删除转基因植物中抗生素标记基因的系统及其应用

摘要

本发明公开了删除转基因植物中抗生素标记基因的系统及其应用。本发明所提供的删除系统由分别含有抗生素标记基因和含Cre酶基因的两个植物表达载体各自单独包装组成。所述含有抗生素标记基因的植物表达载体含有两个同向的loxP位点，且两loxP位点之间含有抗生素标记基因及可视化标记基因表达盒。将所述两载体的转基因植株后代杂交，便可从杂交后代中删除抗生素标记基因，这为食品安全提供了保证，在转基因研究中具有重要的意义。另外，可视化标记基因使得仅仅从转基因植株及种皮果皮的颜色上就可以判断出转基因的效果与删除效果，因此该删除体系在转基因研究领域是一个突破，大大节省了分子检测的成本，对于后续的育种也有着重要的意义。

说明书

技术领域

本发明涉及删除转基因植物中抗生素标记基因的系统及其应用。

背景技术

自转基因技术诞生以来，转基因产品中人们最担心的是安全性问题，转基因产品 中带有的一些选择标记基因可能会对人类健康、自然界的物种和环境存在潜在的风险。 因此，转基因植物的安全性问题日益受到重视，并已成为影响转基因植物产业健康发 展的主要瓶颈(参考文献：Hare P D，Chua N H.Excision of selectable marker genes from  transgenic plants.Nature Biotechnology，2002，20：575-580.)。而其中重中之重为抗生素 抗性基因问题。转基因食品中的抗生素抗性基因可能会通过转染肠道细菌，而使人类 对这些抗生素产生抗性，也就是耐药性。联合国粮农组织和世界卫生组织在2003年联 合颁布的转基因植物食品风险评估准则明确指出：“对在临床上应用的抗生素具有抗性 的耐抗生素基因不应在食品中出现”。卡那霉素抗性基因对卡那霉素具有抗性，被世界 卫生组织列为第二级别，为重要类抗生素，意味着该抗生素抗性基因不应在食品中出 现。因此抗生素抗性基因的删除具有重要意义。

Cre/loxP重组系统由于特异、高效、作用专一性强，因而不影响基因的正常表达与 调控，在转基因研究中得到了广泛的应用(参考文献：Ballester A，Cervera M，Pena L. Efficient production of transgenic citrus plants using isopentenyl transferase positive  selection and removal of the marker gene by site-specific recombination.Plant Cell Reports， 2006，26：39-45.和Cao M X，Huang J Q，Yao Q H，Liu S J，Wang C L，Wei Z M. Site-specific DNA excision in transgenic rice with a cell-permeable Cre recombinase. Molecular Biotechnology，2006，32：55-63.和Chakraborti D，Sarkar A，Mondal HA， Schuermann D，Hohn B，Sarmah BK，Das S(2008)Cre/lox system to develop selectable  marker free transgenic tobacco plants conferring resistance against sap sucking homopteran  insect.Plant Cell Rep 27：1623-1633.和Cuellar W，Gaudin A，Solorzano D，Casas A，Nopo L， Chudalayandi P，Medrano G，Kreuze J，Ghislain M.Self-excision of the antibiotic resistance  gene nptII using a heat inducible Cre-loxP system from transgenic potato.Plant Molecular  Biology，2006，62：71-82.)。Cre(causes recombination)重组酶是由来源于P1噬菌体的 cre基因所编码的一类酶，属于Int家族，识别特异靶位点(loxP位点)并催化在该位点 断裂和重组(参考文献：Stembergn，Sauer B，Hoess R，et al.Bacteriophage P 1cre geneand  its regulatory region evidence formultiple promoters and for regulation by DNA  methylation[J].Journal of Molecular Biology，1986，187：197-121.)。loxP位点是一段长度 为34bp的DNA序列，是Cre重组酶的特异性识别位点，具有典型的回文结构，由两个 13bp的反向重复序列和中间8bp的不对称间隔区组成，8bp的间隔区负责位点的定向(参 考文献：Ronald H H，Marcia Z，Nat S.P1 site2specific recombination：nucleotide sequence of  recombining sites[J].Proc NatlAcad Sci，USA，1982，79：3398-3402.)。当同一条DNA分子 上有2个同向的loxP位点时，Cre重组酶催化两个loxP位点间基因的剔除，只留下1个loxP 位点，重组发生在8bp的分隔区内(参考文献：Hoess R H，Abremski K.Interaction of the  bacteriophage P1 recombinase Cre with the recombining site loxP.Proceedings of the  National Academy of Sciences of the United States of America，1984，81：1026-1029.)。Cre 重组酶介导的DNA重组不受切除片段长度和位置的限制，只要靶基因被2个识别位点 标记就可以准确地进行DNA重组。

