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【6h】

SA-hGM-CSF双功能融合蛋白的制备及生物学功能鉴定

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目录

中英文缩略语对照表

摘要

前言

第一部分 SA-hGM-CSF融合蛋白的诱导表达及发酵

一 材料和方法

二 结果

三 分析与讨论

第二部分 SA-hGM-CSF融合蛋白的纯化与复性

1.材料和方法

二 结果

三 分析与讨论

第三部分 SA-hGM-CSF融合蛋白的免疫印迹及体外生物学功能研究

一 材料与方法

二 结果

三 讨论

第四部分 SA-hGM-CSF融合蛋白的一级结构的研究

1.材料和方法

二 结果

三 讨论

小结

参考文献

附录

致谢

综述 人粒细胞—巨噬细胞集落刺激因子的研究进展

声明

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摘要

目的:本文将已构建好的SA-hGM-CSF质粒转化入大肠杆菌诱导表达、通过采用发酵罐发酵,Ni-NTA亲和层析和凝胶过滤层析纯化、尿素梯度透析复性等方法,制备出链亲和素标记hGM-CSF的融合蛋白,并研究其生物学功能以及一级结构,为后期的动物实验及肿瘤疫苗的研制奠定基础。
   方法:
   1.诱导表达SA-hGM-CSF融合蛋白将已建好的SA-hGM-CSF重组质粒转化到用CaCl2方法制备的Rosetta感受态细胞中进行过夜活化,挑单克隆菌落,筛选出高表达菌株,二次活化,IPTG诱导表达,高压破碎仪破菌,采用本实验室已成功研制的包涵体洗涤方法洗涤包涵体。用SDS-PAGE分析检测上清及包涵体表达产物。
   2.SA-hGM-CSF融合蛋白的发酵发酵是一个复杂的过程,选择优良的菌株是发酵的第一步,菌体的性质影响其生长和产物的表达,根据Rosetta细菌的性质将发酵培养基的成分进行优化分析,并对接种量,培养基的pH值,IPTG诱导浓度及时间进行优化。通过发酵系统对整个发酵过程(温度,pH,溶氧量)进行监控。
   3.SA-hGM-CS融合蛋白的纯化与复性工程菌收集,通过高压破碎仪破菌收得包涵体后,洗涤后的包涵体用6M盐酸胍溶解,再用平衡液稀释1倍,进行镍柱亲和层析和凝胶过滤层析纯化得到融合蛋白,将融合蛋白进行透析复性。
   4.细胞锚定和实验细胞增殖实验将复性的SA-hGM-CSF融合蛋白稀释成不同的浓度,体外检测是否对TF-1细胞有增殖效应,应用流式细胞仪检测SA-hGM-CSF融合蛋白对已生物素化的前列腺癌细胞的锚定率。
   5.一级结构的测定通过SDS-PAGE,胶内酶切得到样品进行质谱鉴定SA-hGM-CSF融合蛋的分子量。
   结果:
   1.诱导表达SA-hGM-CSF融合蛋白将重组质粒SA-hGM-CSF转化大肠杆菌,经筛选后获得高表达工程菌,SDS-PAGE显示,融合蛋白分子量的位置大约在36KD左右。IPTG诱导的最佳终浓度0.3mmol/L,诱导时间4h,蛋白以包涵体形式表达。
   2.SA-hGM-CSF融合蛋白的发酵使用优化的培养基,发酵培养基为蛋白胨20g/L,酵母粉10g/L,K2HPO41.5 g/L,KH2PO44.0 g/L,Na2HPO45 g/L,MgSO40.6 g/L,甘油(5%)50ml/L,NH4CL0.4g/L,在1∶50的接种量,pH值为7.0,溶氧30%的条件下一次性可得到湿菌140g和包涵体85g。
   3.SA-hGM-CS融合蛋白的纯化与复性洗涤后的包涵体用6M盐酸胍溶解,经镍柱亲和层析和凝胶过滤层析纯化后,用凝胶扫描仪检测其纯度为97%,透析复性后融合蛋白主要以多聚体形式存在。
   4.细胞锚定和细胞增殖实验将复性的SA-hGM-CSF融合蛋白调整不同浓度,用CCK8法发现从0.01-156.25ng/ml不同浓度的SA-hGM-CSF有增殖TF-1细胞的活性且成剂量依赖效应;流式细胞仪检测SA-hGM-CSF融合蛋白与经生物素化的前列腺癌细胞锚定率达到94.9%。
   5.一级结构的测定将已酶切好的SA-hGM-CSF融合蛋白,应用ESI-Ion trap质谱检测SA-hGM-CSF融合蛋白分子量,其分子量为35922D。
   结论:本文成功的将质粒SA-hGM-CSF导入大肠杆菌中并通过诱导表达方法获得大量工程菌和包涵体,通过镍柱亲和层析和凝胶过滤层析纯化后,透析复性获得高纯度和高浓度的融合蛋白,在体外细胞增殖实验中初步检测SA-hGM-CSF双功能融合蛋白具有生物学活性。为后期的肿瘤疫苗及临床前实验奠定基础。

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