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利用凝胶渗透色谱处理生物检材的安眠镇静类药物检验方法

摘要

本发明公开利用凝胶渗透色谱处理生物检材的安眠镇静类药物检验方法,包括如下步骤:(1)在含有安眠镇静类药物的生物检材中加入有机溶剂A,离心,分离有机相,将得到的有机相浓缩至干,再用有机溶剂A溶解,过有机微孔滤膜后得提取液;(2)提取液进凝胶渗透色谱净化柱,用有机溶剂B淋洗,收集淋洗液,在浓缩仪上吹干,用有机溶剂C溶解后得到待测液;凝胶渗透色谱净化柱的填充相为苯乙烯-二乙烯苯共聚物;(3)利用气相色谱仪对待测液进行检测。本发明将凝胶渗透色谱技术应用到毒物分析领域,针对安眠镇静类药物,建立生物检材中简单、快速、灵敏度和回收率高的前处理技术,缩短前处理时间、减少分析成本、提高检测结果的可靠,以解决毒物分析中检材种类繁多、成分复杂的问题,为提高公安行业毒物分析检验工作的效率提供保障。

著录项

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2015-04-15

    授权

    授权

  • 2014-03-12

    实质审查的生效 IPC(主分类):G01N30/02 申请日:20130807

    实质审查的生效

  • 2014-02-05

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明涉及刑事侦查领域的药物、毒物检测方法,特别涉及一种利用凝胶渗透色谱处理生物检材的安眠镇静类药物检验方法。 

背景技术

随着技术的进步,对药物、毒物分析检验的要求越来越高,包括高重现性、高回收率、低检出限和操作简单易行等,因而急需建立一种简单、快速、灵敏度和回收率高的前处理方法。目前现有的前处理技术主要有液液萃取、固相萃取、固相微萃取等,这几种前处理技术都是根据不同化合物的性质对其进行分离提取,存在操作步骤繁琐、容易出现漏检情况。在样品前处理技术中,凝胶渗透色谱技术作为一种新型的分析技术,仪器再生能力强,无可逆吸附,对所有样品都能够完全洗脱等优点已显现了其潜在的应用前景。 

凝胶渗透色谱的理论、试验技术、仪器性能尤其是高效填充柱等方面的快速发展,其应用范围逐渐从生物化学和高分子化学扩展到工业、农业、医药、卫生等领域。目前国内外的凝胶渗透色谱研究多集中于对植物性产品如蔬菜、水果、谷物等的处理。由于血液、尿液和肝组织等生物检材中含有的蛋白质及油脂等大分子杂质难以去除,因此还没有针对血液、尿液和肝组织等生物检材中某类毒物的系统检验方法。在国内公安系统的毒物分析检测中,凝胶渗透色谱的应用还处于起步阶段,尚缺少有效可行的方法。因而建立液、尿液和肝组织等生物检材中常见药物、毒物的凝胶渗透色谱处理技术,并应 用于实际办案中是当前的一项关键任务。 

发明内容

针对现有技术中存在的不足,本发明的目的在于提供一种利用凝胶渗透色谱处理生物检材的安眠镇静类药物检验方法,提高对生物检材中蛋白以及油脂等大分子杂质的去除效率,使得对生物检材中的拟除虫菊酯类农药进行检测时分离效果好、灵敏度高。 

本发明的技术方案是这样实现的: 

利用凝胶渗透色谱处理生物检材的安眠镇静类药物检验方法,包括如下步骤:(1)在含有安眠镇静类药物的生物检材中加入有机溶剂A,离心,分离有机相,将得到的有机相浓缩至干,再用有机溶剂A溶解,过有机微孔滤膜后得提取液;(2)提取液进凝胶渗透色谱净化柱,用有机溶剂B淋洗,收集淋洗液,在浓缩仪上吹干,用有机溶剂C溶解后得到待测液;凝胶渗透色谱净化柱的填充相为苯乙烯-二乙烯苯共聚物;(3)利用气相色谱仪对待测液进行检测。 

本发明的有益效果是:本发明将凝胶渗透色谱技术应用到毒物分析领域,选择有代表性的6种安眠镇静类药物,建立血液、尿液和肝组织中简单、快速、灵敏度和回收率高的前处理技术,缩短前处理时间、减少分析成本、提高检测结果的可靠,以解决毒物分析中检材种类繁多、成分复杂的问题,为提高公安行业毒物分析检验工作的效率提供保障。 

