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抗生链霉菌FY57及其在制备胰蛋白酶抑制剂中的应用

摘要

本发明涉及一种抗生链霉菌及其在制备胰蛋白酶抑制剂中的应用,所述的抗生链霉菌FY57(Streptomyces antibioticus FY57)保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏号为:CGMCC M.12560。本发明方法具有成本低、操作简单、稳定性好、环境友好等特点,所产胰蛋白酶抑制剂具有酸碱稳定性、热稳定性和储藏稳定性好及活力高等特点。

著录项

  • 公开/公告号CN106497820A

    专利类型发明专利

  • 公开/公告日2017-03-15

    原文格式PDF

  • 申请/专利权人 浙江工业大学;

    申请/专利号CN201610830855.6

  • 发明设计人 余志良;裘娟萍;邵秀锦;

    申请日2016-09-19

  • 分类号C12N1/20(20060101);C12P1/04(20060101);C12R1/48(20060101);

  • 代理机构33201 杭州天正专利事务所有限公司;

  • 代理人黄美娟;李世玉

  • 地址 310014 浙江省杭州市下城区潮王路18号

  • 入库时间 2023-06-19 01:44:06

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2019-09-03

    授权

    授权

  • 2017-04-12

    实质审查的生效 IPC(主分类):C12N1/20 申请日:20160919

    实质审查的生效

  • 2017-03-15

    公开

    公开

说明书

(一)技术领域

本发明涉及一种胰蛋白酶抑制剂,特别涉及一种利用海洋源抗生链霉菌制备产胰蛋白酶抑制剂的方法。

(二)背景技术

胰蛋白酶属于丝氨酸蛋白酶,是人体消化系统必不可少的成分。胰腺分泌的胰蛋白酶原进入小肠,在肠激酶作用下水解形成胰蛋白酶,降解蛋白质生成小分子肽类和氨基酸,提供人体必需的营养。但是,当胰蛋白酶原在胰腺内被激活,会自行裂解胰腺导致胰腺炎的产生,造成不可逆转的组织损伤。胰蛋白酶除了分泌于胰腺中,还少量存在于皮肤、肾脏、肝脏、大脑和免疫系统细胞中。胰蛋白酶参与人体各种生理和病理过程,活性水平异常会导致各种疾病。

胰蛋白酶抑制剂可以与胰蛋白酶发生结合反应,从而调控酶的活性。目前,已知的胰蛋白酶抑制剂主要从大豆、动物内脏等动植物中提取获得,如:抑肽酶、乌司他丁等,它们具有广泛的生物学活性,对急性胰腺炎、肺气肿、出血性和败血性休克等疾病有独特的疗效。动植物源胰蛋白酶抑制剂虽已应用于临床,并取得了良好的医疗效果,但存在诸多不足。首先,动植物源胰蛋白酶抑制剂原料受限;其次,动植物源胰蛋白酶抑制剂主要是分子量较大的蛋白质,生物活性往往不稳定,易受多种理化因素的作用而失活,如凝聚、降解、消旋化等,而且不耐酸碱、不耐高温;另外,作为蛋白类药物,其进入人体后易产生首过消除效应,药效降低,给药方式局限于静脉、皮下注射,易产生免疫反应,危及患者的生命健康。

微生物具繁殖速度快、产活性物质能力强及种类多、生产成本低等多种优势,微生物活性代谢产物已成为当前药物开发的丰富资源,从微生物中开发胰蛋白酶抑制剂,具有重要的社会意义和经济价值。海洋微生物作为一个巨大的尚待开发的资源越来越受到关注,已成为一个新的研究热点。海洋面积占地球面积的70%以上,且海洋生境为一封闭、高压、高盐和低温的特殊环境,这赋予海洋微生物产生结构新颖和作用独特代谢产物的能力。因此,海洋微生物已成为胰蛋白酶抑制剂开发的新资源。