发明内容

本发明的目的是提供删除转基因植物中抗生素标记基因的系统及其应用。

本发明所提供的删除转基因植物中抗生素标记基因的系统，由用于插入外源目的 DNA表达盒的含有抗生素标记基因的植物表达载体和用于删除所述抗生素标记基因 的含Cre酶基因的植物表达载体组成。

所述的含有抗生素标记基因的植物表达载体为环状载体，含有两个同向loxP位 点，抗生素标记基因的表达盒，可视化标记基因的表达盒，筛选转基因植物所需标记 基因的表达盒，及插入外源目的DNA的多克隆位点；所述两个同向的loxP位点将所 述含有抗生素标记基因的植物表达载体划分为两段，其中一段含有编码所述抗生素标 记基因及所述可视化标记基因的表达盒，另一段含有所述筛选转基因植物所需标记基 因的表达盒，和所述插入外源目的DNA的多克隆位点。

所述的含Cre酶基因的植物表达载体为环状载体，该环状载体含有两个同向的 loxP位点，可控启动子，被所述可控启动子启动的Cre酶基因，抗生素标记基因的表 达盒，可视化标记基因的表达盒，和筛选转基因植物所需标记基因的表达盒；所述两 个同向的loxP位点将所述含Cre酶基因的植物表达载体划分为两段，其中一段含有编 码所述抗生素的基因，可控启动子及被所述可控启动子启动的Cre酶基因，另一段含 有所述筛选转基因植物所需标记基因的表达盒，以及所述可视化标记基因的表达盒。

所述表达盒均指含有目的基因及表达该目的基因所需元件的DNA分子。

所述抗生素标记基因的表达盒是一个含有抗生素标记基因及该抗生素标记基因 表达所需元件的DNA分子，从上游至下游依次含有如下片段：启动子、SD序列、由 所述启动子启动转录的所述抗生素标记基因的编码序列和终止子(转录终止序列)。在 本发明的实施例中，所述抗生素基因表达盒具体为卡那霉素(Kan)基因表达盒；所 述Kan基因表达盒是一个含有Kan基因及Kan基因表达所需元件的DNA分子，从上 游至下游依次含有如下片段：含有启动Kan基因的原核启动子(序列7的第2630位 到第2492位)、SD序列、被该启动子启动的Kan基因和终止子(转录终止序列)。

所述可视化标记基因的表达盒是一个含有可视化标记基因及可视化标记基因表 达所需元件的DNA分子，从上游至下游依次含有如下片段：启动子、由所述启动子 启动转录的所述可视化标记基因的编码序列以及终止子(转录终止序列)。在本发明的 实施例中，所述可视化标记基因表达盒具体由花青素基因合成途径中的转录因子bi基 因表达盒和花青素基因合成途径中cl基因表达盒组成。其中，bi基因的表达盒是一个 含有bi基因及bi基因表达所需元件的DNA分子，从上游至下游依次含有如下片段： 启动子、被该启动子启动的bi基因和nos终止子(转录终止序列)；cl基因的表达盒 是一个含有cl基因及cl基因表达所需元件的DNA分子，从上游至下游依次含有如下 片段：启动子、被该启动子启动的cl基因和nos终止子(转录终止序列)。其表达产 物花青素可作为植物转基因成功与否及鉴定转基因植物是否成功删除抗生素标记基因 的可视化标记。cl基因的表达盒和bi基因表达盒的启动子均可为任何可以启动基因在 植物中转录的启动子，如常用的35s启动子。

所述bi基因编码的蛋白质的氨基酸序列如序列表中序列1所示，所述cl基因编 码的蛋白质的氨基酸序列如序列表中序列2所示。所述bi基因的编码序列如序列表中 序列10的第3137位到第4796位所示；所述cl基因的编码序列如序列表中序列10的 第1013位到第1834位所示。

