的抑制剂的方法，包括根据TRIM8的序列设计其反义RNA，或者将TRIM8与候选物质接触，检测TRIM8的表达，并选择特异抑制TRIM8表达的候选物质。

本发明具有如下有益效果：

本发明发现了TRIM8基因的新功能，即TRIM8能够恶化心脏功能和促进心肌肥厚及纤维化的作用。因此，TRIM8可作为药物靶标，用于筛选保护心脏功能、抗心脏纤维化和/或预防、缓解和/或治疗心肌肥厚的药物；TRIM8的抑制剂用于制备保护心脏功能、抗心肌肥厚和/或预防、缓解和/或治疗心肌肥厚的药物，为心肌肥厚的治疗提供了一条有效的新途径。

附图说明

图1是正常人和扩张性心肌病（扩心病）患者心脏中ANP、Myh7、TRIM8的蛋白表达情况及统计柱状图，GAPDH作为内参，扩心病人心脏TRIM8的表达上调（*：p＜0.05vs正常人组）。

图2是小鼠在假手术和主动脉弓缩窄手术（AB）造模后4周、8周心脏组织中ANP、Myh7、TRIM8的表达情况及统计柱状图，GAPDH作为内参，发生心肌肥厚的心脏TRIM8的表达上调（*：p＜0.05vs假手术组）。

图3是体外培养乳鼠原代心肌细胞中对照组和血管紧张素2（AngII）、异丙肾上腺素（PE）刺激后ANP、Myh7、TRIM8的蛋白表达情况及统计柱状图，GAPDH作为内参，AngII、PE刺激后TRIM8表达上升（*：p<0.05vs对照组）。

图4是SD乳鼠原代心肌细胞用腺病毒AdshRNA、AdsTRIM8、AdGFP和AdTRIM8感染，经血管紧张素2刺激48小时后的免疫荧光及细胞表面面积统计柱状图，TRIM8的干扰腺病毒抑制心肌细胞肥大，TRIM8的过表达腺病毒促进心肌细胞肥大（*：p＜0.05vsAdshRNA对照组/AdGFP对照组，#：p＜0.05vsAdshRNA血管紧张素2组/AdGFP血管紧张素2组)。

图5是TRIM8+/+和TRIM8-/-小鼠假手术或AB术造模4周后心重/体重、肺重/体重及心重/胫骨长度的统计柱状图（*：p＜0.05vsTRIM8+/+假手术组，#：p＜0.05vsTRIM8+/+造模组）。

图6是TRIM8+/+和TRIM8-/-小鼠假手术或AB术造模4周后心室横截面以及心脏组织HE染色、WGA染色和心肌细胞横截面积统计柱状图（*：p＜0.05vs对照组，#p＜0.05vs造模组）。

图7是TRIM8+/+和TRIM8-/-小鼠假手术或AB术造模4周后心脏组织天狼星红染色以及左室胶原面积统计柱状图（*：p＜0.05vs对照组，#p＜0.05vs造模组）。

图8是NTG和TG小鼠假手术或造模4周后心重/体重、肺重/体重及心重/胫骨长度的统计柱状图（*：p＜0.05vsNTG假手术组，#：p＜0.05vsNTG造模组）。

图9是NTG和TG小鼠假手术或AB术造模4周后心室横截面以及心脏组织HE染色、WGA染色和心肌细胞横截面积统计柱状图（*：p＜0.05vs对照组，#p＜0.05vs造模组）。

图10是NTG和TG小鼠假手术或AB术造模4周后心脏组织天狼星红染色以及左室胶原面积统计柱状图（*：p＜0.05vs对照组，#p＜0.05vs造模组）。

图11是TRIM8+/+和TRIM8-/-小鼠假手术或AB术造模4周后心功能检测结果的统计柱状图，包括左室舒张末期内径、左心室收缩末内径和短轴缩短率（*：p＜0.05vsTRIM8+/+假手术组，#：p＜0.05vsTRIM8+/+造模组）。

图12是NTG和TRIM8-TG小鼠假手术或AB术造模4周后心功能检测结果的统计柱状图，包括左室舒张末期内径、左心室收缩末内径和短轴缩短率（*：p＜0.05vsTRIM8+/+假手术组，#：p＜0.05vsTRIM8+/+造模组）。