(三)发明内容

本发明目的是从海洋生境中筛选获得产胰蛋白酶抑制剂的新菌株—抗生链霉菌FY57,以及提供一种利用抗生链霉菌FY57制备胰蛋白酶抑制剂的方法。

本发明采用的技术方案是:

本发明提供一株新菌株--抗生链霉菌(Streptomyces antibioticus)FY57,保藏于中国微生物菌种保藏管理委员会普通微生物中心,保藏编号为:CGMCC NO.12560,保藏日期为2016年5月30日,地址:北京市朝阳区北辰西路1号院3号中国科学院微生物研究所,邮编100101。

本发明还提供一种所述的抗生链霉菌FY57在制备胰蛋白酶抑制剂中的应用,所述抑制剂源自抗生链霉菌FY57经发酵培养获得的发酵液离心后获得的上清液。

进一步,所述的抗生链霉菌FY57在制备胰蛋白酶抑制剂中的应用为:以抗生链霉菌FY57发酵培养获得的发酵上清液为抑制剂,以胰蛋白酶为作用目标酶,25~50℃,pH6~9,反应5~30min,进行抑制反应;再加入Na-苯甲酰-DL-精氨酸-对硝基酰胺盐酸盐(BAPNA),25~50℃,pH6~9,反应5~60min,在410nm下测定BAPNA降解所释放出对硝基苯胺的吸光值,测定抑制率。抑制剂活性越高,抑制率越高,对硝基苯胺的量越低,410nm下的吸光值越低。

所述的胰蛋白酶为牛胰蛋白酶、兔胰蛋白酶、猪胰蛋白酶、鼠胰蛋白酶、猴胰蛋白酶、鸡胰蛋白酶、马胰蛋白酶或犬胰蛋白酶,优选牛胰蛋白酶。

所述抑制剂为抗生链霉菌FY57发酵培养后获得的含湿菌体发酵液离心弃去沉淀后获得的上清液,所述抗生链霉菌FY57发酵液中湿菌体浓度为10~50mg/L,所述胰蛋白酶浓度为20~200μg/mL,所述上清液用量以含湿菌体发酵液中湿菌体质量计为0.05~2.5mg湿菌体/mg胰蛋白酶,所述含湿菌体发酵液是指离心前的含湿菌体发酵液。

所述的发酵上清液按如下步骤制备:(1)斜面培养:将抗生链霉菌FY57接种于斜面培养基,20~37℃培养3~5d,获得斜面菌体;所述斜面培养基终浓度组成为:可溶性淀粉5~30g/L,K2HPO4>4·7H2O>4·7H2O>2HPO4>4·7H2O>4·7H2O0.01g/L,海盐25g/L,琼脂25g/L,溶剂为水,pH7.5;(2)种子培养:从斜面菌体挑取1~3接种环菌种接种至种子培养基,20~37℃培养5~7d(25℃,200rpm转速下培养5d),获得种子液;所述种子培养基终浓度组成为:可溶性淀粉5~30g/L,K2HPO4>4·7H2O0.01~0.05g/L,FeSO4·7H2O>2HPO4>4·7H2O>4·7H2O>3>2HPO4>4)2SO4>4·7H2O>3>2HPO4>4)2SO4>4·7H2O>

更进一步,所述的抗生链霉菌FY57在产胰蛋白酶抑制剂中的应用为:以抗生链霉菌FY57发酵培养获得的发酵上清液为抑制剂源,以牛胰蛋白酶为作用目标酶,37℃,pH8,反应10min,再用Na-苯甲酰-DL-精氨酸-对硝基酰胺盐酸盐法即BAPNA法测定抑制率。

本发明还涉及所述抗生链霉菌FY57发酵培养获得的上清液在制备胰蛋白酶抑制剂中的应用。

所述的BAPNA法测定抑制率为:实验共设三组,分别是样品组(100μL 100μg/mL的牛胰蛋白酶溶液+100μL菌株FY57的发酵上清液)、阴性对照(100μL 100μg/mL的牛胰蛋白酶溶液+100μL pH8的Tris-HCl缓冲液)和样品对照组(100μL菌株FY57发酵上清液);三组实验均在37℃下反应10min,再加入250μL BAPNA后,在37℃下反应20min;然后加入100~300μL30%醋酸终止反应,在25~37℃下保温10~60min;样品对照组加入100μL 100μg/mL的牛胰蛋白酶溶液;所有实验组均在8000~12000rpm下离心5~30min,取上清;上清稀释2~5倍,测定410nm下对硝基苯胺吸光值。