所述筛选转基因植物所需标记基因的表达盒是一个含有筛选转基因植物所需标 记基因及其表达所需元件的DNA分子，从上游至下游依次含有如下片段：启动子、 由所述启动子启动转录的所述筛选转基因植物所需的标记基因的编码序列以及终止子 (转录终止序列)。在本发明的实施例中，所述筛选转基因植物所需标记基因的表达盒 具体为EPSP基因表达盒；所述EPSP基因表达盒是一个含有EPSP基因及EPSP基因 表达所需元件的DNA分子，从上游至下游依次含有如下片段：启动子、由该启动子 启动转录的所述EPSP基因的编码序列以及终止子(转录终止序列)；所述EPSP基因 编码的蛋白质的氨基酸序列如序列表中序列3所示；所述EPSP基因的编码序列如序 列表中序列8的第1029位到第2549位所示。所述筛选转基因植物所需标记基因的表 达盒中的启动子可为任何可以启动基因在植物中转录的启动子，如常用的35s启动子。

在本发明的实施例中，所述插入外源目的DNA的多克隆位点从上游到下游具体 依次为KpnI，Hind III，EcoR I，Sma I，Xba I，Not I。所述的可控启动子具体为 水稻热激蛋白hsp70基因启动子hsp70；所述的水稻热激蛋白hsp70基因启动子hsp70 的核苷酸序列如序列表中序列9的第1位到第687位所示。

所述的Cre酶基因编码的蛋白质的氨基酸序列如序列表中序列4所示；所述的Cre 酶基因的编码序列如序列表中序列9的第694位到第1728位所示。

所述的含有抗生素标记基因的植物表达载体和所述的含Cre酶基因的植物表达载 体分别单独包装。

所述的含有抗生素标记基因的植物表达载体为pBAC9008，pBAC9008按照如下 方法构建：1)在pGreen载体的第1648位和第2635位处分别插入如序列表中序列5 所示的loxP位点得到重组载体pBAC814，pBAC814中的两个loxP位点方向相同；2) 在pBAC814的多克隆位点前的Nde I酶切位点处插入所述EPSP基因的表达盒得到重 组载体pBAC823；3)将上述pBAC823载体的用DraIII酶切，加入AgeI/PacI linker， 之后将所述花青素合成途径中转录因子bi基因和转录因子cl基因的表达框插入AgeI 和PacI位点之间，得到的载体命名为pBAC9008。

所述pGreen载体的序列如序列表中序列7所示；所述EPSP基因的表达盒的序列 如序列表中序列8所示，其中第1位到第434位为所述35S启动子的核苷酸序列，第 461位到第994位为所述玉米Adh1基因的Intron1的核苷酸序列，第1029位到第2549 位为所述EPSP基因的编码序列；所述AgeI/PacI linker的核苷酸序列如序列表中序列 6所示。

所述的含Cre酶基因的植物表达载体为pBAC9009，pBAC9009按照如下方法构 建：a)构建被所述热激活蛋白基因启动子启动的所述Cre酶基因的表达盒，将该表达 盒插入所述pBAC823载体的Dra III酶切位点处，得到重组载体pBAC830；b)将所 述花青素基因合成途径中的转录因子bi基因和转录因子cl基因的表达盒插入 pBAC830载体的EcoR I酶切位点，得到pBAC9009载体。

被所述热激活蛋白基因启动子启动的所述Cre酶基因的表达盒的核苷酸序列如序 列表中序列9所示，其中，第1位到第687位为所述hsp70启动子的核苷酸序列，第 694位到第1725位为所述Cre酶基因的编码序列；所述花青素基因合成途径中的转录 因子bi基因的表达盒和所述花青素基因合成途径中转录因子cl基因的表达盒的序列如 序列表中序列10所示，其中，第1位到第2112位为所述cl表达框的基因序列，第2125 位到第5074位为所述bi表达框的序列，第1013位到第1834位为cl基因的编码序列， 第3137位到第4796位为bi的编码序列。