图13是TRIM8+/+和TRIM8-/-小鼠假手术或AB术造模4周后MAPK信号通路Westernblot检测图，结果显示TRIM8敲除会降低P38和JNK的磷酸化激活；其中“p-”代表磷酸化的激酶，“T-”代表总的（磷酸化的和未磷酸化的）激酶，GAPDH作为内参（*：p＜0.05vsTRIM8+/+假手术组，#：p＜0.05vsTRIM8-/-造模组）。

图14是NTG和TG小鼠假手术或造模AB术4周后MAPK信号通路Westernblot检测图，结果显示TRIM8过表达会提高P38和JNK的磷酸化激活；其中“p-”代表磷酸化的激酶，“T-”代表总的（磷酸化的和未磷酸化的）激酶，GAPDH作为内参（*：p＜0.05vsNTG假手术组，#：p＜0.05vsTG造模组）。

具体实施方式

下面结合实施例及附图对本发明作进一步详细的描述，但本发明的实施方式不限于此。

实验用动物及饲养

实验动物：选用8-10周龄、体重在23.5-27.5g，背景为雄性C57BL/6的野生型小鼠（TRIM8+/+）、全身性TRIM8基因敲除小鼠（TRIM8-/-）、心脏特异性TRIM8转基因小鼠（TRIM8-TG）及非转基因小鼠（NTG，同窝对照非转基因小鼠）为实验对象。

（1）全身性TRIM8基因敲除小鼠的构建：

利用CRISPR-Cas9技术构建全身性TRIM8基因敲除小鼠。首先，通过在线CRISPR设计工具（http://crispr.mit.edu）预测小鼠TRIM8的引导序列，设计2条单链oligo：

oligo1：TAGGCCGGTTCCACGAAAACGTGC，

oligo2：AAACGCACGTTTTCGTGGAACCGG。

oligo1和oligo2退火形成双链DNA，将双链DNA连入经BsaI酶切的pUC57-sgRNA（Addgene51132）构建sgRNA表达载体。

以上述构建的sgRNA表达载体为模板，使用如下引物通过PCR扩增含有T7启动子及引导序列的DNA片段：

Forwardprimer：GATCCCTAATACGACTCACTATAG，

Reverseprimer：AAAAAAAGCACCGACTCGGT。

以所扩增的PCR产物为模板使用MEGAshortscriptKit（Ambion，AM1354）进行体外转录；Cas9质粒（Addgene44758）通过T7Ultrakit（Ambion，Am1345）进行转录。将转录得到的Cas9和引导序列RNA的mRNA使用miRNeasyMicroKit（Qiaen，217084）纯化后，通过FemtoJet5247显微注射系统注射入野生型C57BL/6小鼠的单细胞受精卵内。选取经显微注射后存活的受精卵，将其移植到健康雌鼠输卵管中，经过21天妊娠之后得到F0代小鼠。

F1代及F2代小鼠通过PCR鉴定，野生型小鼠包含一段长158bp的DNA序列，而突变小鼠（TRIM8基因敲除小鼠）含有150bp的DNA序列，最终蛋白产物通过westernblot进行检测鉴定。其中，PCR鉴定引物如下：

