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【6h】

腺苷酸环化酶激活剂诱导脆性X智力低下一号基因重新表达的机制研究

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目录

摘要

前言

第一章 二丁酰环磷酸腺苷诱导脆性X智力低下一号基因重启及再表达的研究

引言

一、材料和仪器

二、方法

结果

讨论

附图及数据表

第二章 腺苷酸环化酶激活剂forskolin重启FMR1基因CRE位点的验证

引言

一、材料与仪器

二、方法

结果

讨论

附图及数据表

全文总结

参考文献

综述

中英文对照缩略词

研究生期间发表和撰写的文章

致谢

声明

统计学审稿证明

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摘要

脆性X综合征[fragile X syndrome,Fra(X)]是最常见的遗传性智力低下疾病之一。据保守估计,我国至少有20万脆性X病人。目前认为Fra(X)致病机制主要是由于脆性X智力低下一号基因(fragile X mental retardation-1 gene,FMR1)启动子区内(CGG)n三核苷酸重复序列的不稳定扩增及其上游的CPG岛的异常甲基化,使FMR1基因转录及翻译终止,其编码产物—脆性X智力低下蛋白(fragile X mental retardation protein,FMRP)减少或缺如,最终表现为Fra(X)。目前对于Fra(X)的治疗尚无有效的方法,基因治疗仍困难重重,药物重新活化FMR1的方法,也因其存在较强的毒副作用制约了临床应用,寻找有效、安全、低/无毒副作用的药物用于治疗Fra(X)仍是目前研究的热点之一。
   已往很多研究提示智力低下与信号转导通路之间有着某种相互联系,其中,环磷酸腺苷(cyclic adenosine monophosphate,cAMP)信号通路与学习记忆和智力关系最为密切,故Fra(X)与cAMP通路之间的关系也引起了人们的密切关注。人们发现在Fra(X)患者细胞中、在FMR1基因敲除小鼠的脑组织及血小板内,以及在患有Fra(X)的果蝇脑组织内cAMP水平均低于正常,而患有Fra(X)的果蝇可以通过重新植入FMR1基因来弥补这种缺陷,由此提示FMR1基因与cAMP之间可能存在相互调控关系。
   Fra(X)患者细胞内cAMP水平降低的原因是什么呢?cAMP的代谢主要与腺苷酸环化酶(adenylate cyclase,AC)和磷酸二酯酶(phosphodiesterase,PDE)的活性有关。前者作用于ATP可生成cAMP,而后者则降解cAMP,以保持胞内cAMP水平的平衡。有临床研究发现一部分Fra(X)患者存在腺苷酸环化酶催化亚单位的功能或者调节的异常。我们前期研究发现FMR1基因封闭后细胞内cAMP水平下降,腺苷酸环化酶活性也明显降低,而磷酸二酯酶的活性则无显著变化。提示FMR1基因的功能缺陷可影响腺苷酸环化酶的活性,推测腺苷酸环化酶活性抑制可能是影响Fra(X)患者细胞内cAMP水平降低的主要原因。
   如果FMR1基因转录及翻译终止与腺苷酸环化酶活性降低有关,反之,用药物提高腺苷酸环化酶的活性能否重启被封闭的FMR1基因呢?为了证明我们的猜想,前期在封闭的FMR1基因细胞模型上,我们采用特异性腺苷酸环化酶(AC)激活剂药物弗司可林(forskolin,FSK)改善腺苷酸环化酶的低活性状态,结果发现它的确可有效地重新诱导沉默FMR1基因的转录和蛋白表达,但forskolin对FMR1基因调节的具体机制尚不清楚,是否通过提高cAMP水平这一途径诱导的有待进一步证实。
