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法律状态
2017-08-18
未缴年费专利权终止 IPC(主分类):A23L1/20 授权公告日:20070919 终止日期:20160628 申请日:20040628
专利权的终止
2009-03-18
专利实施许可合同的备案 合同备案号:2008990001471 让与人:天津科技大学 受让人:上海斯贝生物科技有限公司 发明名称:利用大豆制品发酵生产大豆肽液体食品及益菌片的方法 授权公告日:20070919 许可种类:独占许可 备案日期:20081216 合同履行期限:2008.11.17至2013.11.17合同变更 申请日:20040628
专利实施许可合同的备案
2007-09-19
授权
授权
2005-05-18
实质审查的生效
实质审查的生效
2005-03-16
公开
公开
技术领域
本发明属于利用大豆制品发酵生产大豆肽液体食品及益菌片的方法,特别涉及一种采用纳豆杆菌为菌种,以大豆豆粉、大豆豆饼、大豆豆粕或大豆豆浆为培养基,发酵生产大豆肽液体食品及益菌片的制作方法。
技术背景:
大豆肽液体食品及纳豆杆菌益菌片是新兴的优质保健食品。大豆肽的蛋白质含量为85%左右,其氨基酸组成几乎完全与大豆蛋白质相同。但与大豆蛋白相比,大豆肽具有更好的理化性质如易消化吸收、低抗原性、增强人体免疫能力等,且含有某些生理活性物质在机体内有多种生理功能。大豆蛋白活性肽等于将部分人体完成困难的消化过程拿到体外进行,是新兴的营养保健源,国际上对大豆肽的研究始于70年代,其中美国和日本都处在发展大豆肽生产和利用的前列。我国近几年研究逐步活跃起来,大豆肽生产得到迅猛发展。目前,大豆肽常用酶解的方法来制备。但酶解选择性较强,水解率偏低,水解物存在苦味,不易被人接受,且不具有纤溶活性。
益生菌片是应用有益菌,将其培养增殖、浓缩干燥制成菌剂。合格的益生菌应具有以下两个特点,即含有活的微生物以及能通过口腔、胃肠道内发挥作用而改善宿主健康。对菌种基本要求是高安全性,无毒,无致残,无致病,无耐药性、无药残等副作用;必须是活的有益菌,在培养中及生物体内易增殖,加工处理后尚有高存活率;对酸、碱、胆汁有耐受性,可避免防霉剂、抗氧化剂和饲料加工过程以及动物肠道内胃酸、胆汁的影响;在肠道中定植能力好,生长速度快;能产生乳酸或其它抗菌活性物质。目前益菌片往往存在着生产菌种未经过严格的病理和毒理试验,长期使用有耐药性、“三致”等毒副作用;有些有益菌在培养中及生物体内不易增殖,加工处理后存活率低,质量得不到保证。
目前,大豆肽的生产方法主要有:微生物发酵法、酶解法、化学方法三种,其中以微生物发酵法最为先进,它可以在生产肽的同时修饰肽的苦味因子,同时,微生物将原料中的抗营养因子(如KTI和BBI)降解,有效消除这两种影响消化和口味的成分。但也存在一些问题,如所采用的菌种产酶种类少且酶活力低,发酵能力差,生产力水平低,只能采用较精细原料进行发酵,而且发酵产物未得到综合利用,只利用发酵液中一部分,造成产品价格高。综上所述,发酵能力低及生产成本高是影响发酵法生产大豆肽及推广应用关键。为此,研究和开发一种经济实用的生产方法是当务之急。
发明内容
针对上述问题,本发明解决了菌种安全差、发酵能力低及所用原料造价成本高问题,提供了利用纳豆杆菌为菌种,以大豆制品为培养基生产大豆肽液体食品和纳豆杆菌益菌片,并使所得到的益菌片安全性好、活菌数高,肽液体食品具有纤溶活性。
技术方案:
发酵生产大豆肽液体食品及益菌片的方法,其特征是采用纳豆杆菌(Bacillus natto,中国工业微生物菌种保藏中心AS 1.107)为生产菌株,发酵培养基主要以大豆豆粉、大豆豆粕、大豆饼粉或大豆豆浆为原料,经过种子培养,发酵培养,离心或过滤,干燥工艺,得到具有大豆肽液体食品和固体纳豆杆菌益菌片,具体步骤如下:
(一)制备发酵液
·菌种的制备
纳豆杆菌在琼脂斜面上35-37℃培养18-24小时后,4℃冰箱保存待用。斜面培养基灭菌条件110-125℃,15-20分钟;
其中斜面培养基为:牛肉膏 5.0-10.0g