本发明优选了提取剂,采用凝胶渗透色谱净化,气相色谱检测,建立了一种快速、准确、灵敏地测定血液、尿液、肝组织中6种安眠镇静类药物的较理想的方法,具有以下几个优点: 

1简单、高效、自动化的样品前处理方法。 

利用乙酸乙酯和环己烷的混合溶液、乙酸乙酯、二氯甲烷、环己烷或环己醇和丁酸丙酯的混合物作为血液、尿液和肝组织中6种安眠镇静类药物的提取溶剂,采用体积比为1∶1的环己烷和乙酸乙酯混合溶液作为流动相,使用凝胶渗透色谱能够有效地净化血液、尿液、肝组织提取液中的蛋白、油脂、色素等大分子杂质,实现分离并富集安眠镇静类药物。 

2毛细管气相色谱电子捕获检测器和氮磷检测器测定生物检材中6种安眠镇静类药物。 

该法检测生物样品中6种安眠镇静类药物的最小检出质量比范围30~80ng/mL,精密度1.7%~9.3%,不同添加浓度的平均回收率64.9~96.4%。通过GC/MS对6种安眠镇静类药物进行确证,空白样品中未检出6种安眠镇静类药物。 

3对凝胶渗透色谱净化条件进行了优化、对外标法定量、添加回收率以及GC-ECD、GC-NPD检测进行了研究,建立了一种快速有效的检测血液、尿液和肝组织中6种安眠镇静类药物的较为理想的方法。 

优选使用环己醇和丁酸丙酯的混合物、异戊醚和环庚烷的混合溶液、以及环己酮和乙二醇二乙醚的混合溶液作为提取溶剂,并且使用凝胶渗透色谱净化技术,能够提高对血液、尿液和肝组织中蛋白以及油脂等大分子杂质的去除效率,并且采用GC-ECD和GC-NPD检测6种安眠镇静类药物农药,使得本发明具有分离效果好、灵敏度高等优点。 

附图说明

图1A为地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑和三唑仑的标准品色谱图; 

图1B为氯丙嗪和异丙嗪的标准品色谱图; 

图2A空白血液中添加地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑和三唑仑标准品色谱图;图2B空白血液中添加氯丙嗪和异丙嗪标准品色谱图; 

图3A空白尿液中添加地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑和三唑仑标准品色谱图;图3B空白尿液中添加氯丙嗪和异丙嗪标准品色谱图; 

图4A空白肝组织中添加地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑和三唑仑标准品色谱图;图4B空白肝组织中添加氯丙嗪和异丙嗪标准品色谱图; 

图5A~图5X为空白血液、空白尿液、空白肝组织中添加安眠镇静类药物标准品在不同常温下放置一定时间的GPC净化效果比较(黑色:GPC净化前;紫色:GPC净化后);其中:图5A为空白血液中添加苯二氮卓类(在本发明中,苯二氮卓类包括:地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑和三唑仑)标准品并在4℃放置1星期;图5B为空白血液中添加苯二氮卓类标准品并在4℃放置2星期;图5C为空白血液中添加苯二氮卓类标准品并在常温放置1星期;图5D为空白血液中添加苯二氮卓类标准品并在常温放置2星期;图5E为空白尿液中添加苯二氮卓类标准品并在4℃放置1星期;图5F为空白尿液中添加苯二氮卓类标准品并在4℃放置2星期;图5G为空白尿液中添加苯二氮卓类标准品并在常温放置1星期;图5H为空白尿液中添加苯二氮卓类标准品并在常温放置2星期;图5I为空白肝组织中添加苯二氮卓类标准品并在4℃放置1星期;图5J为空白肝组织中添加苯二氮卓类标准品并在4℃放置2星期;图5K为空白肝组织中添加苯二氮卓类标准品并在常温放置1星期;图5L为空白肝组织中添加苯二氮卓类标准品并在常温放置2星期;图5M为空白血液中添加噻吩嗪类标准品(在本发明中,噻吩嗪类包括:氯丙嗪和异丙嗪)标 准品并在4℃放置1星期;图5N为空白血液中添加噻吩嗪类标准品并在4℃放置2星期;图50为空白血液中添加噻吩嗪类标准品并在常温放置1星期;图5P为空白血液中添加噻吩嗪类标准品并在常温放置2星期;图5Q为空白尿液中添加噻吩嗪类标准品并在4℃放置1星期;图5R为空白尿液中添加噻吩嗪类标准品并在4℃放置2星期;图5S为空白尿液中添加噻吩嗪类标准品并在常温放置1星期;图5T为空白尿液中添加噻吩嗪类标准品并在常温放置2星期;图5U为空白肝组织中添加噻吩嗪类标准品并在4℃放置1星期;图5V为空白肝组织中添加噻吩嗪类标准品并在4℃放置2星期;图5W为空白肝组织中添加噻吩嗪类标准品并在常温放置1星期;图5X为空白肝组织中添加噻吩嗪类标准品并在常温放置2星期;图6空白血液的GPC流出规律图(NPD)【横坐标为时间,单位:分钟】;图7空白尿液的GPC流出规律图(NPD)【横坐标为时间,单位:分钟】;图8空白肝脏的GPC流出规律图(NPD)【横坐标为时间,单位:分钟】; 

