基于PCR‑RLFP‑DHPLC技术扫描分析食品中动物源性成份组成

摘要

本发明涉及一种分析肉制品的动物物种来源的方法。更具体地，本发明提供一种基于PCR‑RLFP‑DHPLC技术全景扫描分析食品中动物源性成份组成的方法。本发明还提供了一种用于分析肉制品的动物物种来源的试剂盒。

说明书

技术领域

本发明属于食品检测领域。更具体地，本发明涉及一种分析肉制品的动物物种来源的方法。特别地，本发明提供一种基于PCR-RLFP-DHPLC技术扫描分析食品中动物源性成份组成的方法。本发明还提供了一种用于分析肉制品的动物物种成份的试剂盒。

背景技术

国内外市场上肉制品掺假现象频发，这种假冒伪劣产品虽不至于损害人民群众的身体健康，但却足以侵害消费者利益，扰乱市场的公平竞争环境，极端情况下还会引发民族矛盾。因此，有必要研发肉制品中动物源性成分鉴定技术，对市场上“肉制品掺假”风险进行防控。

目前国内外用于动物源性成分鉴定的主流技术为荧光实时定量PCR(real-time PCR)技术，虽然该技术具有检测灵敏度高、特异性好和耗时短等优势，但是利用该技术对动物源性成份进行鉴定时，检测结果只能显示样品中是否含有某种动物源性成份，而无法对样本中的动物源性成份组成进行全景分析。正是由于这种技术缺陷，常常会使“肉制品掺假”的风险疏于防控，从而引发一系列的社会问题。例如：2013年英国的“马肉风波”事件在世界范围内造成了极大的负面效应，不久，欧盟继马肉风波之后，又爆出鱼肉制品造假程度更甚的消息。因此，研发一种可以对肉制品中的动物源性成份进行全景扫描分析的技术方法对于“肉制品掺假”的风险防控至关重要。

PCR-RFLP技术是一类被广泛用于物种鉴定的技术方法，该技术方法包括用通用引物扩增一段预选的DNA片段，根据DNA片段的序列选择合适的限制性内切酶，酶切DNA片段并产生特异性的酶切图谱，根据酶切图谱实现对物种的鉴定。通过构建标准物种酶切图谱库以及与测序技术的联合应用，PCR-RFLP可以很好的弥补real-time PCR技术的不足，实现对肉制品中的动物源性成份组成全景扫描^[1，2]。目前，基于PCR-RFLP开发的鱼类物种鉴定技术已经相当成熟，已经有商品化的试剂盒出售。该试剂盒由Agilent>[3]。基于PCR-RFLP技术对非鱼类物种成份的鉴定虽常有报道，但未形成商品化检测试剂盒。2005年Aida>[4]。2009年Abdel-Rahman>[5]。同年，Chandrika>[6]。2012年，Nadia>[7]。同年M.Eaqub等人选用限制性内切酶Alu>[8]。2014年，Abbas>

DHPLC(变性高效液相色谱)是近年来发展起来的一项核酸分析技术。应用Transgenomic公司的DNA SepCartridge分离柱可以有效分离长度不同的DNA片段，并且该技术分辨率高，分析过程自动化，可以有效的防止样品间的交叉污染。本研究拟设计一对可以从样品中扩增出所有禽类和哺乳动物类物种成份COI片段的通用引物序列；通过对COI片段的核酸序列分析，筛选出可以有效区分各物种成份的限制性内切酶；利用筛选获得的内切酶对扩增获得的COI片段进行酶切；利用DHPLC技术绘制酶切图谱，构建阳性样本库，以实现对肉制品中禽类和哺乳动物类的物种成份进行全景扫描分析。

发明内容

本发明的一个目的是提供一种分析肉制品的动物物种来源的方法，所述方法包括以下步骤：

1)提取肉制品样品的基因组DNA；

2)以所述基因组DNA为模板，使用通用COI引物对进行PCR扩增，得到PCR产物；

3)将所述PCR产物进行酶切；和

4)利用DHPLC对酶切产物进行分析，

其中步骤2)中所述的通用COI引物对的序列为(方向5`-3`)：

COI-F(正向引物):CGNATAAAYAAYATRAGCTTYTGA

COI-R(反向引物):TANACTTCDGGRTGNCCRAARAATCA

其中：

R表示A或G；

Y表示C或T；

D表示G或A或T；

N表示A或T或G或C。

根据本发明的一个优选实施方案，其中步骤3)中进行酶切使用的内切酶为HindIII和/或HpaII。

根据本发明的另一个优选实施方案，其中所述动物物种选自哺乳动物和禽类，优选选自反刍动物、犬科动物、兔科、猫科和家禽，和优选选自绵羊、山羊、马、驴、兔子、猫、鼠、牛、猪、狐狸、狗、貉、鹿、骆驼、鹌鹑、大雁、鸽子、鸡、鸭、火鸡和山鸡。

根据本发明的另一个优选实施方案，其中在步骤3)中将获得的DHPLC的洗脱峰与同样条件下确定的已知动物物种的DHPLC的洗脱峰进行比对，如果两者的洗脱峰重合，则指示所述肉制品样品中存在来源于所述已知动物物种的成份。