   已知FMRI基因启动子区与FMR1基因的转录密切相关,该区内存在一个具有增强子活性的甲基化敏感区(methylation sensitive element,MSE),值得注意的是该区增强子内又同时包含一个cAMP反应单位(cAMP-responsive element,CRE)碱基序列,两者结构重叠,关系紧密。而CRE序列是环磷酸腺苷反应单元结合蛋白(CREB)的结合位点。CREB是一种重要的核转录因子,具有调节包括记忆功能在内的广泛的生物学功能,且研究发现CREB可以与FMR1启动子结合并可增强FMR1启动子的活性,因此推测其机制可能是cAMP诱导的。AC激动剂forskolin是否经cAMP通路,通过FMR1启动子区内的MSE/CRE重叠位点实现对FMR1基因调节的尚有待证实。
   为了证实以上推测,本研究1.拟直接采用外源性cAMP药物-二丁酰环磷酸腺苷(db-cAMP)诱导沉默FMR1基因的转录和蛋白表达,试图证实forskolin是通过提高细胞内cAMP水平这一途径而达到对FMR1基因再激活作用的;2.以MSE/CRE位点为研究靶点,构建FMR1启动子区MSE/CRE位点双荧光素酶报告基因系统,在不影响MSE整体启动子活性的情况下,分别突变CRE序列,形成突变启动子M1、M2的双荧光素酶报告基因,试图验证forskolin是经FMR1启动子区MSE/CRE位点实现了对FMR1基因的调节,为进一步研究AC激动剂forskolin重启FMR1基因的机制奠定基础,试图为Fra(X)患者的治疗提供新的思路和治疗前景。
   研究方法:
   1.制作pc12细胞FMR1基因封闭的细胞模型采用硝普钠(sodium nitroprusside,SNP)封闭FMR1基因。硝普钠为经典的一氧化氮(nitric oxide,NO)供体,可通过产生的NO活化DNA甲基转移酶(DNA MeTase),从而使FMR1启动子区CpG岛的MSE中的胞嘧啶发生高度甲基化,阻断了核酸因子与启动子的结合,抑制了FMR1 mRNA的转录。最后通过real-time PCR观察FMR1基因的封闭效果。
   2.观察二丁酰环磷酸腺苷(db-cAMP)对pc12细胞FMR1mRNA的影响1000umol/LSNP作用pc12细胞24h后,实验组分别加入浓度为0.25mmol/L、0.5mmol/L、1mmol/L的db-cAMP,分别于db-cAMP作用6h、12h、24h、48h后收集细胞,提取总RNA。以正常的pc12细胞为正常对照组,以仅加SNP作用的pc12细胞为封闭抑制对照组,用荧光定量PCR(染料法)检测FMR1基因的表达情况。
   3.观察二丁酰环磷酸腺苷(db-cAMP)对FMR1蛋白水平(FMRP)的影响
   硝普钠封闭pc12细胞FMR124h后,加入0.5mmol/Ldb-cAMP,分别于加药24h、48h、72h、96h后收集细胞(12小时补充失效的db-cAMP,48小时补充失效的SNP),提取蛋白质,进行WesternBlot,对FMRP进行半定量分析。
   4.FMR1启动子MSE/CER重叠序列及突变CRE双荧光素酶报告基因的构建
   采用PCR的方法从K562细胞DNA中钓取MSE/CRE重叠序列,然后采用PCR点突变的方法分别突变CRE序列,形成突变子M1、M2,分别获得MSE、M1、M2片段,然后连接到PGL3载体上,进而转化到DH5a细胞中,提取质粒。MSE/PGL3、M1/PGL3、M2/PGL3分别与海肾质粒共转染pc12细胞后,对所测荧光素酶活性强度值进行分析。
   5.验证CRE位点是腺苷酸环化酶激活剂forskolin重启FMR1基因的关键位点
   从DH5a细菌中提取MSE/PGL3、M1/PGL3、M2/PGL3质粒,分别转染pc12细胞后进行分组,加1000umol/LSNP和(或)50umol/Lforskolin,检测荧光素酶活性,比较在正常CRE与突变后CRE状态下,forskolin对FMR1基因开启的影响,通过对荧光素酶值的比较,判断启动子活性(荧光素酶值高,启动子活性则高;反之,则低),以此验证CRE位点是否是腺苷酸环化酶激活剂forskolin重启FMR1基因的关键位点。
   6.统计