蛋白胨 10.0-20.0g
氯化钠 5.0-10.0g
琼脂 18.0-20.0g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
·种子培养
将在斜面培养基培养好的菌种接一环加入到种子培养基中,种子培养基灭菌条件110-125℃,15-20分钟;在摇床上200rpm转速下,35-37℃振荡培养20-28小时后,即可得到适合接种的种子培养物。
其中种子培养基为:蛋白胨 10.0-15.0g
葡萄糖 20.0-30.0g
K2HPO4 1.0-1.5g
MgSO4 0.5-0.75g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
·发酵培养
将上述种子培养物以2%-5%(体积比,ml/ml)的接种量接种于经灭菌处理的新鲜发酵培养基,30-40℃培养60-72小时进行深层液体发酵。在发酵过程中,应控制pH值在6.0-8.0;发酵期间pH的调节,视发酵液pH的具体情况,并根据发酵需要,通过流加酸或碱溶液实现。溶氧通过控制通风量调节,溶氧应控制在20-40%。
发酵结束时检查芽孢生成率,要求芽孢生成率达70%以上。
需要说明的是:
调节pH值方法是初始pH的调节可以通过添加浓度为1.0-2.5%磷酸缓冲液实现。发酵期间pH的调节,所用酸液如磷酸溶液,所用碱液如氨水或尿素。当发酵至48小时可将pH调至6.0-6.3或7.7-8.0刺激芽孢产生。
当发酵至48小时后,可降低溶氧,控制溶氧在20-30%以便刺激芽孢的产生。
当发酵48小时后,可降低温度刺激芽孢产生,将温度控制在25-32℃,不仅可促进芽孢产生,还有利于保持纳豆激酶的稳定性,使其不被降解。
当发酵培养基采用大豆饼粉为原料时,其配方是:大豆饼粉20-80g、葡萄糖20-40g、MgSO4 0.5-1.0g、Na2HPO4 6.0-12.0g、NaH2PO4 1.0-2.0g、CaCl2 0.2-0.4g、1000ml水pH7.0-7.2。
当发酵培养基采用大豆豆粉为原料时,其配方是:大豆豆粉20-80g、葡萄糖20-40g、MgSO4 0.5-1.0g、Na2HPO4 6.0-12.0g、NaH2PO4 1.0-2.0g、CaCl2 0.2-0.4g、1000ml水、pH7.0-7.2。
当发酵培养基采用大豆豆粕为原料时,其配方是:大豆豆粕20-80g、葡萄糖20-40g、MgSO4 0.5-1.0g、Na2HPO4 6.0-12.0g、NaH2PO4 1.0-2.0g、CaCl2 0.2-0.4g、1000ml水、pH7.0-7.2。
当发酵培养基采用大豆豆浆为原料时,其配方是:大豆豆浆125-250ml、葡萄糖20-40g、MgSO4 0.5-1.0g、Na2HPO4 6.0-12.0g、NaH2PO4 1.0-2.0g、CaCl2 0.2-0.4g、用水补足到1000ml、pH7.0-7.2。
上述大豆饼粉、大豆豆粉、大豆豆粕必须磨细,过80-120目筛待用,发酵培养基采取115-125℃,15-25分钟灭菌。
(二)制备大豆肽液体食品和益菌片
·固液分离
发酵结束后,经无菌试验确定无污染杂菌后,采用了冷冻离心法、膜过滤法或离心过滤法中一种或两种联合使用进行固液分离。采用膜过滤法分离固液时,尽量减少发酵液中悬浮物透过膜。采用重力离心处理时,检测离心上清液活菌数,选择转速应大于5000r/min,使发酵液中悬浮物离心下来,离心过滤法处理时,可将离心和过滤结合起来,在离心过程中同时完成过滤。
·制备大豆肽液体食品
澄清上清液,用纤维蛋白平板法测定液体中纳豆激酶酶活力,要求纳豆激酶含量达到100-500U/ml,大豆肽氨基酸含量为20-120g/L。检验合格后,添加少量食品添加剂调配成大豆肽液体食品;
注:纳豆激酶酶活力单位定义为:在37℃1min内分解1nmol溶解于0.1mol/L磷酸缓冲溶液(pH7.4)中的浓度5×10-4mol/L的H-D-Val-Leu-Lys-Pna的纳豆激酶量为1U。或者以尿激酶或纤溶酶的活性单位来表示。
·制备益菌片
