技术领域
本发明属于细胞分离与培养领域。
背景技术
从实体组织中制备单细胞悬液,是建立细胞模型、研究细胞生理生化机制的一项重要基础技术。对不同组织而言,制备方法不同。
肝组织细胞松散,主要以机械研磨的方法制备单细胞悬液(韩亚萍等,肝病患者的肝组织单细胞悬液与外周血中淋巴细胞亚群的分析比较,检验医学,2005年第20卷第5期);肌肉组织紧实,配合机械研磨并配合多种消化酶同时作用,方能实现较好的制备效果(张远圆等,机械法与机械-酶消化法制备大鼠膈肌组织单细胞悬液的比较,中国组织工程研究,2020年底24卷第8期)。
肺部穿刺组织,是用穿刺针从体外刺入肺部取出的肺部组织,具有穿刺组织数量少、纤维组织多,穿刺过程中组织容易黏附红细胞等特点,从肺部穿刺组织中制备单细胞悬液难度较大,往往无法保证较高的细胞数量和活性。
从肺部穿刺样本中制备单细胞悬液的常规包括如下步骤:(1)剪碎穿刺组织;(2)胶原酶IV酶解30min;(3)70μm过滤;(4)洗涤。常规方法从每份穿刺样品(重5-10mg)中制备得到的单细胞悬液,含单细胞的数量通常不足10000个,活性不到50%。这使得以单细胞悬液作为材料的研究工作出现材料短缺,容错率低等困境,限制了相关研究工作的展开。
当前缺少一种制备单细胞悬液的高得率、高活性的方法。
发明内容
本发明要解决的问题是:提供一种改进的从肺部穿刺组织中制备单细胞悬液的方法,以提高单细胞悬液中细胞数量和活性。
本发明的技术方案如下:
一种从肺部穿刺组织中制备单细胞悬液的方法,包括如下步骤:
1)将肺部穿刺组织置于冰上剪碎;
2)加终浓度为0.2±0.05mg/ml的IV型胶原酶,37±0.3摄氏度下消化10-15min;
3)使用孔径40μm的细胞过滤网过滤,收集滤过液,离心富集细胞;
4)加入含BSA的PBS重悬细胞,离心富集细胞;
步骤4)中,所述含BSA的PBS,是在每100ml PBS的基础上添加4±0.05mg BSA得到。
如前述的方法,步骤3)之后,若滤过液有红细胞,则加入红细胞裂解液重悬细胞,冰上静置5±1min,离心富集细胞;若无红细胞,则直接进入步骤4)。
如前述的方法,步骤2)中IV型胶原酶的终浓度为0.2mg/ml。
如前述的方法,步骤4)中,含BSA的PBS,是在每100ml PBS的基础上添加4mg BSA得到。
如前述的方法,步骤3)和/或步骤4)中,离心条件是4摄氏度下400g离心6min。
本发明的有益效果如下:
1)制备得到的细胞悬液中细胞数量多,相比常规方法提高30倍;
2)制备得到的细胞悬液中细胞活性高,相比从常规方法的不足50%,提高到95%以上。
显然,根据本发明的上述内容,按照本领域的普通技术知识和惯用手段,在不脱离本发明上述基本技术思想前提下,还可以做出其它多种形式的修改、替换或变更。
以下通过实施例形式的具体实施方式,对本发明的上述内容再作进一步的详细说明。但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实例。凡基于本发明上述内容所实现的技术均属于本发明的范围。
具体实施方式
实施例1:从肺部穿刺组织中制备单细胞悬液的方法
包括如下步骤:
1)将装有穿刺组织样本的收集管离心(300g,2min,4℃),弃组织保存液(HBSS)950ul,留约100ul的HBSS,将肺部穿刺组织样品管(样品重5-10mg)放在冰上。
2)剪碎组织,加入850ul的HBSS,和50μlⅣ型胶原酶(2mg/ml),在37℃保温袋中消化10-15min。
3)消化完成,将消化液转移到其4倍体积得HBSS到15ml离心管中,用1ml的移液枪贴壁轻微吹打5-10次,将消化物经40μm的细胞过滤网(HBSS提前润洗)过滤至50ml离心管中,3-4ml用Hank's平衡盐溶液(HBSS)冲洗过滤网,1ml HBSS冲洗收集管并收集冲洗液过滤,为了减少细胞的损失,用1ml的移液器枪头收集过滤网底部剩余还未滴落的收集液,总体积约10ml,离心(400g,4℃,6min)弃上清。
4)若是收集液有血细胞,则加入0.5-1ml的红细胞裂解液重悬细胞,冰上静置6min,离心(400g,4℃,6min)弃上清;若是没有血细胞,直接进行下一步。
5)加入1ml的0.04%BSA+PBS(配制方法:4mg BSA+100ml PBS,下同)的缓冲液重悬细胞,转移至1.5ml的低吸附EP管中,离心(400g,4℃,6min)弃上清,保留100~200μl即为所要制备的单细胞悬液。
6)留适当体积的0.04%BSA+PBS计数,5ul混合荧光染料+5ul cell suspension(luna仪器配套的细胞计数板)确定最终细胞浓度和活性。
以下用实验例的形式对本发明的有益效果做进一步说明。
实验例1本发明的方法和现有常规制备方法的比较
1.材料选择
肺部穿刺样本来自四川大学华西医院,一共217例。对其中126例样本使用常规制备方法制备单细胞悬液,对另外91例样本使用本发明的方法制备单细胞悬液。
2.方法
2.1常规制备方法的操作步骤
(1)将装有穿刺组织样本的收集管离心(300g,2min,4℃),弃组织保存液(HBSS)800ul,留约200ul的HBSS,将肺部穿刺组织样品管(样品重5-10mg)放在冰上。
(2)在200ul内把组织(5-10mg)剪碎,再加入700ul HBSS,最后加入100ul的2mg/mlIV型胶原酶,置于37℃烘箱的旋转孵育器中消化30min。
(3)细胞悬液过70μm过滤网(HBSS提前润洗)并转移至50ml离心管中。再吸取1mlHBSS冲洗组织消化管,过滤网,离心(500g,5min,4℃),弃上清。
(4)5ml 0.04%BSA+PBS重悬样本,离心(500g,5min,4℃),弃上清。
(5)1ml 0.04%BSA+PBS重悬样本,转移至1.5ml的低吸附EP管中,细胞计数确定浓缩体积;离心(500g,5min,4℃),弃上清,保留100~200μl即为所要制备的单细胞悬液。
(6)留适当体积的0.04%BSA+PBS计数,5ul混合荧光染料+5ul cell suspension(luna仪器配套的细胞计数板)确定最终细胞浓度和活性。
2.2本发明的方法
同实施例1。
3.结果
常规制备方法制备的悬液中细胞数量为4.14×10
综上,本发明的方法能够从肺部穿刺组织中成功制备出细胞含量高、细胞活性高的单细胞悬液。
机译: 通过从肿瘤活检物中制备肿瘤细胞的单细胞悬液来建立肿瘤细胞系的方法
机译: 通过从肿瘤生物中制备肿瘤细胞的单细胞悬液来建立肿瘤细胞系的方法
机译: 通过从肿瘤生物中制备肿瘤细胞的单细胞悬液来建立肿瘤细胞系的方法