一种提取植物多酚的提取液及提取方法

摘要

本发明属于植物天然产物制备技术领域，具体公开了一种从菜籽饼粕或菜籽皮、花生壳、苹果、柿子、葡萄、柑桔、萝卜、大豆、枣、石榴皮、香蕉皮、甘薯、山楂皮、番茄、坚果、燕麦或荔枝中提取植物多酚的提取液及提取方法。该提取液是pH为7.5~10.0的双氧水溶液或pH为7.5~10.0的次氯酸钠溶液或pH为7.5~10.0的次氯酸钾溶液或pH为7.5~10.0的次氯酸钙溶液。将以上原料粉碎后，过筛，然后用上述提取液进行提取，在提取过程中可以进行超声波或微波处理，经离心分离去除残渣，即得到含有植物多酚浸提液。本发明提取的植物多酚来源广，在工业上有很好的推广应用前景。

说明书

技术领域

本发明属于天然产物提取技术领域，具体涉及一种从菜籽饼粕或菜籽皮、花生壳、苹果、柿子、 葡萄、柑桔、萝卜、大豆、枣、石榴皮、香蕉皮、甘薯、山楂皮、番茄、坚果、燕麦、荔枝中提取 植物多酚的植物多酚提取液及提取方法，与农产品和食品加工领域有关。

背景技术

植物多酚（Plant polyphenol）又名植物单宁（Vegetable tannin），为植物体内的复杂酚类 次生代谢物，具有多元酚结构，主要存在于植物的皮、根、叶、果中，在植物中的含量仅次于纤维 素、半纤维素和木质素。多酚物质中的类黄酮是抗氧化剂。医学研究表明，氧化损伤是导致许多慢 性病，如心血管病，癌症和衰老性疾病的重要原因，多酚的抗氧化功能可以对这些慢性病起到预防 作用。多酚作为一种抗氧化剂，对预防心血管疾病有非常好的疗效，这一点得到了中外科学家多年 来的实验论证。从20世纪80年代后期开始，国内外从多个领域、多种角度对植物多酚开展了基础研 究和应用研究。

多酚的独特结构予了它一些列独特的化学性质，使其具有抗肿瘤、抗氧化、抗动脉硬化、防治 冠心病与中风等心脑血管疾病以及抗菌等多种理功能，在食品、医药、化妆品、日用化学品以及保 健品等方起到了一定的利用。随着天然产物开发的逐渐兴起，植物多酚因其在植物界分布的广泛性、 生理功能的多样性以及来源丰富性等特点，逐渐为当前研究的热点，被形象地称为“一座有待开发 的金矿”。到目前为止，国内外对植物多酚的提取方法和工艺做了大量的研究。植物多酚的提取方 法主要有有机溶剂法和水浸法，以及在此基础上衍生的新方法，如水提—沉淀法、超声波和微波辅 助法等。但这些方法提取植物多酚的得率不高，且生产工艺、设备较为复杂，成本高，难以满足工 业化生产的需要。

发明内容

本发明的目的在于弥补现有植物多酚提取技术的不足，提供一种从菜籽饼粕或菜籽皮、花生壳、 苹果、柿子、葡萄、柑桔、萝卜、大豆、枣、石榴皮、香蕉皮、甘薯、山楂皮、番茄、坚果、燕麦、 荔枝中提取植物多酚的提取方法，该方法提取植物多酚的得率较高，且方法简单，对设备要求 低，节省成本。

实现本发明目的所采用的技术方案是：

一种从菜籽饼粕或菜籽皮、花生壳、苹果、柿子、葡萄、柑桔、萝卜、大豆、枣、石榴皮、香蕉 皮、甘薯、山楂皮、番茄、坚果、燕麦、荔枝中提取植物多酚的提取液，该提取液为pH为7.5-10.0 的氢氧化钠双氧水溶液或pH为7.5-10.0的氢氧化钠次氯酸钠溶液或pH为7.5-10.0的氢氧化钠次 氯酸钾溶液或pH为7.5-10.0的氢氧化钠次氯酸钙溶液或pH为7.5-10.0的氢氧化钾双氧水溶液或 pH为7.5-10.0的氢氧化钾次氯酸钠溶液或pH为7.5-10.0的氢氧化钾次氯酸钾溶液或pH为 7.5-10.0的氢氧化钾次氯酸钙溶液或pH为7.5-10.0的氢氧化钙双氧水溶液或pH为7.5-10.0的氢 氧化钙次氯酸钠溶液或pH为7.5-10.0的氢氧化钙次氯酸钾溶液或pH为7.5-10.0的氢氧化钙次氯 酸钙溶液或pH为7.5-10.0的氨水双氧水溶液或pH为7.5-10.0的氨水次氯酸钠溶液或pH为 7.5-10.0的氨水次氯酸钾溶液或pH为7.5-10.0的氨水次氯酸钙溶液或pH为7.5-10.0的加有磷酸 盐缓冲液的双氧水溶液或pH为7.5-10.0的加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钠溶液或pH为7.5-10.0的 加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钾溶液或pH为7.5-10.0的加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钙溶液或pH为 7.5-10.0的加有硼砂-氯化钙缓冲液的双氧水溶液或pH为7.5-10.0的加有硼砂-氯化钙缓冲液的次 氯酸钠溶液或pH为7.5-10.0的加有硼砂-氯化钙缓冲液的次氯酸钾溶液或pH为7.5-10.0的加有 硼砂-氯化钙缓冲液的次氯酸钙溶液或pH为7.5-10.0的加有氨氯化铵缓冲液的双氧水溶液或pH 为7.5-10.0的加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钠溶液或pH为7.5-10.0的加有氨-氯化铵缓冲液的 次氯酸钾溶液或pH为7.5-10.0的加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钙溶液。