TRIM8-F：5’-TGTACCAGACGGATCCCCA-3’，

TRIM8-R：5’-TCCACGATGTTGGTGAGCTT-3’。

实验所用小鼠为突变体纯合子。

（2）心脏特异性TRIM8转基因小鼠的构建：

以野生型C57BL/6小鼠TRIM8基因cDNA为模板，用如下引物PCR扩增小鼠TRIM8全长基因（NCBI，GeneID：93679）：

上游引物：TGCTCTAGAGCCACCATGGCGGAGAATTGGAAGAAC，

下游引物：TGCTCTAGATTAGCTTGTCACATAGTGTTTGGTG。

把扩增的TRIM8全长基因及pCAG-loxP-CAT-loxP质粒（pCAG-loxP-CAT-loxP质粒由北京协和医学院基础学院杨青林老师提供，制备过程参见文献：KimT,ZhelyabovskaO,LiuJ,etal.GenerationofanInducible,Cardiomyocyte-SpecificTransgenicMouseModelwithPPARb/dOverexpression[J].PeroxisomeProliferator-ActivatedReceptors(PPARs),57.）经XbaI（NEB，#R0145L）酶切后连接，形成pCAG-loxP-CAT-loxP-TRIM8-hGHpA载体（CAG(chickenbeta-actin)-CAT(chloramphenicolacetyltransferase)-TRIM8-hGHpA），将构建的质粒通过显微注射系统注射入野生型C57BL/6小鼠的单细胞受精卵内，该受精卵移植入健康雌鼠中，发育得到F0代小鼠。将得到的F0代小鼠与α-MHC-Cre小鼠杂交，并通过他莫昔芬诱导（他莫昔芬80mg/kg/天，腹腔注射，连续刺激5天）得到心脏特异性TRIM8转基因老鼠（上述的转基因小鼠参照下述文献制备：JiangDS,BianZY,ZhangY,ZhangSM,LiuY,ZhangRetal.Roleofinterferonregulatoryfactor4intheregulationofpathologicalcardiachypertrophy.Hypertension2013;61:1193-1202.）。

饲养环境：所有实验小鼠均饲养在SPF级实验动物中心，SPF级大小鼠饲料购自北京华阜康生物科技有限公司。饲养条件：室温在22-24℃之间，湿度在40-70%之间，明暗交替照明时间为12h，自由饮水摄食。

实施例1TRIM8在正常人和扩心病人心脏中的表达

选用正常人心脏（非心脏原因的死亡捐献的个体）、扩张型心肌病患者心脏（做心脏移植手术病人置换的受体），对心脏提取蛋白质进行SDS-PAGE-免疫印迹试验（Westernblot），结合特异性识TRIM8蛋白和心肌细胞肥大标志物ANP（Millipore，AB2232）、Myh7（santacruz，sc53090）的抗体进行检测，测定其TRIM8（ProSci，25-217）的表达，GAPDH（CellSignalingTechnology，2128）作为内参。检测结果如图1所示，扩张型心肌病患者心脏中的心肌细胞肥大标志物ANP、Myh7的表达明显上调，TRIM8的表达也明显上调（图1）。

实施例2TRIM8在野生型小鼠假手术组和心肌肥厚模型组心脏中的表达

1.小鼠心肌肥厚模型采用主动脉弓缩窄手术（AB）造模，模型操作流程：

1.1术前准备

（1）麻醉：先给小鼠称重，按照90mg/kg体重计算所需麻药（3%戊巴比妥钠）量，通过腹腔注射，并记录注射时间点。夹尾、夹趾无明显反应且小鼠状态良好为麻醉成功标准（一般注射后约10min无明显反应，以麻醉后约50min小鼠夹趾有反应，麻醉后30min左右为最佳手术时间）。

（2）术区准备：将小鼠左胸部、左侧胸部及左前肢腋下的皮肤去毛。剃毛后用湿纱布擦拭术区去除鼠毛，以不影响手术视野为宜。

（3）气管插管：用橡皮筋将小鼠上门齿固定于V形板斜面上，并迅速将气管插管经声门准确插入气管内，随后右侧卧位置于加热垫上（加热垫需提前预热），然后将气管插管与呼吸机连接，固定小鼠。若小鼠的胸廓起伏与呼吸机频率一致，说明气管插管成功。

1.2主动脉弓缩窄术

AB术心肌肥厚模型组：取右侧卧位，小鼠左前肢置于右前肢上方，并用医用胶带将两前肢固定。右胸部下方垫入棉签，抬高胸廓，依次用碘酒及体积分数为75%酒精对手术区域皮肤消毒。左手持眼科镊将左胸部皮肤捏起，右手持眼科剪剪开皮肤约1cm，依次分离肌肉及软组织，于第2-3肋水平打开胸腔，用棉签稍拨开左肺，游离主动脉弓降支，将7-0手术缝线穿过血管，并在血管上方平行放置一段26G（25.0-27.5g小鼠）或者27G（23.5-25.0g）注射器针头，将血管及针头一起结扎好，再抽出针头即可达到相应程度的血管缩窄。结扎完毕后依次缝合，关闭胸腔，用注射器从缝口处插入胸腔并抽出1cc气体以恢复胸腔内负压，拔出注射器后迅速缝合皮肤切口。