将分离得到菌泥进行活菌计数,采用冷冻真空干燥、流化床干燥、喷雾干燥或真空干燥法进行干燥,干燥后再次进行活菌计数,要求活菌损失不大于80-85%。加入赋形剂如淀粉、轻质碳酸纳等,充分搅拌后即可得纳豆杆菌益菌片。
有益效果:
本发明利用微生物发酵技术,依靠纳豆杆菌繁殖快,易培养,产芽孢,代谢能力强等优点,以低廉的原料作培养基,通过特定发酵工艺进行发酵控制,发酵液经固液分离后,离心液制成大豆肽液体食品,菌泥制成纳豆杆菌益生菌片,发酵产品得到综合利用。得到益菌片安全性好、活菌数高,而肽液体食品又具纤溶活性。
该生产方法所采用的菌种为纳豆杆菌,系属枯草芽孢杆菌一个变种,所以纳豆芽孢杆菌具有芽孢,因而能耐酸,耐碱,耐高温及耐挤压,在制粒过程及酸性胃环境中均能保持高度的稳定性;其具有抑制沙门氏菌、伤寒菌、痢疾菌及0157:H7大肠杆菌等致病菌作用;而且由于纳豆杆菌长期作为生产纳豆菌种,其具有高度安全性。由于豆类可诱导纳豆杆菌产生纳豆激酶、蛋白酶、脂肪酶、淀粉酶、植酸酶等100种以上酶,所以纳豆杆菌利用豆饼、豆粕、豆粉、豆浆等廉价原料进行发酵时具有较高发酵能力,不仅解决发酵法生产大豆肽所存在的成本高问题,而且是大豆肽液体食品中还富含大量的纳豆激酶,以致使大豆肽液体食品具有抗胆固醇、抗血栓形成,同时具有强烈体外和体内纤溶活性双重功效,使本发明提供了一种营养丰富、容易吸收的保健食品,可广泛用于医药、食品、饲料添加剂等诸多领域,有着诱人的经济前景;而且该制备方法工艺简单,周期短,成本低,适合工业化生产。从而为蛋白肽工业发展提供有效途径,具有较大经济效益和社会效益。
具体实施方式
实施例1:
(一)制备发酵液
·菌种的制备
生产菌种为纳豆杆菌(Bacillus natto,AS 1.107)。将纳豆杆菌在琼脂斜面上37℃培养18小时后,镜检,菌体生长良好,4℃冰箱保存待用。斜面培养基灭菌条件110℃,20分钟。
其中斜面培养基为:牛肉膏 5.0g
蛋白胨 10.0g
氯化钠 5.0g
琼脂 18.0g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
·种子培养
将在斜面培养基培养好的菌种接一环加入到种子培养基中,种子培养基灭菌条件110℃,20分钟;在摇床上200rpm转速下,37℃振荡培养20小时后,得到适合接种的种子培养物。
其中种子培养基为:蛋白胨 10.0g
葡萄糖 20.0g
K2HPO4 1.0g
MgSO4 0.5g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
·发酵培养
将种子培养物以2%的接种量接种于新鲜发酵培养基,40℃培养60小时进行深层液体发酵。在发酵过程中,应控制pH值在6.0-8.0。调节pH值办法是:初始pH的调节可以通过添加浓度为1.0%磷酸缓冲液实现;发酵期间pH的调节,视发酵液pH的具体情况,并根据发酵需要,通过流加酸或碱溶液实现。所用酸为磷酸溶液,所用碱为氨水。溶氧通过控制通风量调节,溶氧应控制在20-40%,芽孢生成率达70%。
其中发酵培养基为:大豆饼粉 20g
葡萄糖 20g
MgSO4 0.5g
Na2HPO4 6.0g
NaH2PO4 1.0g
CaCl2 0.2g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
大豆饼粉必须磨细,过100目筛待用。发酵培养基采取115℃,25分钟灭菌。
(二)大豆肽液体食品和益菌片
·固液分离
发酵结束后,经无菌试验确定无污染杂菌后,采用了冷冻离心法进行固液分离,4℃下5000r/min离心15分钟。
·制备大豆肽液体食品
澄清上清液,用纤维蛋白平板法测定液体中纳豆激酶酶活力。用氨基酸测定仪测定溶液中大豆肽氨基酸含量。纳豆激酶含量为250U/ml,大豆肽氨基酸含量为6g/L。检验合格后,添加少量蛋白糖和柠檬酸调配成大豆肽液体食品。
·制备益菌片
将分离得到菌泥进行活菌计数,采用冷冻真空干燥后再次进行活菌计数,活菌损失不大于80%。其加入赋形剂淀粉,充分搅拌后即可得纳豆杆菌益菌片。该益菌片活菌数达到1.1亿个/g。
实施例2:
菌种的制备时,将纳豆杆菌在琼脂斜面上36℃培养2Q小时,斜面培养基灭菌条件为125℃,15分钟。
其中斜面培养基为:牛肉膏 10.0g
蛋白胨 20.0g
氯化钠 10.0g
琼脂 20.0g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
种子培养时,种子培养基灭菌条件125℃,15分钟;36℃培养24小时。
其中种子培养基为:蛋白胨 15.0g
葡萄糖 30.0g
K2HPO4 1.5g
MgSO4 0.75g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
将种子培养物以4%的接种量接种于经120℃,20分钟灭菌处理的新鲜发酵培养基,35℃培养66小时进行深层液体发酵。 初始pH的调节可以通过添加浓度为1.8%磷酸缓冲液实现。发酵至48小时将pH升高到7.7-8.0。
其中发酵培养基:大豆饼粉 50g
葡萄糖 30g
MgSO4 0.7g
Na2HPO4 9.0g
NaH2PO4 1.5g
CaCl2 0.3g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
发酵培养基采取120℃,20分钟灭菌。赋形剂采用轻质碳酸纳。其他同实施例1。
测定液体中纳豆激酶酶活力为200U/ml,大豆肽氨基酸含量为7g/L重量,纳豆杆菌益菌片活菌数达到1.5亿个/g。
实施例3:
菌种的制备时,将纳豆杆菌在琼脂斜面上35℃培养24小时。斜面培养基灭菌条件为115℃,18分钟。
其中斜面培养基:牛肉膏 7.5g
蛋白胨 15g
氯化钠 7.5g
琼脂 19.0g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
种子培养时,种子培养基灭菌条件125℃,15分钟;35℃培养20小时。
其中种子培养基:蛋白胨 12.5g
葡萄糖 25.0g
K2HPO4 1.3g
MgSO4 0.6g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
将种子培养物以5%的接种量接种于经灭菌处理的新鲜发酵培养基,30℃培养72小时进行深层液体发酵。初始pH的调节可以通过添加浓度为2.5%磷酸缓冲液实现。发酵至48小时可降低溶氧,控制溶氧在20-30%以便刺激芽孢的产生。
其中发酵培养基:大豆饼粉 80g
葡萄糖 40g
MgSO4 1.0g
Na2HPO4 12.0g
NaH2PO4 2.0g
CaCl2 0.4g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
发酵培养基采取125℃,15分钟灭菌。发酵结束后,经无菌试验确定无污染杂菌后,采用了膜过滤法进行固液分离,其他同实施例1。
测定液体中纳豆激酶酶活力为300U/ml,大豆肽氨基酸含量为10g/L重量,益菌片活菌数达到1.2亿个/g。
实施例4:
发酵培养基:大豆豆粕 20g
葡萄糖 20g
MgSO4 0.5g
Na2HPO4 6.0g
NaH2PO4 1.0g
CaCl2 0.2g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
大豆豆粕必须磨细,过100目筛待用。
发酵至48小时后,将pH调至7.7-8.0;降低溶氧,控制溶氧在20-30%以便刺激芽孢的产生,降低温度至25℃。其他同实施例1。
测定液体中纳豆激酶酶活力为430U/ml,大豆肽氨基酸含量为7g/L重量,益菌片活菌数达到1.3亿个/g。
实施例5:
发酵培养基:大豆豆粕 50g
葡萄糖 30g
MgSO4 0.7g
Na2HPO4 9.0g
NaH2PO4 1.5g
CaCl2 0.3g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
大豆豆粕必须磨细,过100目筛待用。
发酵至48小时可将pH调至6.0-6.3刺激芽孢产生。其他同实施例1。
测定液体中纳豆激酶酶活力为360U/ml,大豆肽氨基酸含量为9g/L重量,益菌片活菌数达到1.1亿个/g。