其中

所述的提取液配方及制备方法为：

（1）在双氧水溶液中加入氢氧化钠或氢氧化钾或氢氧化钙或氨水或磷酸盐缓冲液或硼砂-氯化钙 缓冲液或氨-氯化铵缓冲液得到氢氧化钠双氧水溶液或氢氧化钾双氧水溶液或氢氧化钙双氧水溶液 或氨水双氧水溶液或加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液或加有硼砂-氯化钙缓冲液的双氧水溶液或加 有氨-氯化铵缓冲液的双氧水溶液；

（2）在次氯酸钠溶液中加入氢氧化钠或氢氧化钾或氢氧化钙或氨水或磷酸盐缓冲液或硼砂-氯化 钙缓冲液或氨-氯化铵缓冲液得到氢氧化钠次氯酸钠溶液或氢氧化钾次氯酸钠溶液或氢氧化钙次氯 酸钠溶液或氨水次氯酸钠溶液或加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钠溶液或加有硼砂-氯化钙缓冲液的次 氯酸钠溶液或加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钠溶液；

（3）在次氯酸钾溶液中加入氢氧化钠或氢氧化钾或氢氧化钙或氨水或磷酸盐缓冲液或硼砂-氯化 钙缓冲液或氨-氯化铵缓冲液得到氢氧化钠次氯酸钾溶液或氢氧化钾次氯酸钾溶液或氢氧化钙次氯 酸钾溶液或氨水次氯酸钾溶液或加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钾溶液或加有硼砂-氯化钙缓冲液的次 氯酸钾溶液或加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钾溶液；

（4）在次氯酸钙溶液中加入氢氧化钠或氢氧化钾或氢氧化钙或氨水或磷酸盐缓冲液或硼砂-氯化 钙缓冲液或氨-氯化铵缓冲液得到氢氧化钠次氯酸钙溶液或氢氧化钾次氯酸钙溶液或氢氧化钙次氯 酸钙溶液或氨水次氯酸钙溶液或加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钙溶液或加有硼砂-氯化钙缓冲液的次 氯酸钙溶液或加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钙溶液。

所述的磷酸盐缓冲液配方及制备方法为：

（1）取NaH₂PO₄·2H₂O或NaH₂PO₄·H₂O，加重蒸水至1000ml溶解，配制成溶液0.2mol/L的Na₂HPO₄溶液；

（2）取Na₂HPO₄·12H₂O或Na₂HPO₄·7H₂O或Na₂HPO₄·2H₂O，加重蒸水至1000ml溶解，配制成0.2mol/L 的Na₂HPO₄溶液；

（3）将步骤（2）制备的0.2mol/L的NaH₂PO₄溶液和0.2mol/L的Na₂HPO₄·12H₂O溶液充分混合即 得磷酸盐缓冲液，通过调整NaH₂PO₄溶液和Na₂HPO₄·12H₂O溶液体积比调节其pH至7.5-10.0。

所述的硼砂-氯化钙缓冲液配方及制备方法为：取硼砂，氯化钙，加水800ml溶解后，用1mol/L 盐酸溶液调节pH至7.5-10.0，加水稀释至1000ml，得硼砂-氯化钙缓冲液。

所述的氨氯化铵缓冲液配方及制备方法为：取氯化铵，加水溶解至100ml，再加稀氨溶液调节 pH至7.5-10.0，得氨－氯化铵缓冲液。

申请人提供了一种利用上述制备植物多酚提取液从菜籽饼粕或菜籽皮、花生壳、苹果、柿子、葡 萄、柑桔、萝卜、大豆、枣、石榴皮、香蕉皮、甘薯、山楂皮、番茄、坚果、燕麦或荔枝中提取植 物多酚的方法，其具体步骤是：将以上所述的原料粉碎，向其中的原料之一中添加权利要求1-5所 述的植物多酚提取液，所述的原料与所述的植物多酚提取液的质量体积比为1:15-1:30，在50-70 ℃下搅拌，提取2.5-4.0小时，经离心分离去除残渣，即得到含有植物多酚浸提液。

所述的从菜籽饼粕或菜籽皮、花生壳、苹果、柿子、葡萄、柑桔、萝卜、大豆、枣、石榴皮、香 蕉皮、甘薯、山楂皮、番茄、坚果、燕麦、荔枝中提取植物多酚的提取方法，其特征在于：将以上 所述的原料粉碎，置于30-60℃下干燥，使其水分至5%以下，然后过20-100目筛，得到以上原料 的粉末。