所述删除转基因植物中抗生素标记基因的系统在删除转基因植物抗生素基因中 的应用也属于本发明的保护范围。

本发明的另一个目的是提供利用上述删除转基因植物中抗生素标记基因的系统 培育转基因植物的方法。该方法包括如下步骤：a、将目的基因插入所述含有抗生素标 记基因的植物表达载体中的所述多克隆位点，得到重组目的基因表达载体。

b、用所述重组目的基因表达载体和含Cre酶基因的植物表达载体分别通过DNA 直接转移法转入植物细胞，获得所述重组目的基因表达载体的转基因植株和所述含 Cre酶基因的植物表达载体的转基因植株。所述重组目的基因表达载体的转基因植株 中，所述目的基因、所述筛选转基因植物所需标记基因和所述可视化标记基因这三个 基因均表达，将所述三个基因记作含有目的基因的三基因；所述含Cre酶基因的植物 表达载体的转基因植株中，所述Cre酶基因、所述筛选转基因植物所需标记基因和所 述可视化标记基因这三个基因均表达，将所述三个基因记作含Cre酶基因的三基因。

c、从所述重组目的基因表达载体的转基因植株自交后代中选择所述含有目的基因 的三基因均稳定表达和纯合的植株作为父本，从所述含Cre酶基因的植物表达载体的 转基因植株自交后代中选择所述含Cre酶基因的三基因均稳定表达和纯合的植株作为 母本，将所述母本和所述父本进行杂交，对得到的杂交种子进行处理，使所述可控启 动子被激活，再将该种子进行种植，得到的不含所述可视化标记基因表达产物的植株 即为抗生素标记基因被删除的转基因植株。

所述DNA的直接转移法包括电击法(电穿孔法)、基因枪法(微弹轰击法)、激 光微束穿孔法、显微注射法、脂质体介导法、多聚物介导法，花粉管通导法等。在本 发明的实施例中采用的具体方法为基因枪法。

在本发明的实施例中，所述转基因植物具体可为单子叶植物，如玉米；所述对得 到的杂交种子进行处理使所述可控启动子被激活的方法具体为40℃热诱导处理。

本发明通过Cre-loxP系统构建了抗生素标记基因的删除系统。含有loxP位点的表 达目的基因的转基因植株通过与表达Cre酶基因的转基因植株杂交，就可以从转基因 植株的后代中删除抗生素标记基因，为食品安全提供保证，在转基因研究中具有重要 的意义。另外，本发明的发明人在删除系统中又同时引进了可视化标记基因花青素合 成途径的两个转录因子，使得本发明仅仅从玉米种皮的颜色上就可以判断出转基因的 效果与删除效果，因此该删除体系在转基因研究领域是一个突破，大大节省了分子检 测的成本，对于后续的育种也有着重要的意义。

附图说明

图1为pBAC823质粒图谱。

图2为pBAC9008质粒图谱。

图3为pBAC830质粒图谱。

图4为pBAC9009质粒图谱。

图5为转基因玉米植株的分化及田间移栽。A诱导愈伤组织；B转化再生植株； C田间移栽；D转化植株结实种子。

图6为pBAC9008转基因植株的PCR检测。1：2K plus marker；2：阴性对照(水)； 3：非转基因植株；5：质粒pBAC9008；6～18：转化植株。

图7为pBAC9009转基因植株的PCR检测。1：2K plus marker；2～17：转化植 株；18：阴性对照(水)；19：非转基因植株；20：质粒pBAC9009。

图8为转基因玉米中Kan基因删除示意图。其中，A代表转目的基因玉米(父本)； B代表转重组酶基因玉米(母本)；C代表转目的基因玉米(删除抗生素基因)；D代 表转重组酶基因玉米；E和F均代表转目的基因玉米/转重组酶基因玉米的杂合体。

具体实施方式

下述实施例中所使用的实验方法如无特殊说明，均为常规方法。

下述实施例中所用的材料、试剂等，如无特殊说明，均可从商业途径得到。

玉米优良自交系501(杨东歌，杨凤萍，陈绪清，张立全，张晓东.外源脱水应答 转录因子CBF4基因转化玉米的获得.作物学报，2009，35(10)：1759-1763)

T4DNA连接酶、Taq酶、卡纳霉素、IPTG、X-gal等试剂均购自大连宝生物工程 有限公司；DNA回收试剂盒购自天根生化科技公司；限制性内切酶购自Promega、New  England Biolabs；普通生化试剂购自Sigma公司、Promega公司或国产。基因枪型号： PDS-1000/He(BioRad)。

基础载体pGreen，购自英国John Innes Centre[联系人：Mark Smedley，John Innes  Centre，Norwich Research Park，Colney，Norwich，NR47UH，UK.e-mail： mark.smedleybbsrc.ac.uk，Fax：(+44)1603450045]。