胰蛋白酶抑制率的计算:以胰蛋白酶水解BAPNA产生对硝基苯胺的吸光值代表胰蛋白酶的活性,样品对胰蛋白酶的抑制率通过以下公式计算获得:

所述的BAPNA法测定菌株FY57发酵上清液对胰蛋白酶抑制率为90%左右。

本发明中菌株FY57所产生的胰蛋白酶抑制剂是被分泌到细胞外的,因此,抗生链霉菌FY57发酵培养后获得的含湿菌体发酵液离心后去除菌体,获得的上清液中含有抑制剂,即抑制剂源。所以本发明中以抗生链霉菌FY57发酵液离心后获得的上清液而不是湿菌体来进行抑制反应。所述上清液的用量以离心前含湿菌体发酵液中湿菌体的质量来计。

本发明的有益效果主要体现在:本发明提供了一株新的产胰蛋白酶抑制剂的微生物菌种——抗生链霉菌FY57,利用该菌种生产胰蛋白酶抑制剂的方法具有成本低、操作简单、稳定性好(传代4次的抑制率保持在80%以上)、环境友好等特点,所产胰蛋白酶抑制剂不但酸碱稳定性(能耐受2~13的pH)和热稳定性好(能耐受100℃高温),而且其储藏稳定性好(25℃下保藏20天仍保持50%左右抑制率)及活力高(稀释度达55倍左右),这些特点赋予抗生链霉菌FY57所产胰蛋白酶抑制剂在医药领域具有广阔的应用前景。

(四)附图说明

图1为菌株FY57发酵液抑制牛胰蛋白酶水解酪蛋白的示意图;

图2为抗生链霉菌FY57的系统发育树;

图3为pH对菌株FY57发酵液对牛胰蛋白酶的抑制率影响;

图4为温度对菌株FY57发酵液对牛胰蛋白酶的抑制率影响;

图5为煮沸对菌株FY57发酵液对牛胰蛋白酶的抑制率影响;

图6为保藏条件对菌株FY57发酵液对牛胰蛋白酶的抑制率影响;

图7为稀释倍数对菌株FY57发酵液对牛胰蛋白酶的抑制率影响。

(五)具体实施方式

下面结合具体实施例对本发明进行进一步描述,但本发明的保护范围并不仅限于此:

实施例1:抗生链霉菌FY57菌种的筛选与鉴定

(1)菌种筛选

①菌种来源:从厦门鼓浪屿(24.45°N,118.07°E)的海泥中分离筛选获得;

②菌种分离筛选:从厦门鼓浪屿海域(24.45°N,118.07°E)海平面50cm以下收集海泥,置于无菌的样品瓶中带至实验室,然后称取10g海泥样品,加入到90mL的无菌海水中,混匀后即是浓度为10-1的样品,然后按常规方法分别梯度稀释成浓度为10-2、10-3、10-4、10-5、10-6的样品;分别取不同浓度的样品100μL涂布于海洋高氏固体培养基(终浓度组成为:可溶性淀粉10g/L,K2HPO4>4·7H2O>4·7H2O>2HPO40.02g/L,MgSO4·7H2O>4·7H2O0.01g/L,海盐25g/L,溶剂为水,pH7.5)中,于25℃、200rpm转速下摇床培养4d,8000rpm离心5min收集发酵液上清,测定胰蛋白酶活性,筛得胰蛋白酶抑制剂产生菌。