图9A~图9F为6种安眠镇静类药物单标GPC色谱图,其中:图9A为地西泮的GPC色谱图;图9B为艾司唑仑的GPC色谱图;图9C为阿普唑仑的GPC色谱图;图9D为三唑仑的GPC色谱图;图9E为氯丙嗪的GPC色谱图;图9F为异丙嗪的GPC色谱图; 

图10A为地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑和三唑仑的GPC流出规律图【横坐标为时间,单位:分钟】;图10B为氯丙嗪和异丙嗪的GPC流出规律图【横坐标为时间,单位:分钟】。 

具体实施方式

实施例1 

一、生物样品的准备 

空白血液和空白尿液均采自一周内未服用任何药物的健康志愿者;空白肝组织采自于一周内未服用任何药物的生猪。地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑、三唑仑、氯丙嗪和异丙嗪均购于国家标准物质研究中心。 

二、实验条件 

2.1标准溶液的配制 

标准储备液的配制:分别称取地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑、三唑仑、氯丙嗪和异丙嗪标准品各10mg,分别置于10mL容量瓶中,分别加少量甲醇溶解并定容至刻度,分别配制成1mg/mL的地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑、三唑仑、氯丙嗪和异丙嗪标准品储备液,4℃冰箱中保存,备用。 

分别移取一定量的单个安眠镇静类药物标准品储备液配制安眠镇静类药物混合标准溶液,即:安眠镇静类药物混合标准溶液中的溶质为地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑、三唑仑、氯丙嗪和异丙嗪。 

标准工作液的配制:分别取配制好的标准品储备液,稀释为所需浓度的工作溶液,于4℃冰箱中保存,备用。 

2.2色谱条件 

2.2.1凝胶渗透色谱条件 

净化柱:300mm×20mm,内装苯乙烯-二乙烯苯共聚物(Bio-Beads SX-3)填料;流动相:乙酸乙酯和环己烷的混合溶液(二者体积比1∶1);流速:4.7mL/min;进样量:5mL;检测波长为254nm;开始收集时间:11min;结束收集时间:18min;在线浓缩温度和真空度:1区:42℃30.0KPa;2区: 51℃24.0KPa;3区:52℃22.0KPa。 

2.2.2气相色谱条件(GC/ECD) 

2010气相色谱仪(GC/ECD)条件:DB-1(30m×0.25mm×0.25μm)石英毛细管柱,载气为高纯氮气(99.99%),流量1.0mL/min,柱温200℃(1min)→10℃/min→280℃(10min);进样口温度280℃,分流进样;检测器温度300℃。 

2.2.3气相色谱条件(GC/NPD) 

2010气相色谱仪(GC/NPD)条件:DB-1(30m×0.25mm×0.25μm)石英毛细管柱,载气为高纯氮气(99.99%),流量1.0mL/min,柱温200℃(1min)→10℃/min→280℃(11min);进样口温度280℃,分流进样;检测器温度300℃。 

2.2.4气相色谱-质谱条件(GC/MS) 