下面结合具体实施例，详细阐述本发明。应理解，这些实施例仅用于说明本发明而 不用于限制本发明的范围。

实施例1、含有抗生素标记基因的植物表达载体的构建

一、pGreen载体的改造

根据pGreen中Kan基因的两侧序列分别合成扩增loxP位点的正向、反向共四条 引物(见表1)，其中两个正向引物PF1648(序列如序列表中序列11所示)和PF2635 (序列如序列表中序列12所示)的前4个核苷酸残基均为loxP序列的8bp间隔区的 后4位，第5-17位核苷酸残基均为loxP序列的13bp的反向重复序列；两个反向引物 PR1648(序列如序列表中序列13所示)和PR2635(序列如序列表中序列14所示) 的前4个核苷酸残基均为loxP序列的8bp间隔区的前4位，第5-17位核苷酸残基均 为loxP序列的13bp的反向重复序列。利用两次PCR的方法，将loxP位点加入pGreen 中Kan基因表达框的两侧。

具体操作方法如下所述：首先以pGreen基础框架载体为模板，利用PF1648/PR1648 引物对进行PCR扩增，产物自连，转化E.coli JM110。通过序列测定确定loxP位点是 否正确插入pGreen载体中。将鉴定正确的载体命名为pGreen-loxp(在pGreen的1648 位点处插入如序列表中序列5所示的loxP位点得到的重组载体)，以pGreen-loxp载体 为模板，以PF2635/PR2635引物对进行第二次PCR，步骤同上。测序正确的载体命名 为pBAC814(在pGreen-loxp中对应pGreen的2635位点处插入如序列表中序列5所 示的loxP位点得到的重组载体，pBAC814中的两个loxP位点方向相同)。在pBAC814 多克隆位点前的Nde I酶切位点处插入CaMV 35S启动子和玉米Adh1基因的Intron1 驱动的EPSP基因(EPSP基因表达盒)，所述EPSP基因作为筛选转基因植物的选择 标记基因。经测序鉴定正确的载体命名为pBAC823(pBAC823的质粒图谱如图1所 示)。pBAC823中CaMV 35S启动子和玉米Adh1基因的Intron1驱动的EPSP基因(EPSP 基因表达盒)的序列如序列表中序列8所示，其中第1位到第434位为所述35S启动 子的核苷酸序列，第461位到第994位为所述玉米Adh1基因的Intron1的核苷酸序列， 第1029位到第2549位为所述EPSP基因的编码序列

表1扩增loxP位点的四条引物序列

二、pBAC9008载体的构建

将上述构建的pBAC823载体的用DraIII酶切，加入AgeI/PacI linker，之后将花青 素合成途径中两个转录因子bi和cl的表达框插入AgeI和PacI位点之间，得到的载体 命名为pBAC9008。pBAC9008中，转录因子bi基因表达框和cl基因表达框的序列如 序列表中序列10所示，其中第1位到第2112位为所述cl表达框的基因序列，第2125 位到第5074位为所述bi表达框的序列，第1013位到第1834位为的cl基因的编码序 列，第3137位到第4796位为bi基因的编码序列。

所得的pBAC9008即为用于插入外源目的DNA的含有抗生素标记基因的植物表 达载体，其质粒图谱如图2所示。pBAC9008为环状载体，含有两个同向loxP位点， 抗生素标记基因表达盒，可视化标记基因表达盒，筛选转基因植物所需的标记基因表 达盒，插入外源目的DNA的多克隆位点。所述两个同向的loxP位点将所述含有抗生 素标记基因的植物表达载体划分为两段，其中一段含有编码所述抗生素标记基因及所 述可视化标记基因的表达盒，另一段含有所述筛选转基因植物所需标记基因的表达盒， 和所述插入外源目的DNA的多克隆位点。所述抗生素标记基因的表达盒含有启动卡 那霉素标记基因的原核启动子、SD序列、被该启动子启动的卡那霉素标记基因和转录 终止序列。所述可视化标记基因的表达盒由花青素基因合成途径中的转录因子bi基因 表达盒和花青素基因合成途径中cl基因表达盒这两个表达盒组成。所述插入外源目的 DNA的多克隆位点从上游到下游依次为Kpn I，Hind III，EcoR I，Sma I，Xba I， Not I。