假手术组（Sham）在游离出主动脉降支后只穿线不结扎，其余步骤同AB术心肌肥厚模型组。

1.3术后护理

手术中主动脉弓降支结扎后，待小鼠出现自主呼吸、夹趾出现强烈反应，拔出气管插管，并将小鼠放入装有高压灭菌过的垫料、饲料和饮用水的饲养笼内，于饲养室继续饲养观察。

2.取材

打开分析天平，调零备用。再称重处死小鼠。眼科弯镊夹住心耳下方的血管蒂，剪下心脏，迅速置于灭菌纱布上，轻轻挤压心腔内液体，蘸干表面液体后，称重并记录，将心脏放入相应的冻存管中，迅速置于液氮罐中，于-80℃冰箱保存后用于分子生物学检测。

3.TRIM8在假手术组和造模组（心肌肥厚模型组）心脏中的表达

分别选野生型小鼠假手术和造模组AB手术后4周及8周的心脏，对心脏组织提取蛋白质进行SDS-PAGE-免疫印迹试验（Westernblot），结合特异性识别TRIM8蛋白及心肌细胞肥大标志物ANP、Myh7的抗体进行检测，测定其TRIM8的表达，GAPDH作为内参。检测结果如图2所示，心肌细胞肥大标志物在AB术后ANP、Myh7的表达明显上调，TRIM8的表达在AB术后明显上调。表明发生心肌肥厚的心脏TRIM8的表达上调。

实施例3TRIM8在对照组（PBS）或血管紧张素II（AngII）或苯肾上腺素（PE）刺激后的心肌细胞中的表达

分离培养新生1天Sprague-Dawley乳鼠心肌细胞，培养原代心肌细胞48h后换液（原代新生SD大鼠心肌细胞培养的具体过程见下述实施例4），加入无血清的DMEM/F12饥饿心肌细胞12h使细胞同步化后，分别给予PBS、血管紧张素血管紧张素II（AngII，1μM）、苯肾上腺素（PE，1μM）刺激48小时，对心肌细胞提取蛋白质进行SDS-PAGE-免疫印迹试验（Westernblot），结合特异性识别TRIM8蛋白及心肌细胞肥大标志物ANP、Myh7的抗体进行检测，测定其TRIM8的表达，GAPDH作为内参。检测结果如图3所示，经血管紧张素II（AngII）或苯肾上腺素（PE）刺激后的心肌细胞中ANP、Myh7的表达明显上调，TRIM8的表达明显上调。

实施例4TRIM8干扰（AdshTRIM8）及过表达（AdTRIM8）腺病毒对AngII刺激的原代心肌细胞肥大的影响

1.原代新生SD大鼠心肌细胞培养

（1）新生1天Sprague-Dawley乳鼠8只，颈部以下75%酒精消毒，用眼科剪和显微镊取下心脏，放入盛有10mLDMEM/F12液的玻璃平皿中。再取另一只，重复以上过程。

（2）用DMEM/F12培养基清洗心脏，并将心脏剪成1-2mm³的碎片。转入到放有转子的血清瓶中，吸去DMEM/F12，加入胰酶消化液。转速为120r/min，消化15min，静止数秒钟，弃去上清液。

（3）加入胰酶消化液，转速为120r/min，消化15min。静止数秒钟，吸取上清液，用20%小牛血清的DMEM/F12培养基终止消化，并置于4℃冰箱保存。重复该步骤，循环若干次。取上清时应尽量取尽，当组织块变白并明显变小时，终止消化。

（4）将收集好的心肌细胞悬液，以1500rpm转速离心8min，弃去上清液。在离心管中加入适量培养基，轻柔吹打重悬细胞，集中至1个50mL离心管中，细胞悬液用细胞40μm过滤网过滤。

（5）将细胞接种在100mm的培养皿中，差时贴壁90min，吸取未贴壁的细胞悬液过滤。根据细胞悬液的总量加入Brdu（终浓度0.1mM），混匀之后，加入到用0.1%明胶包被的器皿中。