所述的双氧水与以上所述的原料的体积质量比为2.4:1-6:1。

在以上原料中加入所述的植物多酚提取液后浸提的过程中，使其处于功率为0-10000W的超声波 下处理0-30min或功率为0-80000W的微波下处理0-1min。

将得到含有植物多酚浸提液后，将其定容，然后用Folin-酚比色法在765nm进行比色，定量 测量。

与现有技术相比，本发明的优点是：

本发明的植物多酚提取液为碱性双氧水水溶液，在碱性条件下，植物多酚离子化程度增强，使 得在溶液中的溶解度增大，因此采用该植物多酚提取液和提取方法能够充分从菜籽饼粕或菜籽皮、 花生壳、苹果、柿子、葡萄、柑桔、萝卜、大豆、枣、石榴皮、香蕉皮、甘薯、山楂皮、番茄、坚 果、燕麦、荔枝中的植物多酚，得率较高，方法简单，对设备要求低，节省成本，易于工业化生产。

本发明在提取过程中利用微波强化固液浸取的方法是颇具发展潜力的一种新型辅助提取技术， 其原理是微波射线辐射于溶剂并透过细胞壁到达细胞内部，由于溶剂及细胞液吸收微波能，细胞内 部温度升高，压力增。当压力超过细胞壁的承受能力时，细胞壁破裂，位于细胞内部的有效成分从 细胞中释放出来，传递转移到溶剂周围被溶剂溶解。微波辐射辅助提取法具有选择性高，提取时间 短、易为挥发性成分的提取得率高以及不需要特殊的分离步骤等优点。

本发明在提取过程中利用超声波强化固液浸取的方法也是颇具发展潜力的一种新型辅助提取 技术，其原理是超声波的振动作用能够提高破碎速度，缩短破碎时间，促进化学物质向溶剂中溶解； 同时超声波的空化效应、搅拌等作用能够强化浸提液的对流，减少扩散阻力，促使传质速度加快， 从而扩大透析膜的孔径，使得多酚等大分子固形物更加容易渗出，适合对植物多酚进行提取。经过 超声波处理的浸提物，其结构和性质不会发生变化，且提取时间短，得率较高等优点。

具体实施方式

下面通过具体实施例对本发明作进一步的说明，但本发明的保护内容不局限于以下实施例。

本发明实施例中采用以下方法对菜籽饼粕或菜籽皮、花生壳、苹果、柿子、葡萄、柑桔、萝卜、 大豆、枣、石榴皮、香蕉皮、甘薯、山楂皮、番茄、坚果、燕麦、荔枝进行如下步骤的预处理：将 以上原料粉碎，置于30-60℃温度下干燥，使其水分降至5%以下，然后过20-100目筛，得到以上 原料的粉末，备用。

实施例1相关提取液制备

提取液制备：

（1）在双氧水溶液中加入氢氧化钠或氢氧化钾或氢氧化钙或氨水或磷酸盐缓冲液或硼砂-氯化钙 缓冲液或氨-氯化铵缓冲液得到氢氧化钠双氧水溶液或氢氧化钾双氧水溶液或氢氧化钙双氧水溶液 或氨水双氧水溶液或加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液或加有硼砂-氯化钙缓冲液的双氧水溶液或加 有氨-氯化铵缓冲液的双氧水溶液；

（2）在次氯酸钠溶液中加入氢氧化钠或氢氧化钾或氢氧化钙或氨水或磷酸盐缓冲液或硼砂-氯化 钙缓冲液或氨-氯化铵缓冲液得到氢氧化钠次氯酸钠溶液或氢氧化钾次氯酸钠溶液或氢氧化钙次氯 酸钠溶液或氨水次氯酸钠溶液或加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钠溶液或加有硼砂-氯化钙缓冲液的次 氯酸钠溶液或加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钠溶液；

（3）在次氯酸钾溶液中加入氢氧化钠或氢氧化钾或氢氧化钙或氨水或磷酸盐缓冲液或硼砂-氯化 钙缓冲液或氨-氯化铵缓冲液得到氢氧化钠次氯酸钾溶液或氢氧化钾次氯酸钾溶液或氢氧化钙次氯 酸钾溶液或氨水次氯酸钾溶液或加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钾溶液或加有硼砂-氯化钙缓冲液的次 氯酸钾溶液或加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钾溶液；

（4）在次氯酸钙溶液中加入氢氧化钠或氢氧化钾或氢氧化钙或氨水或磷酸盐缓冲液或硼砂-氯化 钙缓冲液或氨-氯化铵缓冲液得到氢氧化钠次氯酸钙溶液或氢氧化钾次氯酸钙溶液或氢氧化钙次氯 酸钙溶液或氨水次氯酸钙溶液或加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钙溶液或加有硼砂-氯化钙缓冲液的次 氯酸钙溶液或加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钙溶液。

其中

磷酸盐缓冲液配方及制备方法为：

（1）取NaH₂PO₄·2H₂O或NaH₂PO₄·H₂O，加重蒸水至1000ml溶解，配制成0.2mol/L的Na₂HPO₄溶 液；

（2）取Na₂HPO₄·12H₂O或Na₂HPO₄·7H₂O或Na₂HPO₄·2H₂O，加重蒸水至1000ml溶解，配制成0.2mol/L 的Na₂HPO₄溶液；