实施例2、含有Cre酶基因的植物表达载体的构建

利用PCR方法，从水稻基因组中克隆出热激活蛋白hsp70基因启动子，根据cre 基因的序列，人工合成优化的cre酶基因，构建hsp70启动子热诱导表达的cre酶基因 的表达框。将该表达框插入pBAC823载体的DraIII酶切位点。命名为pBAC830 (pBAC830的质粒图谱如图3所示)。pBAC830中，所述hsp70启动子热诱导表达的 cre酶基因的表达框的核苷酸序列如序列表中序列9所示，其中，第1位到第687位为 所述hsp启动子的核苷酸序列，第694位到第1725位为所述Cre酶基因的编码序列。 再将花青素合成途径中bi表达框和cl表达框的插入pBAC830载体的EcoR I位点，命 名为pBAC9009。pBAC9009中所述花青素合成途径中bi表达框和cl表达框的序列如 序列表中序列10所示，其中，第1位到第2112位为所述cl表达框的基因序列，第2125 位到第5074位为所述bi表达框的序列，第1013位到第1834位为cl基因的编码序列， 第3137位到第4796位为bi基因的编码序列。

pBAC9009即为用于删除所述抗生素标记基因的含Cre酶基因的植物表达载体， 其质粒图谱如图4所示。pBAC9009为环状载体，含有两个同向loxP位点，可控启动 子，被所述可控启动子启动的Cre酶基因，抗生素标记基因的表达盒，可视化标记基 因的表达盒，和筛选转基因植物所需标记基因的表达盒。所述两个同向的loxP位点将 所述含Cre酶基因的植物表达载体划分为两段，其中一段含有编码所述抗生素标记基 因，可控启动子及被所述可控启动子启动的Cre酶基因，另一段含有所述筛选转基因 植物所需标记基因的表达盒和所述可视化标记基因的表达盒。所述的可控启动子为热 激活蛋白基因启动子。所述的抗生素标记基因表达盒含有启动卡那霉素标记基因的原 核启动子、SD序列、被该启动子启动的卡那霉素标记基因和转录终止序列。所述的可 视化标记的基因表达盒由花青素基因合成途径中的转录因子bi基因表达盒和花青素基 因合成途径中cl基因表达盒这两个表达盒组成。

实施例3、玉米基因枪转化及转基因植株的PCR检测

诱导培养基：N6基本培养基+10mg L^-1AgNO₃+100mg L^-1肌醇+2mg L^-12，4-D +30g L^-1蔗糖+7g L^-1琼脂。

分化培养基：N6基本培养基+0.5mg L^-1AgNO₃+100mg L^-1肌醇+1.5mg L^-1KT+ 30g L^-1蔗糖+7g L^-1琼脂+0.5mg L^-1草甘膦。

一、pBAC9008和pBAC9009分别单独转化玉米

取授粉后10-12d的玉米自交系501的果穗，75％乙醇进行表面消毒，取幼胚接种 到诱导培养基上，暗培养3～5d诱导出胚性愈伤组织后进行基因枪转化。纯化好的 pBAC9008和pBAC9009载体分别调整浓度为1μg/μL^-1，按张晓东等(Zhang Xiaodong， Liang Rongqi，Chen Xvqing，Yang Fengping，Zhang Liquan，Transgene inheritance and  quality improvement by expressing novel HMW glutenin subunit(HMW-GS)genes in  winter wheat.Chinese Science Bulletin，2003，48(8)：771-776.)所述方法进行子弹制备， PDS-1000/He型基因枪轰击胚性愈伤组织，5d后将愈伤组织转移到含有草甘膦的筛选 培养基(诱导培养基中加入1mg L^-1草甘膦)上暗培养20d左右。然后选取生长良好 的愈伤组织转移到分化培养基上进行光照培养，分化出幼苗，20-30d后将分化苗转移 到壮苗培养基上进行生根壮苗培养，得到T₀代再生植株。然后再移栽到海南的田间基 地进行繁殖(暗培养和光照培养的培养温度均为26℃，光照培养时光照培养与暗培养 的时间比为16∶8)(杨东歌，杨凤萍，陈绪清，张立全，张晓东.外源脱水应答转录因 子CBF4基因转化玉米的获得[J].作物学报，2009，35(10)：1759-1763)。

结果显示，pBAC9008载体得到转化植株29株，有23株结实，其中7株的种子 有花青素基因的表达；pBAC9009载体得到转化植株155株，有97株结实，其中10 株的种子有花青素基因的表达。转基因玉米植株的分化及田间移栽流程如图5所示。

