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摘要
缩略语表
1.前言
1.1 砷污染与肿瘤
1.2 转化模型的选择
1.3 转化模型的建立与验证
1.4 NQO1简介
1.5 NQO1与肿瘤
1.6 NQO1的调控
1.7 砷转化与表观遗传
1.8 大鼠源NQO1基因启动子特点分析
1.9 研究的目的和意义
2.1.1 菌株和质粒
2.1.2 细胞株
2.1.3 抗体
2.1.4 药品与试剂
2.1.5 仪器设备
2.2 实验方法
2.2.1 细胞培养
2.2.2 MTT法检测亚砷酸钠的细胞毒性
2.2.3 细胞砷诱导转化
2.2.4 细胞形态观察
2.2.5 细胞软琼脂克隆形成实验
2.2.6 分离单克隆细胞
2.2.7 细胞迁徙和侵袭实验
2.2.8 Western blot检测蛋白变化情况
2.2.9 明胶酶谱法检测MMPs
2.2.10 对LEC和TLEC细胞的p53基因编码区(CDS)测序
2.2.11 流式细胞术检测LEC和TLEC细胞内活性氧(ROS)水平
2.2.12 RT-PCR和qPCR检测基因表达水平
2.2.13 5-氮杂-2′-脱氧胞苷处理细胞诱导NQO1表达
2.2.14 从动物和细胞中提取基因组DNA
2.2.15 重亚硫酸盐测序BSP
2.2.16 pCpGL-NQO1质粒构建
2.2.17 pCpGL-NQO1质粒体外甲基化(in vitro methylation)及验证
2.2.18 荧光索酶测定甲基化对NQO1启动子转录活性的影响
3.实验结果
3.1 亚砷酸钠对LEC细胞活性影响
3.2 砷转化TLEC细胞形态发生上皮间质转化(EMT)
3.3 TLEC细胞EMT转化标志蛋白表达出现相应改变
3.4 TLEC细胞能锚定非依赖性生长和形成多数克隆
3.5 砷转化TLEC细胞的转移能力显著增强
3.6 TLEC细胞分泌基质金属蛋白酶(MMP)大幅增加
3.7 TLEC细胞p53基因出现突变和异常蓄积
3.8 流式细胞检测发现TLEC细胞活性氧(ROS)水平异常升高
3.9 NQO1在TLEC细胞亚克隆中出现异常表达(即呈现高表达或低表达)
3.10 运用EMBOSS CpGplot软件分析大鼠的NQO1启动子序列
3.11 大鼠各组织NQO1启动子甲基化与表达呈负相关
3.12 重亚硫酸盐测序(BSP)显示TLEC亚克隆NQ1的非
3.13 去甲基化有效地恢复高甲基化的TLEC亚克隆NQO1表达
3.14 体外甲基化显著抑制NQO1的非CpG岛启动子转录活性
3.15 Tfsitescan分析大鼠NQO1启动子转录因子的结合位点
4.讨论
第一部分
第二部分
参考文献
致谢