（3）将步骤（2）制备的0.2mol/L的NaH₂PO₄溶液和0.2mol/L的Na₂HPO₄·12H₂O溶液充分混合即 得磷酸盐缓冲液，通过调整NaH₂PO₄溶液和Na₂HPO₄·12H₂O溶液体积比调节其pH至7.5-10.0，于室 温下保存备用。

所述的硼砂氯化钙缓冲液配方及制备方法为：取硼砂，氯化钙，加水800ml溶解后，用1mol/L 盐酸溶液调节pH至7.5-10.0，加水稀释至1000ml，得硼砂-氯化钙缓冲液。

所述的-氨氯化铵缓冲液配方及制备方法为：取氯化铵，加水溶解至100ml，再加稀氨溶液调节 pH至7.5-10.0，得氨-氯化铵缓冲液。

实施例2

取1g预处理后的油菜籽饼粕或油菜籽皮（对油菜品种没有限制，原料预处理的方法是：应用 常规粉碎机将以上原料粉碎，置于30-60℃下干燥，使其水分降至5%以下，然后过20-100目筛， 得到预处理的原料的粉末）粉末，然后向其中的原料中添加实施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的 双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植物多酚提取液的体积为 25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中双氧水的体积为1.5mL（双氧水与原料 的体积质量比为1.5:1），在50℃下浸提3h，经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含 有植物多酚浸提液，分析方法采用Folin-酚比色法（刘清等，Folin-Ciocalteu比色法测定大麦植 物多酚提取液中总多酚的含量[J].食品科技，2007，32(4):175-177）在765nm比色测定，本实施 例的植物多酚得率为8.57mg/g。

实施例3

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理后的花生壳粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的加有硼砂氯化钙缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中硼砂氯化钙缓冲液的pH为7.7， 所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中双氧水 的体积为1.5mL（双氧水与原料的体积质量比为1.5:1），然后在55℃下浸提3h。经离心分离去除 残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定， 本实施例的植物多酚得率为8.99mg/g。

实施例4

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的苹果粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的加有氨氯化铵缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中氨氯化铵缓冲液的pH为7.7，所 用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中双氧水的 体积为1.5mL（双氧水与原料的体积质量比为1.5:1），然后在60℃下浸提3h。经离心分离去除残 渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定， 本实施例的植物多酚得率为9.16mg/g。

实施例5

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的柿子粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的氢氧化钠双氧水溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚 提取液的质量体积比为1：25），其中双氧水的体积为1.5mL（双氧水与原料的体积质量比为1.5:1）， 然后在65℃下浸提3h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。 采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.94mg/g。

实施例6

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理后的葡萄粉末，然后向其中添加实施例1制备好的 氢氧化钾双氧水溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提 取液的质量体积比为1：25），其中双氧水的体积为1.5mL（H₂O₂与原料的体积质量比为1.5:1），然 后在70℃下浸提3h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采 用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.85mg/g。

实施例7

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的柑桔粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的氢氧化钙双氧水溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚 提取液的质量体积比为1：25），其中双氧水的体积为1.5mL（双氧水与原料的体积质量比为1.5:1）， 然后在65℃下浸提2h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。 采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.13mg/g。

实施例8

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的萝卜粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的氨水双氧水溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提取 液的质量体积比为1：25），其中双氧水的体积为1.5mL（双氧水与原料的体积质量比为1.5:1），然 后在65℃下浸提2.5h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。 采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.77mg/g。

实施例9

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的大豆粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植物 多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中双氧水的体积为 1.5mL（双氧水与原料的体积质量比为1.5:1），然后在65℃下浸提3.0h。经离心分离去除残渣（即 浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施 例的植物多酚得率为9.94mg/g。

实施例10

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的枣粉末，然后向其中添加实施例1制备好的 加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植物多 酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中双氧水的体积为1.5mL （双氧水与原料的体积质量比为1.5:1），然后在65℃下浸提3.5h。经离心分离去除残渣（即浸提 后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的 植物多酚得率为10.17mg/g。

实施例11

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的石榴皮粉末，然后向其中添加实施例1制备 好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植 物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中双氧水的体积 为1.5mL（双氧水与原料的体积质量比为1.5:1），然后在65℃下浸提4.0h。经离心分离去除残渣 （即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本 实施例的植物多酚得率为9.85mg/g。

实施例12

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的香蕉皮粉末，然后向其中添加实施例1制备 好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植 物多酚提取液的体积为10mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：10），其中双氧水的体积 为1.5mL（双氧水与原料的体积质量比为1.5:1），所用缓冲液的配制方法为：取硼砂0.572g与氯 化钙2.94g，加水约800ml溶解后，用1mol/L盐酸溶液调节pH值为7.7，加水稀释至1000ml，即 得pH＝7.7硼砂－氯化钙缓冲液。然后在65℃下浸提3.5h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的 原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚 得率为10.77mg/g。

实施例13

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的甘薯粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植物 多酚提取液的体积为15mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：15），其中双氧水的体积为 1.5mL（双氧水与原料的体积质量比为1.5:1），然后在65℃下浸提3.5h。经离心分离去除残渣（即 浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施 例的植物多酚得率为11.36mg/g。