苯二氮卓类药物:2010气相色谱-质谱仪(GC/MS)条件:DB-5MS(30m×0.25mm×0.25μm)毛细管柱,载气高纯氮气(99.99%),流量1.0mL/min,柱温:在100℃保持2min、然后以30℃/min的速度升温到280℃、在280℃保持17min;传输线温度230℃;进样口温度250℃,分流进样。质谱条件:NCI电离源,电子能量70eV,离子源温度200℃。调谐方式为自动调谐,倍增电压1102V,发射电流100μA。全扫描定性分析,扫描起始时间3min,扫描范围40amu~450amu。 

吩噻嗪类药物:2010气相色谱-质谱仪(GC/MS)条件:DB-5MS(30m×0.25mm×0.25μm)毛细管柱,载气高纯氮气(99.99%),流量1.0mL/min,柱温:在100℃保持2min、然后以30℃/min的速度升温到280℃、在280℃保持17min;传输线温度230℃;进样口温度250℃,分流进样。质谱条件:EI电离源,电子能量70eV,离子源温度200℃。调谐方式为自动 调谐,倍增电压1.1kV,发射电流100μA。全扫描定性分析,扫描起始时间3min,扫描范围40amu~450amu。 

2.3实验方法 

2.3.1样品制备 

取新鲜猪肝组织或猪肉在自动匀浆机内匀浆后放入洁净的密闭容器中低温保存。 

2.3.2空白生物样品提取液的制备 

2.3.2.1取1mL空白血液【注:本发明中的空白血液是指不含有拟除虫菊酯类农药的血液,同理:本发明中的空白尿液和空白肝组织分别指不含有拟除虫菊酯类农药的尿液和肝组织】,放入15mL离心管中,混匀振荡,放置30min。加入pH10的缓冲液1.5mL,振荡混匀,在离心管中加入10mL乙酸乙酯-环己烷(1∶1),振荡10min,8000rpm离心10min,分离有机相后,再加入10mL乙酸乙酯-环己烷(1∶1)第二次提取,合并两次提取液,置于50℃快速浓缩仪上浓缩至干,用乙酸乙酯-环己烷(1∶1)流动相定容至8mL,过0.45μm有机滤膜,作为提取液。 

2.3.2.2分别取1mL空白尿液,其余步骤同步骤2.3.2.1,得空白尿液的提取液。 

2.3.2.3取匀浆后的1g肝组织,混匀振荡,放置30min。加入0.2mL甲醇充分混旋,加入pH10缓冲液1.5mL,振荡混匀,在离心管中加入10mL乙酸乙酯-环己烷(1∶1),振荡10min,8000rpm离心10min,分离有机相后,剩余残渣再加入10mL乙酸乙酯-环己烷(1∶1),振荡10min,8000rpm离心10min,分离有机相。合并两次有机相,置于35℃快速浓缩仪上浓缩至干, 用乙酸乙酯-环己烷(1∶1)流动相定容至8mL,过0.45μm有机滤膜,作为提取液。 

2.3.3、含安眠镇静类药物标准品的生物样品的提取液的制备 

2.3.3.1、添加安眠镇静类药物标准品的血液的提取液 

取1mL添加安眠镇静类药物标准品的血液,提取安眠镇静类药物,操作步骤同2.3.2.1,得到添加安眠镇静类药物标准品的血液的提取液。 

2.3.3.2、添加安眠镇静类药物标准品的尿液的提取液 

取1mL添加安眠镇静类药物标准品的尿液,提取安眠镇静类药物,操作步骤同2.3.2.2,得到添加安眠镇静类药物标准品的尿液的提取液。 

2.3.3.3、添加安眠镇静类药物标准品的肝组织的提取液 

取1g添加安眠镇静类药物标准品的匀浆后的肝组织,提取安眠镇静类药物,操作步骤同2.3.2.3,得到添加安眠镇静类药物标准品的肝组织的提取液。 

2.3.3凝胶渗透色谱净化条件 

2.3.3.1凝胶渗透色谱洗脱曲线 

进4.8mL浓度为1μg/ml的安眠镇静类药物混合标准溶液到GPC净化系统,采用乙酸乙酯和环己烷的混合溶液(二者体积比为1∶1)作为流动相进行淋洗,流量为5ml/min,检测波长为254nm。每1min收集于一个试管中,收集20个,分别浓缩仪上浓缩至干,分别用色谱纯甲醇定容至0.1mL,得到待测液1。 