（6）轻摇分散细胞，勿漩涡摇晃。37℃、5%CO₂孵育48小时用PBS清洗1次，更换培养基。

2.TRIM8干扰（AdshTRIM8）及过表达（AdTRIM8）腺病毒对经AngII诱导的心肌细胞肥大模型的影响

AdshRNA（含shRNA（沉默RNA）的腺病毒，用作对照）、AdshTRIM8（含shRNA-TRIM8（沉默RNA-TRIM8融合蛋白）的腺病毒）、AdGFP（含GFP（绿色荧光蛋白）的腺病毒，用作对照）及AdTRIM8（含GFP-TRIM8（绿色荧光蛋白-TRIM8融合蛋白）的腺病毒）（这些腺病毒的构建过程参见文献：ChenK,GaoL,LiuY,etal.Vinexin-βprotectsagainstcardiachypertrophybyblockingtheAkt-dependentsignallingpathway[J].BasicResCardiol,2013,108(2):1-14.）腺病毒10MOIs分别感染培养3天的原代心肌细胞，12小时后用1μM血管紧张素2（AngII）（购自Sigma公司，A9525）或对照PBS刺激48小时，然后进行免疫荧光试验。结果表明AdshTRIM8腺病毒感染后的心肌细胞表面面积较AdshRNA对照组减少，而经AdTRIM8腺病毒感染的心肌细胞表面面积则比对照组AdGFP明显增加（图4）；即TRIM8的干扰腺病毒抑制心肌细胞肥大，TRIM8的过表达腺病毒促进心肌细胞肥大。

实施例5小鼠心肌肥厚模型心肌肥厚及纤维化检测和心功能检测

1.小鼠心肌肥厚模型采用主动脉弓缩窄手术（AB）造模

选用8-10周龄、体重在23.5-27.5g的野生型小鼠（TRIM8+/+）、TRIM8基因敲除小鼠（TRIM8-/-）、心脏特异性TRIM8转基因小鼠（TRIM8-TG）及非转基因小鼠（NTG）各分成假手术组（Sham）和AB术心肌肥厚模型组（造模组），即TRIM8+/+Sham组、TRIM8+/+AB组，TRIM8-/-Sham组、TRIM8-/-AB组，TRIM8-TGSham组、TRIM8-TGAB组，NTGSham组、NTGAB组，每组10只小鼠。造模方法同实施例2。AB术后4周分别进行心肌肥厚及纤维化的检测和心功能的检测。

2.取材

（1）前期工作：预先准备装有20mL的体积分数10%甲醛的尿杯，并贴好标签（小鼠编号、组别、手术类型及取材日期）。将倒满质量分数10%KCl溶液的培养皿置于取材处。打开分析天平，调零备用。再称重处死小鼠。

（2）取材：眼科弯镊夹住心耳下方的血管蒂，剪下心脏，迅速置于质量分数10%KCl溶液中。待心脏停跳在舒张期后，置于灭菌纱布上，轻轻挤压心腔内液体，蘸干表面液体后，称重并记录，将心脏放入相应的尿杯中，固定48h后用于病理学检测。

（3）相关测量及计算：取出小鼠肺脏，修剪后滤纸吸干，称重并记录。剪开小鼠后肢胫骨处皮肤，测量并记录胫骨长度。计算心重与体重的比值（HW/BW），肺重与体重的比值（LW/BW）以及心重与胫骨长度的比值（HW/TL）。

3.病理学检测

3.1制备石蜡标本切片

主要操作程序包括修剪心脏→包埋框处理→流水冲洗→脱水→透明→浸蜡→包埋→切片→摊片→晾干或烘烤后备用。

3.2苏木精-伊红（HE）染色

主要步骤为：取石蜡标本切片55℃烘烤30min→二甲苯5min，3次→100%酒精1min→95%酒精1min→70%酒精1min→双蒸水1min→苏木素溶液（珠海贝索，BA-4021）5min→水洗1min→1%盐酸酒精（取3mL浓盐酸与297mL70%酒精充分混合均匀）1-3s→水洗1min→Scott液（碳酸氢钠0.35g，七水硫酸镁2g，两者溶于100mL蒸馏水）1min→水洗1min→伊红溶液（珠海贝索，BA-4024）3-5min→蒸馏水洗去浮色→70%酒精1s→95%酒精1s→100%酒精30s，3次→二甲苯2min，3次→趁二甲苯未干立即封片→通风橱内吹干，显微镜拍照。