二、转基因植株外源基因的PCR检测

用改良CTAB法提取转基因玉米嫩叶的基因组DNA，根据35s启动子序列设计 上游引物为TCCACTGACGTAAGGGAT(序列10的2466-2483位)，根据an-B基因 序列设计下游引物为TGGACCAGAAGAGGGCAT(序列10的3240-3257位)，扩增 的目的片段大小为792bp；根据cre  基因设计上游引物为 TGGAAGATGCTACTGTCTGTC(序列9的第817-837位)，下游引物为 CAGTGCTGACCAGAGTCTTA(序列9的1293-1312位)，扩增的目的片段大小为 495bp。以非转基因植株为阴性对照，分别以pBAC9008和pBAC9009质粒为阳性对 照，ddH₂O为空白对照，对转基因植株进行PCR检测。反应体系为DNA模板100μg， 10×PCR Reaction Buffer 2.5μL，dNTPs 2.5mmol/L)2μL，上游引物(10μmol/L)1μL， 下游引物(10μmol/L)1μL，Taq DNA聚合酶(5U/μL)0.2μL，最后用ddH₂O补至总 体积为25μL。反应程序为：95℃变性5min；94℃变性50s，58℃退火50s，72℃延伸 50s，共35个循环；最后72℃再延伸10min。反应产物用0.8％琼脂糖凝胶电泳进行检 测。

提取pBAC9008转化植株的总DNA，根据所设计35s启动子和an-B基因的特异引 物，进行PCR检测，结果如图6所示。这一结果表明，所获得的部分转化植株与阳性 对照质粒(泳道5)都能扩增出了792bp的bi基因表达盒的特异片段，阴性对照(无 模板DNA，泳道2)和非转化植株(泳道3)没有扩增带，根据这一结果，我们初步 判定外源的an-C和an-B基因成功转入玉米中。另外，作为可视化标记的花青素直接 反映在植株及种子上的紫色进一步说明外源的an-C和an-B基因被完整的转入了玉米 植株中。

提取pBAC9009转化植株的总DNA，根据所设计cre基因的特异引物，进行PCR 检测，结果如图7所示。这一结果表明，所获得的部分转化植株与阳性对照质粒(泳 道20)都能扩增出了495bp左右的cre基因的特异片段，阴性对照(无模板DNA，泳 道18)和非转化植株(泳道19)没有扩增带，表明外源cre酶基因已经成功转入玉米 中。

实施例4、转基因植株稳定后代杂交删除抗生素标记基因

按照实施例3所述方法将实施例1和2所得的含有抗生素标记基因的植物表达载 体(pBAC9008)和含有Cre酶基因的植物表达载体(pBAC9009)分别转化植物，经 过T1代、T2代两代选择，获得Cre酶基因或外源目的基因、花青素合成途径转录因 子bi和cl基因、以及EPSP基因均稳定表达的、纯合的pBAC9009与pBAC9008转基 因植株(T2代植株的种子若为全紫色即为纯合的后代)。再通过杂交来删除Kan抗性 标记基因。下面就以转基因玉米为例来进行说明。

转重组酶基因(pBAC9009)植株(种子全为紫色)的T3代(母本)与转目的基 因(pBAC9008)植株(种子全为紫色)的T3代(父本)进行杂交，种子进行40℃热 诱导处理后种植，即可删除pBAC9008转基因植株的后代中的Kan基因及花青素转录 因子。热诱导处理后，假设删除效率为100％，当代结实的种子理论上3∶1分离，1/4 为黄色，即Kan抗性基因删除后的pBAC9008(目的基因)转基因植株的后代，有3/4 为紫色，后者其中有1/3为pBAC9009(重组酶)转基因植株的后代，2/3为同时含有 pBAC9008(目的基因)和pBAC9009(重组酶)的转基因植株的杂合体(图8)，杂 合体分离出的黄色玉米仍是Kan抗性基因删除后的pBAC9008(目的基因)转基因植 株的后代。即使是删除不完全，也只是在紫色种子中混有部分目的基因转基因植株的 后代，黄色种子中仍100％为pBAC9008(目的基因)转基因植株的后代。仅仅从种皮 的颜色以判断出转基因的效果与删除效果，因此该删除体系在转基因研究领域是一个 突破，大大节省了分子检测的成本，对于后续的育种也有着重要的意义。