空白血液、空白尿液、空白肝组织的提取液分别进GPC上做空白洗脱曲线,得到待测液2、3和4。 

2.3.3.2凝胶渗透色谱洗脱曲线 

添加安眠镇静类药物的血液、尿液、肝组织的提取液进GPC净化系统,收集第7min~16min流出物,于J2-Scientific在线浓缩系统下将流出液浓缩至干,用色谱纯甲醇定容至0.1mL,得到待测液5、6和7,进行6种安眠镇静类药物的分析检验。 

2.3.4气相色谱定性、定量分析6种安眠镇静类药物 

2.3.4.1气相色谱定性、定量分析 

待测液1采用岛津气相色谱检测【在本发明中,苯二氮卓类安眠镇静类药物(地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑和三唑仑)采用GC-ECD检测,吩噻嗪类安眠镇静药物(氯丙嗪和异丙嗪)采用GC-NPD检测)各段流出液中药物的含量,绘制出安眠镇静类药物在凝胶渗透色谱上的流出曲线【参见图3-1A~3-1B】,从而确定淋洗溶剂的体积以及收集体积。待测液5、6和7在该色谱上进行检测(参见图3-2A、图3-2B、图3-3A、图3-3B、图3-4A、图3-4B),取得精密度以及回收率实验数据,并且可以通过外标法进行定量。 

2.3.4.2GC-MS(气相色谱仪-质谱联用仪)确证 

表3-26种安眠镇静类药物的碎片离子 

2.3.5腐败生物检材的净化 

分别取2mL空白血、2mL空白尿、5g空白肝组织,分别放入15mL离心管 中,分别加入安眠镇静类药物标准溶液,然后均在4℃和常温条件下放置1周和2周后,分别参照“步骤2.3.3含安眠镇静类药物标准品的生物样品的提取液的制备中2.3.3.1、2.3.3.2和2.3.3.3”中提取液的制备方法制备腐败生物样品提取液,进行GPC净化,GC-ECD和GC-NPD检测(检测结果参见图3-5A~3-5X)。 

三、结果与讨论 

3.1提取溶剂的选择 

苯二氮卓类安眠镇静类药物(地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑和三唑仑)和吩噻嗪类安眠镇静药物(氯丙嗪和异丙嗪)均属于弱碱性药物,在水中溶解度大,碱性条件下以游离状态存在,溶于有机溶剂。本实施例首先对提取溶液的pH进行比较,最终确定回收率较高的pH为10。在提取溶剂方面,选择乙酸乙酯和环己烷的混合溶液、乙酸乙酯、二氯甲烷、环己烷或环己醇和丁酸丙酯的混合物,在pH为10的条件下对血液、尿液和肝脏中的药物进行提取比较。结果表明,环己醇和丁酸丙酯的混合物中环己醇和丁酸丙酯体积比为2∶11、异戊醚和环庚烷的混合溶液中异戊醚和环庚烷的体积比为3∶5、环己酮和乙二醇二乙醚的混合溶液中环己酮和乙二醇二乙醚的体积比为4∶3时回收率依次升高。 

3.2凝胶渗透色谱的检测波长的选择 

为了满足分离杂质和药物的需要,利用全波段UV-可见分析仪器进行检测,找出安眠镇静类药物的最大吸收波长,经过反复试验,发现在254nm时,安眠镇静类药物都有较大的吸收,能满足检测的要求,所以把凝胶渗透色谱检测波长定为254nm。 

3.3凝胶色谱流动相的选择 

为确保安眠镇静类药物和杂质能够最大程度的分离,而且分析周期短,且不干扰安眠镇静类药物农药和杂质分离的检测,发现乙酸乙酯、环己烷在254nm时吸收较小,分别对乙酸乙酯和环己烷的体积比做了多种配比试验,结果表明当乙酸乙酯和环己烷的体积比为1∶1时作为流动相时,能满足上述要求,基线平直,分离效果较好。 