③酪蛋白平板法筛选胰蛋白酶抑制剂产生菌

酪蛋白平板的制备(质量组成):1%的酪蛋白,2%的琼脂,加入pH8.0磷酸钾缓冲溶液中,加热煮沸,边搅拌边加热防止酪蛋白焦化。煮沸后,用玻璃棒将溶液上层的气泡去除干净,倒入平皿中(每个平板倒入体积为25mL),静置,冷却凝固。用打孔器对称地在平板上打4个直径6mm的孔,用火焰固定。

产生菌所产胰蛋白酶抑制剂的活性测定(BAPNA法):100μg/mL牛胰蛋白酶溶液(溶剂为无菌水)和pH8.0磷酸钾缓冲溶液预先放到37℃水浴5min,待用。将200μL牛胰蛋白酶溶液和200μL菌株发酵上清液混合(以200μL牛胰蛋白酶溶液和200μL pH8.0磷酸钾缓冲溶液的混合液为阴性对照)加入酪蛋白平板的孔中,37℃下放置12h。在酪蛋白平板上加100μL三氯乙酸,涂布均匀,酪蛋白变性呈乳白色,牛胰蛋白酶的水解圈则是透明的,用尺子测量水解圈的直径。总共测定三批发酵液,每批三组平行。

胰蛋白酶抑制率的计算:胰蛋白酶抑制剂将导致胰蛋白酶水解酪蛋白的体积减少(水解圈变小),抑制率通过以下公式计算获得:

其中R1为阴性对照水解圈的半径/mm;R2为样品水解圈的半径/mm;H为酪蛋白平板的高度/mm;

发现17株菌的发酵上清液能够抑制牛胰蛋白酶水解酪蛋白,导致水解圈减小(比阴性对照小)(表1),其中,菌株FY57对牛胰蛋白酶的抑制率最高,详见表1和图1。

表1酪蛋白平板法筛选的菌株胰蛋白酶抑制率

(2)菌种FY57的鉴定

①菌种FY57的分子鉴定

基因组DNA的提取:取菌液1.5mL,移入1.5mL EP管中,12000rpm,4℃离心1min,弃上清。向沉淀中加入125μL浓度为0.5M EDTA(pH8.0),1μL RNaseA(10mg/mL),20μL溶菌酶(10mg/mL),剧烈震荡,37℃水浴30min。加70μL 10%SDS,5μL 10mg/mL蛋白酶K,振荡摇匀,将EP管置于37℃水浴5min,然后55℃水浴30min。加70μL 5M NaCl,摇匀,冰浴30min。12000r/min、4℃离心20min。取上清,补水至500μL,加入一倍体积的Tris饱和酚,上下混匀,12000r/min、4℃离心10min。取上清,加两倍体积的无水乙醇,-20℃下放置10min。12000r/min、4℃离心10min,弃上清。用体积浓度75%的乙醇水溶液清洗一遍,晾干后加入50μLddH2O,冰箱备用。