实施例14

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的山楂皮粉末，然后向其中添加实施例1制备 好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植 物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水的体积 为1.5mL（双氧水与原料的体积质量比为1.5:1），然后在65℃下浸提3.5h。经离心分离去除残渣 （即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本 实施例的植物多酚得率为11.42mg/g。

实施例15

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的番茄粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植物 多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中双氧水的体积为 1.5mL（双氧水与原料的体积质量比为1.5:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W 功率的超声波作用下处理0min即不进行超声波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料）， 得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为 10.50mg/g。

实施例16

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的松子（粉末，然后向其中添加实施例1制备 好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植 物多酚提取液的体积为30mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：30），其中双氧水的体积 为1.5mL（双氧水与原料的体积质量比为1.5:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于 0W功率的超声波作用下处理15min即不进行超声波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原 料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得 率为10.08mg/g。

实施例17

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的燕麦粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植物 多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水的体积为 0.6mL（双氧水与原料的体积质量比为0.6:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W 功率的超声波作用下处理30min即不进行超声波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料）， 得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为 5.44mg/g。

实施例18

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的荔枝粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植物 多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水的体积为 1.5mL（双氧水与原料的体积质量比为1.5:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于5000W 功率的超声波作用下处理0min即不进行超声波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料）， 得到含有植物多酚浸提液。采用Fol in酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为 11.42mg/g。

实施例19

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为 7.7，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双 氧水的体积为2.4mL（双氧水与原料的体积质量比为2.4:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程 中使其处于5000W功率的超声波作用下处理15min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料）， 得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为 17.01mg/g。

实施例20

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为 7.7，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双 氧水的体积为3.3mL（双氧水与原料的体积质量比为3.3:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程 中使其处于5000W功率的超声波作用下处理30min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料）， 得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为 18.60mg/g。

实施例21

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为 7.7，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双 氧水的体积为4.2mL（双氧水与原料的体积质量比为4.2:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程 中使其处于10000W功率的超声波作用下处理0min即不进行超声波处理。经离心分离去除残渣（即 浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施 例的植物多酚得率为19.68mg/g。

实施例22

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为 7.7，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双 氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），所用缓冲液的配制方法为：取氯化铵 1.07g，加水使溶解成100ml，再加稀氨溶液调节pH值为7.7，即得pH＝7.7的氨-氯化铵缓冲液。 然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于10000W功率的超声波作用下处理15min。经离心分 离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比 色测定，本实施例的植物多酚得率为20.95mg/g。

实施例23

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为 7.7，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双 氧水的体积为6mL（双氧水与原料的体积质量比为6:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使 其处于0W功率的微波作用下处理0min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的 原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚 得率为20.19mg/g。

实施例24

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为 7.7，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双 氧水的体积为6.9mL（双氧水与原料的体积质量比为6.9:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程 中使其处于0W功率的微波作用下处理0.5min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后 剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植 物多酚得率为19.84mg/g。

实施例25

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.5），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.5， 所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水 的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使 其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的 原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚 得率为18.18mg/g。

实施例26

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有硼砂-氯化钙缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.5），其中硼砂-氯化钙缓冲 液的pH为7.5，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20）， 其中双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提 取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸 提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例 的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例27

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有氨氯化铵缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.5），其中氨-氯化铵缓冲液的 pH为7.5，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20）， 其中双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提 取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸 提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例 的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例28

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钠双氧水溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质 量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即 不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用 Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例29

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钾双氧水溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质 量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即 不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用 Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例30

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钙双氧水溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质 量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即 不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用 Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例31

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氨水双氧水溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与 植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比 为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进 行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin- 酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例32

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为8.0），其中磷酸盐缓冲液的pH为8.0， 所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水 的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使 其处于40000W功率的微波作用下处理0min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩 余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物 多酚得率为19.05mg/g。

实施例33

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为8.5），其中磷酸盐缓冲液的pH为8.5， 所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水 的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使 其处于40000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到 含有植物多酚浸提液。采用Folin酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为 19.53mg/g。

实施例34

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为9.0），其中磷酸盐缓冲液的pH为9.0， 所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水 的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使 其处于40000W功率的微波作用下处理1min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含 有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为 20.64mg/g。

实施例35

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为9.5），其中磷酸盐缓冲液的pH为9.5， 所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水 的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使 其处于80000W功率的微波作用下处理0min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩 余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物 多酚得率为19.97mg/g。

实施例36

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为10.0），其中磷酸盐缓冲液的pH为 10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中 双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过 程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料）， 得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为 19.73mg/g。

实施例37

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有硼砂氯化钙缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为10.0），其中硼砂-氯化钙缓冲 液的pH为10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1： 20），其中双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h， 提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余 的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多 酚得率为19.73mg/g。

实施例38

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有氨-氯化铵缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为10.0），其中氨-氯化铵缓冲液的 pH为10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20）， 其中双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提 取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的 原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚 得率为19.73mg/g。

实施例39

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钠双氧水溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质 量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理 0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚 比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例40

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钾双氧水溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质 量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理 0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚 比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例41

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钙双氧水溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质 量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理 0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚 比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例42