3.4GPC净化效果 

3.4.1空白血液、空白尿液、空白肝组织添加的净化效果 

研究GPC凝胶柱对空白血液、尿液、肝脏添加安眠镇静类药物的分离、净化效果进行如下实验。6种安眠镇静类药物标准品色谱图见图3-1。空白样品添加6种安眠镇静类药物的样品经GPC净化后,经GC-ECD和GC-NPD检测,色谱图见参见图3-2A、图3-2B、图3-3A、图3-3B、图3-4A和图3-4B。 

3.4.2腐败血液、尿液、肝组织中添加安眠镇静类药物的净化效果 

将分别于4℃和常温放置1周、2周的添加安眠镇静类药物的生物样品的提取液,经GPC净化,GC-NPD检测,得到色谱图(图2-5A~2-5X)。 

3.5空白血液、尿液、肝脏样品的GPC流出规律 

将空白血液、尿液、肝脏样品待测液2、3和4分别进GC-NPD检测出各段流出液杂质的含量,结果见图3-6、3-7和3-8。空白血液提取液中的杂质(油脂、色素、蛋白质等)在凝胶渗透色谱柱上是在第3min~11min时流出,而在6min~10min流出75%的杂质。空白尿液提取液中的杂质(色素、蛋白质等)在凝胶渗透色谱柱上是在第3min~14min时流出,而在5min~10min流出85%的杂质。空白肝脏提取液中的杂质(油脂、色素、蛋白质等)在凝 胶渗透色谱柱上是在第4min~12min时流出,而在5min~10min流出85%的杂质。 

3.66种药物的GPC流出规律 

分别将浓度为50μg/mL的6种药物单标(地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑和三唑仑、氯丙嗪和异丙嗪)5mL进样GPC净化系统【采用环己烷-乙酸乙酯(50∶50,v/v)复溶混匀,定容至8mL后进样】,进样量为5mL,采用环己烷-乙酸乙酯(1∶1,v/v)作为流动相进行淋洗,流量为4.7mL/min,检测波长为254nm,记录每种农药的色谱参数。6药物单标GPC色谱图见图3-9A~图3-9F。 

检测待测液1各段流液中安眠镇静类药物的含量,结果见图3-10所示。从图3-10中看出,6种药物在凝胶渗透色谱柱上都是在第8min~14min时流出。在样品过凝胶渗透色谱柱净化时,为了最大限度的去除油脂和其他色素、蛋白质等大分子的干扰,而且对血液、尿液、肝脏等样品中的6种药物有较高的回收,只需收集8min~14min流出液,回收率基本在60%~94%。 

3.76种安眠镇静类药物的标准工作曲线和检出限 

分别移取地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑和三唑仑、氯丙嗪和异丙嗪标准储备液一定量,用甲醇依次稀释终浓度范围在200~5000ng/mL,按照GC-NPD和GC-ECD仪器条件对标准品进行分析,用目标物的峰面积(Y)对标准浓度(X)进行线性回归,从而得到一系列的标准工作曲线,见表3-4。在此色谱条件下,以信噪比S/N=3计,计算得到检出限。6种安眠镇静类药物在200~5000ng/mL浓度范围内有良好的线性关系。 

表3-46种安眠镇静类药物的标准工作曲线和最小检出限 

3.86种安眠镇静类药物的添加回收率 

GPC净化地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑和三唑仑、氯丙嗪和异丙嗪的浓度分别为1.0、0.5、0.1μg/mL的添加血液、尿液以及浓度为1.0、0.5、0.1μg/g的肝脏组织,GC-NPD和GC-ECD测定,添加回收率见表3-5、3-6和3-7。从表中可以看出:采用乙酸乙酯和环己烷的混合溶液(二者的体积比为1∶1)为提取溶剂,并采用凝胶渗透色谱净化6种安眠镇静类药物的回收率均在70%以上,且精密度(RSD)小于10%。 