根据本发明的另一个优选实施方案，所述方法可用于分析所述肉制品样品中动物源性成份组成。

在另一方面，本发明还提供一种用于分析肉制品的动物物种来源的试剂盒，其包括针对哺乳动物和禽类的通用COI引物对，其中所述通用COI引物对的序列为(方向5`-3`)：

COI-F(正向引物):CGNATAAAYAAYATRAGCTTYTGA

COI-R(反向引物):TANACTTCDGGRTGNCCRAARAATCA

其中：

R表示A或G；

Y表示C或T；

D表示G或A或T；

N表示A或T或G或C。

根据本发明的一个优选实施方案，所述试剂盒还包含限制性内切酶Hind III和/或限制性内切酶Hpa III。

根据本发明的另一个优选实施方案，所述试剂盒还包含标准DNA模板和/或PCR反应液，优选其中所述标准DNA模板是含有已知动物物种的COI序列的质粒或者基因组。

在一个优选实施方案中，所述标准DNA模板是含有已知动物物种的COI序列(如cDNA序列或其互补序列)的质粒或者基因组。所述PCR反应液包括进行PCR反应所需的各种组分，如MgCl₂、缓冲液、dNTP、Taq酶等，它们都是本领域技术人员公知的。

根据本发明的另一个优选实施方案，所述试剂盒还包含阳性样本酶切图谱库，所述阳性样本酶切图谱库是指根据已知动物物种的COI序列的质粒或者基因组作为模板，使用权利要求6中所述的通用COI引物进行扩增，所获得的PCR产物使用限制性内切酶Hind III和/或限制性内切酶Hpa III进行酶切后的DHPLC洗脱峰图谱。

本发明还提供根据本发明所述的试剂盒在分析肉制品的动物物种来源中的应用。

通过使用本发明的方法和试剂盒，能够对食品中的动物源性成份进行全景扫描，从而提升了监管部门的监控能力，可以主动发现并防控风险。

发明详述

本发明的一个方面是提供一种分析肉制品中动物源性成份的方法，所述方法包括以下步骤：

1)阳性样本菌种库的构建；

2)设计针对哺乳动物类和禽类COI片段的通用引物；

3)内切酶的筛选；

4)阳性样本酶切图谱库的构建；

5)肉制品样本中动物源性(哺乳动物类和禽类)成份的分析。

根据本发明的一个优选实施方案，所述动物物种选自禽类和哺乳动物类，优选选自反刍动物、犬科动物、兔科、猫科和家禽，和优选选自绵羊、山羊、马、驴、兔子、猫、鼠、牛、猪、狐狸、狗、貉、鹿、骆驼、鹌鹑、大雁、鸽子、鸡、鸭和火鸡。从NCBI数据库中获取上述物种COI片段的核酸序列，利用体外基因组合成技术合成这些物种的COI片段，并将合成的片段分别克隆至pUC57载体中。将连接成功的质粒转入DH5α感受态细胞中，挑取阳性克隆菌，扩增培养，用终浓度40％的甘油保菌，-80℃冻存储藏，制备阳性样本菌种库。

根据本发明的另一个优选实施方案，在上述方法的步骤2)中针对禽类和哺乳动物类物种的COI片段设计一对通用引物，使用这对引物进行PCR扩增，可以扩增出禽类和哺乳动物类中不同物种的COI片段。将上述方法步骤1)中阳性样本菌种库中储藏的菌种活化，扩增，并提取含有物种COI序列的质粒作为模板，使用设计获得的通用引物进行PCR扩增，得到PCR产物，并对PCR产物进行测序分析。

根据本发明的另一个优选实施方案，在上述方法的步骤3)中通过NEBcutter V2.0分析上述方法步骤2)中获得的PCR产物的酶切位点，通过比对，初步确定可以对物种进行区分的限制性内切酶；通过酶切实验，筛选出可以对物种进行区分的限制性内切酶。

根据本发明的另一个优选实施方案，在上述方法步骤4)中利用上述方法步骤3)中筛选获得的限制性内切酶对上述方法步骤2)中的PCR片段进行酶切；利用DHPLC对酶切产物进行分析，绘制酶切片段的洗脱峰图谱，从而获得阳性样本酶切图谱库。

根据本发明的另一个优选实施方案，在上述方法步骤5)中从市场购买肉制品作为分析样本，提取样本的基因组作为扩增模板；使用上述方法步骤2)中的通用引物进行PCR扩增；获得的产物使用上述方法步骤3)中筛选的限制性内切酶进行酶切处理；获得的酶切产物用DHPLC进行分析，绘制酶切产物的洗脱峰图谱；将样品的酶切图谱与阳性样本酶切图谱库进行比对，如果两者的洗脱峰重合，则指示所述肉制品样品中存在来源于所述已知动物物种的成份；如果两者的洗脱峰不重合，则指示所述肉制品样本中存在未知的动物物种成份；将存在未知动物物种成份的样本PCR产物克隆至T-载体，挑取阳性克隆进行测序分析，直至寻找到未知的动物物种成份；以含有未知动物物种成份的T-载体作为模板，按照上述方法4)处理，扩增阳性样本酶切图谱库。