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氨水双氧水溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与 植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比 为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。 经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在 765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例43

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为 7.7，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双 氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提30min，提取过程 中使其处于10000W功率的超声波作用下处理30min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料）， 得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为 28.96mg/g。

实施例44

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为 7.7，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双 氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提1min，提取过程 中使其处于80000W功率的微波作用下处理1min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得 到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为 30.34mg/g。

实施例45

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.5），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.5， 所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水 的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使 其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的 原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚 得率为18.18mg/g。

实施例46

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为10.0），其中磷酸盐缓冲液的pH为 10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中 双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过 程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料）， 得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为 19.73mg/g。

实施例47

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为7.5），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.5， 所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中双氧水 的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使 其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的 原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚 得率为18.18mg/g。

实施例48

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的双氧水溶液提取液（pH为10.0），其中磷酸盐缓冲液的pH为 10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中 双氧水的体积为5.1mL（双氧水与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过 程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料）， 得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为 19.73mg/g。

实施例49

取1g预处理后的油菜籽饼粕或油菜籽皮（对油菜品种没有限制，原料预处理的方法是：应用 常规粉碎机将以上原料粉碎，置于30-60℃下干燥，使其水分降至5%以下，然后过20-100目筛， 得到预处理的原料的粉末）粉末，然后向其中的原料中添加实施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的 次氯酸钠溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植物多酚提取液的体积为 25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钠的体积为1.5mL（次氯酸钠与 原料的体积质量比为1.5:1），在50℃下浸提3h，经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得 到含有植物多酚浸提液，分析方法采用Folin-酚比色法（刘清等，Folin-Ciocalteu比色法测定大 麦植物多酚提取液中总多酚的含量[J].食品科技，2007，32(4):175177）在765nm比色测定，本 实施例的植物多酚得率为8.57mg/g。

实施例50

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理后的花生壳粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的加有硼砂-氯化钙缓冲液的次氯酸钠溶液提取液（pH为7.77），其中硼砂-氯化钙缓冲液的pH为 7.7，所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中次 氯酸钠的体积为1.5mL（次氯酸钠与原料的体积质量比为1.5:1），然后在55℃下浸提3h。经离心 分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm 比色测定，本实施例的植物多酚得率为8.99mg/g。

实施例51

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的苹果粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的加有氨氯化铵缓冲液的次氯酸钠溶液提取液（pH为7.77），其中氨氯化铵缓冲液的pH为7.7， 所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸 钠的体积为1.5mL（次氯酸钠与原料的体积质量比为1.5:1），然后在60℃下浸提3h。经离心分离 去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色 测定，本实施例的植物多酚得率为9.16mg/g。

实施例52

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的柿子粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的氢氧化钠次氯酸钠溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多 酚提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钠的体积为1.5mL（次氯酸钠与原料的体积质量比为 1.5:1），然后在65℃下浸提3h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚 浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.94mg/g。

实施例53

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理后的葡萄粉末，然后向其中添加实施例1制备好的 氢氧化钾次氯酸钠溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚 提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钠的体积为1.5mL（次氯酸钠与原料的体积质量比为 1.5:1），然后在70℃下浸提3h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚 浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.85mg/g。

实施例54

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的柑桔粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的氢氧化钙次氯酸钠溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多 酚提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钠的体积为1.5mL（次氯酸钠与原料的体积质量比为 1.5:1），然后在65℃下浸提2h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚 浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.13mg/g。

实施例55

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的萝卜粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的氨水次氯酸钠溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提 取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钠的体积为1.5mL（次氯酸钠与原料的体积质量比为1.5:1）， 然后在65℃下浸提2.5h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。 采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.77mg/g。

实施例56

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钠溶液提取液（pH为7.5），其中磷酸盐缓冲液的pH为 7.5，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次 氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取 过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提 后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的 植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例57

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有硼砂-氯化钙缓冲液的次氯酸钠溶液提取液（pH为7.5），其中硼砂-氯化钙缓 冲液的pH为7.5，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1： 20），其中次氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提 3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残 渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定， 本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例58

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钠溶液提取液（pH为7.5），其中氨-氯化铵缓冲液 的pH为7.5，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20）， 其中次氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h， 提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即 浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施 例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例59

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钠次氯酸钠溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料的体 积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min 即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采 用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例60

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钾次氯酸钠溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料的体 积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min 即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采 用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例61

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钙次氯酸钠溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料的体 积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min 即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采 用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例62

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氨水次氯酸钠溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料 与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料的体积 质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min 即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采 用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例63

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钠溶液提取液（pH为10.0），其中磷酸盐缓冲液的pH 为10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其 中次氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h， 提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余 的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多 酚得率为19.73mg/g。

实施例64

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有硼砂-氯化钙缓冲液的次氯酸钠溶液提取液（pH为10.0），其中硼砂-氯化钙缓 冲液的pH为10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1： 20），其中次氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提 3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提 后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的 植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例65

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钠溶液提取液（pH为10.0），其中氨-氯化铵缓冲液 的pH为10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20）， 其中次氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h， 提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余 的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多 酚得率为19.73mg/g。

实施例66

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钠次氯酸钠溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL （原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料 的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下 处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin- 酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例67