HE染色图片统计：每张图片选择3个以上边界清楚，核大致位于中央的细胞，用Image-ProPlus6.0软件圈细胞面积。

3.3麦胚凝聚素（WGA）染色

主要步骤：将经60℃烘烤30min的石蜡标本切片置于二甲苯5min×3次→100%乙醇5min×2次→95%乙醇5min→70%乙醇5min→蒸馏水漂洗5min×2次→PBS漂洗5min→PBS漂洗10min→弃去PBS，滴加胰酶工作液（DIG-3008，福州迈新）37℃避光孵育20min→PBS漂洗5min×3次→取出切片，用滤纸擦干组织周围的液体（组织切勿干燥），用组化笔划圈平放于湿盒中→滴加WGA-AlexaFlour488工作液（10μg/mL）37℃避光孵育2h→弃去染液，PBS漂洗5min×3次→SlowFadeGoldantifadereagentwithDAPI封片→荧光镜下观察，显微镜拍照。

3.4天狼星红（PSR）染色

主要步骤为：取石蜡标本切片55℃烘烤30min→二甲苯2min，3次→100%酒精1min→95%酒精1min→70%酒精1min→流水冲洗10min→双蒸水1min→质量分数0.2%磷钼酸2min→0.1%天狼猩红苦味酸溶液滴于组织上，湿盒中染色90min→去除残液→0.01N盐酸4s→70%酒精1次→90%酒精1次→100%酒精30s，3次→二甲苯2min，3次→趁二甲苯未干立即盖玻片封片，显微镜拍照。

PSR染色图片统计（Image-ProPlus6.0软件）：胶原比例=胶原面积/（总面积-空白面积）×100%。

心肌组织由心肌细胞和间质组织组成，心脏是一终末分化器官，心肌细胞失去增殖能力，各种生理或病理性刺激引起的心肌细胞反应，只能是单个细胞的体积增大而不能在数量上增殖。因此，在心肌肥厚的病理生理过程中，主要表现为心肌细胞体积增大，肌节数量增多，细胞排列紊乱，心脏间质改变包括心肌成纤维细胞的增殖与转化，胶原纤维密度增加，胶原分泌增加，胶原比例平衡失调等。

TRIM8+/+和TRIM8-/-小鼠AB术造模后的表型结果见图5-7。假手术（Sham）组中TRIM8+/+小鼠和TRIM8-/-小鼠的HW/BW、LW/BW及HW/TL之间的差异均无统计学意义；TRIM8+/+小鼠AB术后4周的HW/BW、LW/BW、HW/TL高于其Sham组；AB术后4周，TRIM8-/-小鼠的HW/BW、LW/BW及HW/TL均较TRIM8+/+小鼠降低（图5）。HE染色及WGA染色切片可观察到：Sham组心脏无明显差异，AB组较Sham组的心脏均增大，TRIM8-/-小鼠的心脏明显小于TRIM8+/+组小鼠；Sham组心肌肌原纤维细胞排列整齐、致密，形态完整，胞核及核仁结构清晰；AB组肌丝排列紊乱、松散，心肌细胞体积明显增大，形态不规整，胞核深染、增大、畸形，核仁模糊，TRIM8-/-组则无TRIM8+/+组细胞肥大明显，差异有统计学意义（图6）。PSR染色后，发现AB组心室心肌间质胶原含量较Sham组增加，动脉血管周围胶原增加更为明显，胶原增粗，排列紊乱成网络状；TRIM8-/-小鼠AB术后心肌间质胶原含量及血管周围胶原含量则比TRIM8+/+小鼠AB术后增加较少（图7）。以上结果说明经AB术造模后，小鼠发生明显的心肌肥厚，TRIM8-/-小鼠的心肌肥厚程度及纤维化小于TRIM8+/+小鼠。

图8-10是NTG和TRIM8-TG小鼠AB术造模后的表型结果。AB术后4周TG小鼠的HW/BW、LW/BW及HW/TL增大的程度明显大于NTG小鼠（图8）。HE染色及WGA染色切片可观察到：AB术后TG小鼠心脏增大的程度远大于NTG小鼠；TG小鼠AB术后心肌细胞横截面积显著大于NTG小鼠AB组（图9）。PSR染色可见，TG小鼠AB术后心肌间质胶原含量及血管周围胶原含量大于NTG小鼠AB组（图10）。以上结果说明经AB术造模后，小鼠发生明显的心肌肥厚，TRIM8-TG小鼠的心肌肥厚及纤维化程度大于NTG小鼠。