表3-5血液中6种安眠镇静类药物经GPC净化后的添加回收率和精密度 

表3-6尿液中6种安眠镇静类药物经GPC净化后的添加回收率和精密度 

表3-7肝脏中6种安眠镇静类药物经GPC净化后的添加回收率和精密度 

3.96种安眠镇静类药物的方法线性范围与提取检测限 

取空白血液1mL、空白尿液1mL、空白肝组织1g,分别添加地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑和三唑仑、氯丙嗪和异丙嗪,浓度范围在200-5000ng/mL,经过提取和GPC净化后,分别参照“2.3、实验方法中2.3.3.1、2.3.3.2和2.3.3.3”中提取液的制备方法制备相应的提取液,经GPC净化系统净化,100μL甲醇定容,GC-NPD分析检测,建立5个点,以药物浓度为横坐标,样品峰面积比为纵坐标得到线性回归方程。由此可见,GPC净化后、GC-NPD检 测6种安眠镇静类药物在200-5000ng/mL范围内线性良好,分别见表2-8、2-9和2-10。取空白血1mL、空白尿1mL、空白肝组织1g,分别添加地西泮、艾司唑仑、阿普唑仑和三唑仑、氯丙嗪和异丙嗪的浓度范围在10~200ng/mL,分别参照“2.3、实验方法中2.3.3.1、2.3.3.2和2.3.3.3”中提取液的制备方法制备相应的提取液,经GPC净化系统净化,经检测,得GC-NPD和GC-MS分析最低提取检测限(S/N=3/1)分别如表3-8、3-9和3-10所示。 

表3-8血液中添加6种安眠镇静类药物的方法线性方程和最小检出限 

表3-9尿液中添加6种安眠镇静类药物的方法线性方程和最小检出限 

表3-10肝组织中添加6种安眠镇静类药物的方法线性方程和最小检出限 

实施例2 

本实施例与实施例1的区别在于:提取溶剂(即有机溶剂A)为环己醇和丁酸丙酯的混合溶液,混合溶液中环己醇和丁酸丙酯体积比为2∶11;其余实验条件均相同;以环己醇和丁酸丙酯的混合溶液作为提取溶剂,6种安眠镇静类药物的添加回收率和精密度如表3-11~3-13所示。 

表3-11血液中6种安眠镇静类药物经GPC净化后的添加回收率和精密度 

表3-12尿液中6种安眠镇静类药物经GPC净化后的添加回收率和精密度 

表3-13肝脏中6种安眠镇静类药物经GPC净化后的添加回收率和精密度 

从表3-11~3-13中可以看出,以环己醇和丁酸丙酯的混合溶液作为提起溶剂,采用凝胶渗透色谱净化含有6种安眠镇静类药物生物样品的回收率均在75%以上,且精密度(RSD)小于5%。 

实施例3 

本实施例与实施例1的区别在于:提取溶剂(即有机溶剂A)为异戊醚和环庚烷的混合溶液,混合溶液中异戊醚和环庚烷的体积比为3∶5;其余实验条件均相同;以异戊醚和环庚烷的混合溶液作为提取溶剂,6种安眠镇静类药物的添加回收率和精密度如表3-14~3-16所示。 

表3-14血液中6种安眠镇静类药物经6PC净化后的添加回收率和精密度 

表3-15尿液中6种安眠镇静类药物经GPC净化后的添加回收率和精密度 

表3-16肝脏中6种安眠镇静类药物经GPC净化后的添加回收率和精密度 

从表3-14~3-16中可以看出,以异戊醚和环庚烷的混合溶液作为提起溶剂,采用凝胶渗透色谱净化含有6种安眠镇静类药物生物样品的回收率均在85%以上,且精密度(RSD)小于5%。 

实施例4 

本实施例与实施例1的区别在于:提取溶剂(即有机溶剂A)环己酮和乙二醇二乙醚的混合溶液,混合溶液中环己酮和乙二醇二乙醚的体积比为4∶3;其余实验条件均相同;以环己酮和乙二醇二乙醚的混合溶液作为提取溶 剂,6种安眠镇静类药物的添加回收率和精密度如表3-17~3-19所示。 

表3-17血液中6种安眠镇静类药物经GPC净化后的添加回收率和精密度 

表3-18尿液中6种安眠镇静类药物经GPC净化后的添加回收率和精密度 

表3-19肝脏中6种安眠镇静类药物经GPC净化后的添加回收率和精密度 

从表3-17~3-19中可以看出,以环己酮和乙二醇二乙醚的混合溶液作为提起溶剂,采用凝胶渗透色谱净化含有6种安眠镇静类药物生物样品的回收率均在90%以上,且精密度(RSD)小于5%。 

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