   实验所得数据经SPSS13.0统计软件进行统计学处理,数据用均数士标准差((X)±s)表示。荧光定量PCR结果采用2-△△CT值分析,采用单因素方差分析;因方差不齐,组间两两比较采用DunnettT3;与正常组的比较采用单样本t检验。WesternBlot数据采用Bia-RadGel-ProAnalyzer软件分析所得A值之比,因方差齐性,组间两两比较采用LSD;相对荧光素酶活性检测数据应用相对荧光素酶活性强度值分析,采用析因设计资料方差分析,因方差齐性,组间两两比较采用LSD。p<0.05表示有统计学差异。
   研究结果
   1.不同浓度及不同时间点db-cAMP对封闭的FMR1转录水平的影响
   db-cAMP在0.5mmol/L作用12h时FMR1mRNA激活效果最强,FMR1mRNA的表达量约为封闭组的9.7倍(P<0.05),约为正常组的0.86倍(P=0.135)。0.5mmol/Ldb-cAMP的激活效果维持时间小于18小时。
   2.db-cAMP对FMRP表达的影响
   用SNP1000μmol/L封闭FMR1基因,作用72h时FMRP表达量最低,约为正常组的0.56倍;在SNP封闭的基础上,加入0.5mmol/Ldb-cAMP可提高FMRP表达量,作用72h时激活效果最好,为正常组的0.98倍(P<0.05),是封闭组的1.25倍(P<0.05)。
   3.荧光素酶载体构建
   PCR、双酶切验证后送测序,测序结果均符合设计。pGL-3/MSE位、pGL-3/M1位、pGL-3/M2位质粒、pGL3basic与海肾质粒共转染pc12细胞,质粒均成功转入pc12细胞,并且具有启动子活性,显示脆性X智力低下一号基因启动子双荧光素酶报告基因载体构建成功。
   4、腺苷酸环化酶激活剂forskolin重启FMR1基因CRE位点验证
   (1)经SNP封闭作用后,MSE位、M1位、M2位三组与未加SNP的各自正常对照组比较均有统计学意义(P<0.05),提示经SNP作用,三组FMR1均被SNP封闭成功。
   (2)未经SNP封闭,单经forskolin处理后,MSE位、M1位、M2位三组分别与各自的对照组相比较均无统计学意义(P>0.05),提示forskolin对正常活性的FMR1启动子,无论CRE序列结构正常或突变,均无增强作用。
   (3)已被SNP封闭后的FMR1,再添加forskolin处理,当CRE位点正常时,MSE组的荧光素酶活性显著高于未添加forskolin的封闭对照组(P<0.05);在突变了CRE结合位点的M1组和M2组中,添加forskolin组与未添加forskolin封闭对照组均无显著性差异(P>0.05)。由此提示,当FMR1启动子活性低下时,在CRE结构正常情况下,forskolin可开启封闭的FMR1基因,而当突变CRE序列后,forskolin对FMR1封闭基因的开启作用则消失。
   以上结果显示当CRE位点正常时,forskolin对活性低下的FMR1启动子有显著地激活作用,而对正常活性的FMR1启动子则无增强作用;当CRE位点突变之后,forskolin对正常活性、低下活性的FMR1启动子均无开启作用。
   结论
   1.发现直接采用外源性环磷酸腺苷(db-cAMP)也可有效地重新诱导被封闭的FMR1基因和蛋白表达,这有望为Fra(X)发病机制的研究和临床治疗提供新的思路和治疗前景。
   2.证实了cAMP激活剂forskolin开启FMR1封闭基因的机制之一是通过提高细胞内cAMP水平而实现的。
   3.成功构建FMR1启动子区MSE/CRE位点双荧光素酶报告基因系统,结果显示当CRE位点正常时,forskolin对活性低下的FMR1启动子有显著地激活作用,而当CRE位点突变之后,forskolin则无此作用,由此证实CRE位点是forskolin重启FMR1基因的关键位点。推测AC激动剂forskolin可能主要是通过FMR1启动子区内的MSE/CRE重叠位点,经cAMP通路实现了对FMR1基因的调控。

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