16S rRNA基因扩增和测序:配制50μL的PCR反应混合液,内含:37μL无菌水,5μL 10×Taq DNA聚合酶缓冲液,4μL浓度为2.5mM的dNTPs,100nM上游引物27F(5’-GAGTTTGATCCTGGCTCAG-3’),100nM下游引物1492R(5’-AGAAAGGAGGTGATCCAGCC-3’),1ng菌株FY57基因组DNA和1U Taq DNA聚合酶。然后将反应混合液置于PCR仪上扩增菌株FY57的16S rDNA,扩增程序为:94℃变性5min,然后是30个循环,每个循环包括94℃变性1min,55℃退火50s,72℃延伸90s,循环结束后,72℃再延伸10min,然后保存在4℃下。扩增结束后,用浓度为1.0%琼脂糖凝胶电泳确证PCR产物大小后,送生工生物工程(上海)有限公司进行DNA测序。16S rRNA基因序列(SEQ ID NO.1)为:CTTAACACATGCAAGTCGAACGATGAAGCCCTTCGGGGTGGATTAGTGGCGAACGGGTGAGTAACACGTGGGCAATCTGCCCTGCACTCTGGGACAAGCCCTGGAAACGGGGTCTAATACCGGATATCACTCTTGCAGGCATCTGTGAGGGTCGAAAGCTCCGGCGGTGCAGGATGAGCCCGCGGCCTATCAGCTTGTTGGTGAGGTAATGGCTCACCAAGGCGACGACGGGTAGCCGGCCTGAGAGGGCGACCGGCCACACTGGGACTGAGACACGGCCCAGACTCCTACGGGAGGCAGCAGTGGGGAATATTGCACAATGGGCGAAAGCCTGATGCAGCGACGCCGCGTGAGGGATGACGGCCTTCGGGTTGTAAACCTCTTTCAGCAGGGAAGAAGCGAAAGTGACGGTACCTGCAGAAGAAGCGCCGGCTAACTACGTGCCAGCAGCCGCGGTAATACGTAGGGCGCAAGCGTTGTCCGGAATTATTGGGCGTAAAGAGCTCGTAGGCGGCTTGTCACGTCGGGTGTGAAAGCCCGGGGCTTAACCCCGGGTCTGCATTCGATACGGGCTAGCTAGAGTGTGGTAGGGGAGATCGGAATTCCTGGTGTAGCGGTGAAATGCGCAGATATCAGGAGGAACACCGGTGGCGAAGGCGGATCTCTGGGCCATTACTGACGCTGAGGAGCGAAAGCGTGGGGAGCGAACAGGATTAGATACCCTGGTAGTCCACGCCGTAAACGGTGGGAACTAGGTGTTGGCGACATTCCACGTCGTCGGTGCCGCAGCTAACGCATTAAGTTCCCCGCCTGGGGAGTACGGCCGCAAGGCTAAAACTCAAAGGAATTGACGGGGGCCCGCACAAGCAGCGGAGCATGTGGCTTAATTCGACGCAACGCGAAGAACCTTACCAAGGCTTGACATACACCGGAAACGGCCAGAGATGGTCGCCCCCTTGTGGTCGGTGTACAGGTGGTGCATGGCTGTCGTCAGCTCGTGTCGTGAGATGTTGGGTTAAGTCCCGCAACGAGCGCAACCCTTGTTCTGTGTTGCCAGCATGTCCTTCGGGATGATGGGGACTCACAGGAGACCGCCGGGGTCAACTCGGAGGAAGGTGGGGACGACGTCAAGTCATCATGCCCCTTATGTCTTGGGCTGCACACGTGCTACAATGGCCGGTACAAAGAGCAGCGATACCGTGAGGTGGAGCGAATCTCAAAAAGCCGGTCTCAGTTCGGATTGGGGTCTGCAACTCGACCCCATGAAGTCGGAGTTGCTAGTAATCGCAGATCAGCATTGCTGCGGTGAATACGTTCCCGGGCCTTGTACACACCGCCCGTCACGTCACGAAAGTCGGTAACACCCGAAGCCGGTGGCCCAACCCCTTGTGGGAGGGAGCTGTCGAAGG。

将菌株FY57的16S rDNA序列在NCBI网站上进行同源性比对,再用MEGA6.0软件绘制系统发育树,结果如图2所示,发现菌株FY57与链霉菌属中的一些菌相似性较高,尤其是与两株抗生链霉菌Streptomyces antibioticus strain NBRC 12838和Streptomycesantibioticus strain 1022-257的亲缘关系最近,16S rRNA基因的相似性为100%,因此,基本可以确定菌株FY57是一株抗生链霉菌。

②菌种FY57的形态特征和生理生化特征

根据《Bergey's Manual of Systematic Bacteriology》(伯杰氏系统细菌学手册)中对抗生链霉菌鉴定要求和鉴定方法,分别测定菌株FY57的形态特征和生理生化特性,结果如下:

菌株FY57的菌丝体呈簇状生长,孢子为椭圆形或杆状,表面光滑,孢子链长而直;营养菌丝体为肉色,气生菌丝体为白色,孢子培养短时间后显示灰色带白斑,培养7d以后,孢子的颜色由灰色转变为黄棕色略带粉紫色。菌株FY57可水解明胶,明胶一开始液化非常慢,5d后速度变快并产生黑色素;可以胨化牛奶变透明,还可产生酪氨酸酶和H2S。菌株FY57可利用D-葡萄糖、L-阿拉伯糖、D-果糖、鼠李糖、肌醇、D-甘露醇和D-木糖,不利用蔗糖和棉子糖,能水解淀粉和纤维素。以上所有的菌落形态特征和生理生化特性与《Bergey'sManual>

综上,将菌株FY57被命名为抗生链霉菌(Streptomyces antibioticus)FY57。

实施例2胰蛋白酶抑制剂

(1)斜面培养:将抗生链霉菌FY57接种于斜面培养基,25℃培养5d,获得斜面菌体,所述斜面培养基终浓度组成为:可溶性淀粉10g/L,K2HPO40.02g/L,MgSO4·7H2O>4·7H2O>

(2)种子培养:从斜面菌体挑取一接种环菌株接种至种子培养基,25℃,200rpm转速下培养5d,获得种子液,所述种子培养基终浓度组成为:可溶性淀粉10g/L,K2HPO4>4·7H2O>4·7H2O0.01g/L,海盐25g/L,溶剂为水,pH7.5;

(3)发酵培养:将种子液以体积浓度2%的接种量接种至发酵培养基,25℃,200rpm转速下培养7d,获得发酵液;将发酵液经8000rpm,离心10min后,弃去沉淀,收集上清液,获得所述胰蛋白酶抑制剂;所述发酵培养基终浓度组成为:可溶性淀粉10g/L,葡萄糖5g/L,胰蛋白胨5g/L,酵母粉5g/L,海盐25g/L,CaCO3>2HPO4>4)2SO4>4·7H2O>

实施例3:BAPNA法测定抑制剂对牛胰蛋白酶的抑制率

将实施例2制备发酵上清液共设三组测定抑制率,分别是样品组(100μL 100μg/mL的牛胰蛋白酶溶液+100μL菌株FY57发酵上清液)、阴性对照(100μL 100μg/mL的牛胰蛋白酶溶液+100μL pH8的Tris-HCl缓冲液)和样品对照组(100μL菌株FY57发酵上清液);三组实验均在37℃下反应10min,再加入250μL BAPNA后,在37℃下反应20min;然后加入100μL体积浓度30%醋酸水溶液终止反应,在37℃下保温10min;样品对照组加入100μL 100μg/mL的牛胰蛋白酶溶液;所有实验组均在10000rpm下离心10min,取上清;上清用无菌水稀释3倍,测定410nm下对硝基苯胺吸光值。

胰蛋白酶抑制率的计算:以胰蛋白酶水解BAPNA产生对硝基苯胺的吸光值代表胰蛋白酶的活性,样品中抑制剂对胰蛋白酶的抑制率通过以下公式计算获得:

测得菌株FY57发酵上清液对胰蛋白酶抑制率为89.5%。

实施例4:菌株FY57产胰蛋白酶抑制剂的遗传稳定性

将菌株FY57在海洋高氏固体培养基(终浓度组成:可溶性淀粉10g/L,K2HPO40.02g/L,MgSO4·7H2O>4·7H2O>

实施例5:菌株FY57的胰蛋白酶抑制剂的酸碱稳定性

取12支50mL的离心管,分别加入按实施例2所制备的菌株FY57发酵上清液10mL,分别用1M NaOH和1M HCl调节pH至2、3、4、5、6、7、9、10、11、12、13,以原发酵液pH8为参照,室温放置6h后,再用NaOH和HCl调回原发酵液的pH8,按实施例3所述的BAPNA法测定抑制剂对牛胰蛋白酶的抑制率,结果见图3。从图3可见,随着pH从2上升至7,菌株FY57发酵上清液对胰蛋白酶抑制率随之增加;pH从7上升至13,菌株FY57发酵上清液对胰蛋白酶抑制率随之减小,可见,菌株FY57发酵上清液中胰蛋白酶抑制剂的最佳pH为7.0,抑制率高达98.9%;另外,在pH为2.0(强酸)和pH为13.0(强碱)条件下,抑制剂均保持一定的活性,抑制率为30%左右。综上可见,菌株FY57所产胰蛋白酶抑制剂具有较强的耐酸、耐碱能力。

