声明
中英文对照及英文缩写词表
第一章 文献综述
1.1 多糖研究概述
1.2 多糖提取方法的研究概况
1.2.1 溶剂萃取法
1.2.2 物理萃取法
1.2.3 生物酶萃取法
1.2.4 复合萃取法
1.3 多糖分子修饰方法的研究概况
1.3.1 生物酶修饰方法
1.3.2 物理修饰方法
1.3.3 化学修饰方法
1.4 分子修饰后多糖的药理活性研究概况
1.4.1 分子修饰的多糖对免疫调节活性的影响
1.4.2 分子修饰的多糖对抗氧化活性的影响
1.4.3 分子修饰的多糖对抗肿瘤活性的影响
1.4.4 分子修饰的多糖对抗病毒活性的影响
1.4.5 分子修饰的多糖对其他活性的影响
1.5 红芪多糖的研究概况
1.6 立题依据及研究内容
1.6.1 红芪多糖的复合酶联合超声提取工艺的研究
1.6.2 不同提取方法对红芪多糖理化性质及物活性的研究
1.6.3 HPS-MC (80%)的分离纯化、表征与体外免疫调节的研究
参考文献
第二章 红芪多糖的复合酶联合超声提取工艺研究
2.1 引言
2.2 实验部分
2.2.1 实验材料
2.2.2 实验试剂
2.2.3 实验仪器
2.2.4 实验方法
2.3 实验结果
2.3.1 复合酶联合超声提取红芪多糖的单因素实验结果
2.3.2 复合酶联合超声提取红芪多糖的正交实验结果
2.4 讨论
参考文献
第三章 不同提取方法对红芪多糖理化性质及生物活性的影响
3.1 引言
3.2 实验部分
3.2.1 实验材料
3.2.2 实验试剂
3.2.3 实验仪器
3.2.4 实验动物
3.2.5 实验方法
3.2.6 统计方法
3.3 结果
3.3.1 HPSs的物理化学特性
3.3.2 HPSs的单糖组成
3.3.3 HPSs的FT-IR分析
3.3.4 HPSs体外抗氧化活性实验
3.3.5 HPSs对免疫抑制小鼠抗氧化能力及免疫调节能力的影响
3.4 讨论
参考文献
第四章HPS-MC (80%)的分离纯化、表征及免疫调节活性研究
4.1 引言
4.2 实验部分
4.2.1 实验材料
4.2.2 实验试剂
4.2.3 实验仪器
4.2.4 实验方法
4.3 实验结果
4.3.1 HPS-MC (80%)的分离纯化
4.3.2HPS-MC (80%)s的物理化学性质
4.3.3 HPS-MC (80%)s的分子结构表征
4.3.4HPS-MC (80%)s的UV分析
4.3.5 HPS-MC (80%)s的FT-IR分析
4.3.6 HPS-MC (80%)s的SEM分析
4.3.7 HPS-MC(80%)s干预不同时间对巨噬细胞增殖活性的影响
4.3.8 HPS-MC(80%)s与LPS协同干预不同时间对巨噬细胞增殖活性的影响
4.3.9 HPS-MC(80%)s干预不同时间对脾细胞增殖活性的影响
4.3.10 HPS-MC (80%)s与LPS 协同干预不同时间对脾细胞增殖活性的影响
4.4 讨论
参考文献
第五章 总结与展望
5.1 总结
5.1.1 红芪多糖的复合酶联合超声提取工艺的研究
5.1.3 HPS-MC (80%)的分离纯化、表征及体外免疫调节活性的研究
5.2 工作展望
在校期间研究成果
致谢