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钾次氯酸钠溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL （原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料 的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下 处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin- 酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例68

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钙次氯酸钠溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL （原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料 的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下 处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin- 酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例69

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氨水次氯酸钠溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料 与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钠的体积为5.1mL（次氯酸钠与原料的体积 质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理 0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚 比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例70

取1g预处理后的油菜籽饼粕或油菜籽皮（对油菜品种没有限制，原料预处理的方法是：应用 常规粉碎机将以上原料粉碎，置于30-60℃下干燥，使其水分降至5%以下，然后过20-100目筛， 得到预处理的原料的粉末）粉末，然后向其中的原料中添加实施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的 次氯酸钾溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植物多酚提取液的体积为 25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钾的体积为1.5mL（次氯酸钾与 原料的体积质量比为1.5:1），在50℃下浸提3h，经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得 到含有植物多酚浸提液，分析方法采用Folin-酚比色法（刘清等，Folin-Ciocalteu比色法测定大 麦植物多酚提取液中总多酚的含量[J].食品科技，2007，32(4):175-177）在765nm比色测定，本 实施例的植物多酚得率为8.57mg/g。

实施例71

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理后的花生壳粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的加有硼砂-氯化钙缓冲液的次氯酸钾溶液提取液（pH为7.77），其中硼砂-氯化钙缓冲液的pH为 7.7，所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中次 氯酸钾的体积为1.5mL（次氯酸钾与原料的体积质量比为1.5:1），然后在55℃下浸提3h。经离心 分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm 比色测定，本实施例的植物多酚得率为8.99mg/g。

实施例72

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的苹果粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钾溶液提取液（pH为7.77），其中氨-氯化铵缓冲液的pH为7.7， 所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸 钾的体积为1.5mL（次氯酸钾与原料的体积质量比为1.5:1），然后在60℃下浸提3h。经离心分离 去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色 测定，本实施例的植物多酚得率为9.16mg/g。

实施例73

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的柿子粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的氢氧化钠次氯酸钾溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多 酚提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钾的体积为1.5mL（次氯酸钾与原料的体积质量比为 1.5:1），然后在65℃下浸提3h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚 浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.94mg/g。

实施例74

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理后的葡萄粉末，然后向其中添加实施例1制备好的 氢氧化钾次氯酸钾溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚 提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钾的体积为1.5mL（次氯酸钾与原料的体积质量比为 1.5:1），然后在70℃下浸提3h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚 浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.85mg/g。

实施例75

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的柑桔粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的氢氧化钙次氯酸钾溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多 酚提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钾的体积为1.5mL（次氯酸钾与原料的体积质量比为 1.5:1），然后在65℃下浸提2h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚 浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.13mg/g。

实施例76

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的萝卜粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的氨水次氯酸钾溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提 取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钾的体积为1.5mL（次氯酸钾与原料的体积质量比为1.5:1）， 然后在65℃下浸提2.5h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。 采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.77mg/g。

实施例77

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钾溶液提取液（pH为7.5），其中磷酸盐缓冲液的pH为 7.5，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次 氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取 过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提 后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的 植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例78

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有硼砂氯化钙缓冲液的次氯酸钾溶液提取液（pH为7.5），其中硼砂-氯化钙缓 冲液的pH为7.5，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1： 20），其中次氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提 3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残 渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定， 本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例79

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钾溶液提取液（pH为7.5），其中氨-氯化铵缓冲液 的pH为7.5，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20）， 其中次氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h， 提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即 浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施 例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例80

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钠次氯酸钾溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料的体 积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min 即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采 用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例81

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钾次氯酸钾溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料的体 积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min 即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采 用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例82

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钙次氯酸钾溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料的体 积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min 即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采 用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例83

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氨水次氯酸钾溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料 与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料的体积 质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min 即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采 用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例84

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钾溶液提取液（pH为10.0），其中磷酸盐缓冲液的pH 为10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其 中次氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h， 提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余 的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多 酚得率为19.73mg/g。

实施例85

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有硼砂氯化钙缓冲液的次氯酸钾溶液提取液（pH为10.0），其中硼砂氯化钙缓 冲液的pH为10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1： 20），其中次氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提 3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提 后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的 植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例86

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有氨氯化铵缓冲液的次氯酸钾溶液提取液（pH为10.0），其中氨-氯化铵缓冲液 的pH为10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20）， 其中次氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h， 提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余 的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多 酚得率为19.73mg/g。

实施例87

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钠次氯酸钾溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL （原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料 的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下 处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin- 酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例88

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钾次氯酸钾溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL （原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料 的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下 处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin- 酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例89

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钙次氯酸钾溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL （原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料 的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下 处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin- 酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例90

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氨水次氯酸钾溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料 与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钾的体积为5.1mL（次氯酸钾与原料的体积 质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理 0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚 比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例91