实施例6:菌株FY57的胰蛋白酶抑制剂的热稳定性

(1)取7支1.5mL的离心管,分别加入按实施例2所制备的菌株FY57发酵上清液1mL,然后在40℃、50℃、60℃、70℃、80℃、90℃、100℃水浴中恒温处理30min,接着再放至室温(25℃)下30min,待恢复到原发酵液的温度(25℃)后,按实施例3所述的BAPNA法测定抑制剂对牛胰蛋白酶的抑制率,结果见图4。从图4可见,当处理温度维持在70℃以下,抑制剂的活性比较稳定,对牛胰蛋白酶的抑制率保持在80%以上;当处理温度升高至80℃以及90℃,抑制剂活性有所下降,但抑制率仍保持在50%左右;当处理温度升至100℃并处理30min,抑制活性基本丧失。

(2)取7支1.5mL的离心管,分别加入按实施例2所制备的菌株FY57发酵上清液1mL,然后在100℃水浴中恒温处理0min、5min、10min、15min、20min、25min、30min,接着再放至室温(25℃)下30min,待恢复到原发酵液的温度(25℃)后,按实施例3所述的BAPNA法测定菌株FY57发酵上清液中抑制剂对牛胰蛋白酶的抑制率,结果见图5。从图5可见,整体上,随着煮沸时间的延长,抑制剂对牛胰蛋白酶的抑制率随之降低;当处理时间在10min以内,抑制率保持在60%左右;当处理时间在25min以内,抑制率仍然维持在30%左右。

综上可见,菌株FY57所产胰蛋白酶抑制剂具有极强的耐高温能力。

实施例7:菌株FY57的胰蛋白酶抑制剂的储藏稳定性

将按实施例2所制备的菌株FY57发酵上清液分别在-20℃、4℃、25℃和50℃下保存,每隔一段时间取样,按实施例3所述的BAPNA法测定抑制剂对牛胰蛋白酶的抑制率,结果见图6。从图6可见,菌株FY57发酵上清液中抑制剂的最佳储存温度为-20℃,保存1个月内抑制剂活性基本没有变化;储存温度上升至4℃,1个月内抑制剂活性也基本没有变化;当储存温度继续上升至25℃,保存20天,菌株FY57发酵上清液中抑制剂对牛胰蛋白酶的抑制率仍然保持在50%左右;当储存温度继续上升至50℃,抑制剂活性下降比较快。综上可见,菌株FY57所产胰蛋白酶抑制剂具有较好的储藏稳定性。储藏温度的上升有助于细菌滋生,从而降解抑制剂。对菌株FY57发酵液中抑制剂的分离纯化有望进一步提高抑制剂的储藏稳定性。

实施例8:稀释倍数对菌株FY57的胰蛋白酶抑制剂的抑制率影响

将按实施例2所制备的菌株FY57发酵上清液用pH8.0磷酸钾缓冲液(pH与发酵液一致)分别稀释5倍、10倍、15倍、20倍、25倍、30倍、35倍、40倍、45倍、50倍和55倍,按实施例3所述的BAPNA法测定抑制剂对牛胰蛋白酶的抑制率,结果见图7。从图7可见,整体上,随着稀释倍数的上升,菌株FY57发酵液中抑制剂对牛胰蛋白酶的抑制率逐渐下降;当稀释倍数为55时,抑制率接近为0,所以菌株FY57发酵液中抑制剂的最大稀释倍数为55左右。由于测定的是未经分离纯化的发酵液的最大稀释倍数,菌株FY57所产抑制剂的实际最大稀释倍数有望远高于55。综上可见,该胰蛋白酶抑制剂的效价是比较高的。

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