实施例6:
发酵培养基:大豆豆粕 80g
葡萄糖 40g
MgSO4 1.0g
Na2HPO4 12.0g
NaH2PO4 2.0g
CaCl2 0.4g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
大豆豆粕必须磨细,过100目筛待用。
发酵至48小时可降低溶氧,控制溶氧在20-30%,同时将pH降低到6.0-6.3,以便刺激芽孢的产生。其他同实施例1。
测定液体中纳豆激酶酶活力为350U/ml,大豆肽氨基酸含量为6.5g/L重量,益菌片活菌数达到1.3亿个/g。
实施例7:
发酵培养基:大豆豆粉 20g
葡萄糖 20g
MgSO4 0.5g
Na2HPO4 6.0g
NaH2PO4 1.0g
CaCl2 0.2g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
大豆豆粉必须磨细,过100目筛待用。
发酵48小时后可降低温度刺激芽孢产生,将温度控制在28℃。其他同实施例1。
测定液体中纳豆激酶酶活力为450U/ml,大豆肽氨基酸含量为7.8g/L重量,益菌片活菌数达到1.1亿个/g。
实施例8:
发酵培养基:大豆豆粉 50g
葡萄糖 30g
MgSO4 0.7g
Na2HPO4 9.0g
NaH2PO4 1.5g
CaCl2 0.3g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
大豆豆粉必须磨细,过100目筛待用。
发酵至48小时可将pH调至6.0-6.3,控制溶氧在20-30%左右,将温度控制在28℃,其他同实施例1。
测定液体中纳豆激酶酶活力为500U/ml,大豆肽氨基酸含量为12g/L重量,益菌片活菌数达到1.5亿个/g。
实施例9:
发酵培养基:大豆豆粉 80g
葡萄糖 40g
MgSO4 1.0g
Na2HPO4 12.0g
NaH2PO4 2.0g
CaCl2 0.4g
水 1000ml
pH 7.0-7.2
大豆豆粉必须磨细,过100目筛待用。
发酵至48小时后可将pH调至7.7-8.0;降低溶氧,控制溶氧在20-30%以便刺激芽孢的产生,降低温度至32℃。其他同实施例1。
测定液体中纳豆激酶酶活力为490U/ml,大豆肽氨基酸含量为8g/L重量,益菌片活菌数达到1.3亿个/g。
实施例10:
发酵培养基:大豆豆浆 125ml
葡萄糖 20g
MgSO4 0.5g
Na2HPO4 6.0g
NaH2PO4 1.0g
CaCl2 0.2g
用水补足到 1000ml
pH 7.0-7.2
发酵至48小时后降低溶氧,控制溶氧在20-30%以便刺激芽孢的产生,降低温度至25℃。其他同实施例1。
测定液体中纳豆激酶酶活力为250U/ml,大豆肽氨基酸含量为7g/L重量,益菌片活菌数达到1.2亿个/g。
实施例11:
发酵培养基:大豆豆浆 180ml
葡萄糖 30g
MgSO4 0.7g
Na2HPO4 9.0g
NaH2PO4 1.5g
CaCl2 0.3g
用水补足到 1000ml
pH 7.0-7.2
发酵至48小时后可将pH调至7.7-8.0,降低温度至28℃。其他同实施例1。
测定液体中纳豆激酶酶活力为500U/ml,大豆肽氨基酸含量为5g/L重量,益菌片活菌数达到1.4亿个/g。
实施例12:
发酵培养基:大豆豆浆 250ml
葡萄糖 40g
MgSO4 1.0g
Na2HPO4 12.0g
NaH2PO4 2.0g
CacL2 0.4g
用水补足到 1000ml
pH 7.0-7.2
发酵至48小时后可将pH调至6.0-6.3,降低温度至32℃。其他同实施例1。
测定液体中纳豆激酶酶活力为480U/ml,大豆肽氨基酸含量为10g/L重量,益菌片活菌数达到1.4亿个/g。
机译: 利用芽孢杆菌菌株制备发酵大豆制品的方法和减少发酵大豆制品的风味的方法
机译: 利用芽孢杆菌GR-101和米曲霉GB-107进行固体发酵生物发酵生产具有增强蛋白酶生产能力的大豆肽的方法及其用途
机译: 利用发酵大豆制品中分离出的解淀粉芽孢杆菌制备快速发酵豆浆的方法