取1g预处理后的油菜籽饼粕或油菜籽皮（对油菜品种没有限制，原料预处理的方法是：应用 常规粉碎机将以上原料粉碎，置于30-60℃下干燥，使其水分降至5%以下，然后过20-100目筛， 得到预处理的原料的粉末）粉末，然后向其中的原料中添加实施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的 次氯酸钙溶液提取液（pH为7.77），其中磷酸盐缓冲液的pH为7.7，所用植物多酚提取液的体积为 25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钙的体积为1.5mL（次氯酸钙与 原料的体积质量比为1.5:1），在50℃下浸提3h，经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得 到含有植物多酚浸提液，分析方法采用Folin-酚比色法（刘清等，Folin-Ciocalteu比色法测定大 麦植物多酚提取液中总多酚的含量[J].食品科技，2007，32(4):175-177）在765nm比色测定，本 实施例的植物多酚得率为8.57mg/g。

实施例92

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理后的花生壳粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的加有硼砂-氯化钙缓冲液的次氯酸钙溶液提取液（pH为7.77），其中硼砂-氯化钙缓冲液的pH为 7.7，所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中次 氯酸钙的体积为1.5mL（次氯酸钙与原料的体积质量比为1.5:1），然后在55℃下浸提3h。经离心 分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm 比色测定，本实施例的植物多酚得率为8.99mg/g。

实施例93

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的苹果粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钙溶液提取液（pH为7.77），其中氨-氯化铵缓冲液的pH为7.7， 所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸 钙的体积为1.5mL（次氯酸钙与原料的体积质量比为1.5:1），然后在60℃下浸提3h。经离心分离 去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色 测定，本实施例的植物多酚得率为9.16mg/g。

实施例94

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的柿子粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的氢氧化钠次氯酸钙溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多 酚提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钙的体积为1.5mL（次氯酸钙与原料的体积质量比为 1.5:1），然后在65℃下浸提3h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚 浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.94mg/g。

实施例95

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理后的葡萄粉末，然后向其中添加实施例1制备好的 氢氧化钾次氯酸钙溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚 提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钙的体积为1.5mL（次氯酸钙与原料的体积质量比为 1.5:1），然后在70℃下浸提3h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚 浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.85mg/g。

实施例96

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的柑桔粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的氢氧化钙次氯酸钙溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多 酚提取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钙的体积为1.5mL（次氯酸钙与原料的体积质量比为 1.5:1），然后在65℃下浸提2h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚 浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.13mg/g。

实施例97

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的萝卜粉末，然后向其中添加实施例1制备好 的氨水次氯酸钙溶液提取液（pH为7.77），所用植物多酚提取液的体积为25mL（原料与植物多酚提 取液的质量体积比为1：25），其中次氯酸钙的体积为1.5mL（次氯酸钙与原料的体积质量比为1.5:1）， 然后在65℃下浸提2.5h。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。 采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为9.77mg/g。

实施例98

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钙溶液提取液（pH为7.5），其中磷酸盐缓冲液的pH为 7.5，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次 氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取 过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提 后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的 植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例99

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有硼砂-氯化钙缓冲液的次氯酸钙溶液提取液（pH为7.5），其中硼砂-氯化钙缓 冲液的pH为7.5，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1： 20），其中次氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提 3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残 渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定， 本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例100

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钙溶液提取液（pH为7.5），其中氨-氯化铵缓冲液 的pH为7.5，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20）， 其中次氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h， 提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即 浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施 例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例101

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钠次氯酸钙溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料的体 积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min 即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采 用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例102

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钾次氯酸钙溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料的体 积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min 即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采 用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例103

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钙次氯酸钙溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原 料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料的体 积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min 即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采 用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例104

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氨水次氯酸钙溶液提取液（pH为7.5），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料 与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料的体积 质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于0W功率的微波作用下处理1min 即不进行微波处理。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采 用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为18.18mg/g。

实施例105

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有磷酸盐缓冲液的次氯酸钙溶液提取液（pH为10.0），其中磷酸盐缓冲液的pH 为10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其 中次氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h， 提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余 的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多 酚得率为19.73mg/g。

实施例106

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有硼砂-氯化钙缓冲液的次氯酸钙溶液提取液（pH为10.0），其中硼砂-氯化钙缓 冲液的pH为10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1： 20），其中次氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提 3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提 后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的 植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例107

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的加有氨-氯化铵缓冲液的次氯酸钙溶液提取液（pH为10.0），其中氨-氯化铵缓冲液 的pH为10.0，所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20）， 其中次氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h， 提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余 的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多 酚得率为19.73mg/g。

实施例108

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钠次氯酸钙溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL （原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料 的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下 处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin- 酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例109

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钾次氯酸钙溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL （原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料 的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下 处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin- 酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例110

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氢氧化钙次氯酸钙溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL （原料与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料 的体积质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下 处理0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin- 酚比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。

实施例111

按照实施2提供的方法进行。取1g预处理之后的菜籽饼粕或菜籽皮粉末，然后向其中添加实 施例1制备好的氨水次氯酸钙溶液提取液（pH为10.0），所用植物多酚提取液的体积为20mL（原料 与植物多酚提取液的质量体积比为1：20），其中次氯酸钙的体积为5.1mL（次氯酸钙与原料的体积 质量比为5.1:1），然后在65℃下浸提3.5h，提取过程中使其处于80000W功率的微波作用下处理 0.5min。经离心分离去除残渣（即浸提后剩余的原料），得到含有植物多酚浸提液。采用Folin-酚 比色法在765nm比色测定，本实施例的植物多酚得率为19.73mg/g。