4.超声检测心功能

4.1前期准备

（1）麻醉机准备：先连接氧气瓶和麻醉机上的进气接口，再拧开麻醉机上加药口密封盖，迅速加入异氟烷至安全刻度后拧紧密封盖。拧开氧气瓶上总阀门，调整流量控制阀的旋钮，出气压力维持在0.2-0.3mPa。

（2）待测小鼠准备：待检测小鼠用异氟烷迅速麻醉后，左胸前区剃毛，将处理好的小鼠头部伸入麻醉剂导管套头内，以1.5-2.0%异氟烷维持小鼠稳定的麻醉状态。

4.2心功能检测

小鼠取左侧卧位或仰卧位，并在剃毛区均匀涂抹超声耦合剂（天津成信公司）。采用高频超声诊断仪，频率为15MHz，选取标准左心室乳头肌短轴切面，测量左室舒张末期内径（LVEDD）、左室收缩末期内径（LVESD）及短轴缩短率（FS）。

图11是TRIM8+/+和TRIM8-/-小鼠AB术造模后的心功能检测结果。与TRIM8+/+Sham组相比，TRIM8+/+小鼠AB术后4周表现出心功能减弱和心肌肥厚，主要表现为心肌肥厚的指标LVEDD、LVESD增加，而反映心功能的指标FS则下降。AB术后4周，TRIM8-/-小鼠的心功能恶化程度小于TRIM8+/+小鼠。

图12是NTG和TRIM8-TG小鼠AB术造模后的心功能检测结果。AB术后4周，与NTG小鼠相比，TG小鼠心肌肥厚的指标增大的程度及反映心功能的指标下降的程度则大于NTG组。

实施例6TRIM8基因敲除抑制P38/JNK1/2信号通路；TRIM8基因过表达促进P38/JNK1/2信号通路

用野生型小鼠、TRIM8基因敲除小鼠及心脏特异性TRIM8转基因小鼠和非转基因小鼠分别进行假手术（Sham）和主动脉弓缩窄手术（AB），然后在术后4周对各组小鼠心脏提取蛋白质进行SDS-PAGE-免疫印迹试验（Westernblot），检测MAPK信号通路蛋白的表达情况，GAPDH（CellSignalingTechnology，2118）作为内参。结果显示AB手术后MAPK信号通路被激活，敲除TRIM8基因后磷酸化的蛋白p-JNK1/2（CellSignalingTechnology，4668）、p-P38（CellSignalingTechnology，4511）的蛋白表达水平要低于其对照野生型小鼠组，而p-MEK1/2（CellSignalingTechnology，9154）、p-ERK1/2（CellSignalingTechnology，4370）则无显著差异，总的蛋白T-MEK1/2（CellSignalingTechnology，9122）、T-ERK1/2（CellSignalingTechnology，4695）、T-JNK1/2（CellSignalingTechnology，9258）、T-P38（CellSignalingTechnology，9212）在Sham及AB术的各组小鼠见均无明显差异（图13）。TRIM8基因过表达后p-JNK1/2、p-P38的蛋白表达水平要高于其对照NTG小鼠，而p-MEK1/2、p-ERK1/2则无显著差异（图14）。这表明在心肌肥厚模型中，TRIM8基因介导的MAPK信号通路，主要是通过JNK1/2和P38发挥作用，而不是MEK1/2、ERK1/2。

由以上结果可知，在主动脉弓缩窄引起的心肌肥厚疾病模型中，TRIM8基因缺陷显著抑制了心肌肥厚、纤维化，保护心功能，TRIM8基因过表达显著促进了心肌肥厚、纤维化，恶化心功能。因此TRIM8基因具有恶化心功能和促进心肌肥厚及纤维化的作用，特别是TRIM8基因具有能够促进主动脉弓缩窄引起的心肌肥厚相关疾病发生的作用。

上述实施例为本发明较佳的实施方式，但本发明的实施方式并不受上述实施例的限制，其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替代、组合、简化，均应为等效的置换方式，都包含在本发明的保护范围之内。