根据本发明的一个特别优选的实施方案，所述动物物种特异性的COI引物选自以下序列(方向5’→3’)：

COI-F:CGNATAAAYAAYATRAGCTTYTGA

COI-R:TANACTTCDGGRTGNCCRAARAATCA

R:A/G；Y:C/T；D:G/A/T；N:A/T/G/C

在另一方面，本发明还提供一种用于分析肉制品的动物物种来源(哺乳动物类和禽类)的试剂盒，其包括：

1)一种动物物种(哺乳动物和禽类特异性)的通用COI引物对；

2)阳性样本酶切图谱库；

3)PCR反应液；和

4)内切酶反应液。

在一个优选实施方案中，所述标准物种酶切图谱库是由上述方法步骤4)制备获得的。所述PCR反应液包括进行PCR反应所需的各种组分，如MgCl₂、缓冲液、dNTP、Taq酶等，它们都是本领域技术人员公知的。所述的酶切反应液包含上述方法步骤3)中筛选获得的内切酶以及与之相匹配的反应缓冲液。

根据本发明的一个特别优选的实施方案，所述试剂盒中的所述动物物种(哺乳动物和禽类特异性)的通用COI引物对选自以下序列(方向5’→3’)：

COI-F:CGNATAAAYAAYATRAGCTTYTGA

COI-R:TANACTTCDGGRTGNCCRAARAATCA

R:A/G；Y:C/T；D:G/A/T；N:A/T/G/C

通过使用本发明的方法和试剂盒，可以：1)本技术方法可以快速、准确的鉴定肉制品中哺乳动物和鸟类的动物源性成份，多个肉制品中动物源性成份分析结果表明，本方法的鉴定准确率为100％；2)本方法采用一对引物和两种限制性内切酶即可实现对现有常见肉制品中哺乳动物成份和禽类成份的检测。

附图说明

图1.阳性样本酶切图谱库，即以阳性样本菌种库中的阳性质粒为模板，用通用引物扩增后酶切，用DHPLC分析获得的阳性样本酶切图谱(色谱截图)；

图2.设计获得的通用引物对对哺乳动物和禽类的COI序列扩增图；

图3.样品1的分析结果(色谱截图)。(1)样品1的酶切图谱；(2)阳性样本图谱库中兔子的酶切图谱；(3)阳性样本图谱库中兔子的酶切图谱与样本1的酶切图谱重叠图。

图4.样品2的分析结果(色谱截图)。(1)样品2的酶切图谱；(2)阳性样本图谱库中鸭子的酶切图谱；(3)阳性样本图谱库中鸭子的酶切图谱与样本2的酶切图谱重叠图。

图5.样品3的分析结果(色谱截图)。(1)样品3的酶切图谱；(2)阳性样本图谱库中牛的酶切图谱；(3)阳性样本图谱库中猪的酶切图谱；(4)阳性样本图谱库中牛和猪的酶切图谱与样本3的酶切图谱重叠图。

图6.样品4的分析结果(色谱截图)。(1)样品4的酶切图谱；(2)阳性样本图谱库中驴的酶切图谱；(3)阳性样本图谱库中马的酶切图谱；(4)阳性样本图谱库中驴和马的酶切图谱与样本4的酶切图谱重叠图。

图7.样品5的分析结果(色谱截图)。(1)样品5的酶切图谱；(2)阳性样本图谱库中马的酶切图谱；(3)阳性样本图谱库中猪的酶切图谱；(4)阳性样本图谱库中马和猪的酶切图谱与样本5的酶切图谱重叠图。

图8.样品6的分析结果(色谱截图)。(1)样品6的酶切图谱；(2)阳性样本图谱库中绵羊的酶切图谱；(3)阳性样本图谱库中猪的酶切图谱；(4)阳性样本图谱库中绵羊和猪的酶切图谱与样本6的酶切图谱重叠图。

图9.样品7的分析结果(色谱截图)。(1)样品7的酶切图谱；(2)阳性样本图谱库中绵羊的酶切图谱；(3)阳性样本图谱库中鸭子的酶切图谱；(4)阳性样本图谱库中绵羊和鸭子的酶切图谱与样本7的酶切图谱重叠图。

图10.样品8的分析结果(色谱截图)。(1)样品8的酶切图谱；(2)阳性样本图谱库中鸡的酶切图谱；(3)阳性样本图谱库中鸭子的酶切图谱；(4)阳性样本图谱库中绵羊的酶切图谱；(5)阳性样本图谱库中鸡、鸭子和绵羊的酶切图谱与样本8的酶切图谱重叠图。

具体实施方式

下面结合实施例对本发明作进一步详细的描述，但本发明的实施方式不限于此。

实施例1:阳性样本菌种库的构建

通过NCBI数据库获得绵羊(Ovis aries|KR868678.1)、山羊(Capra hircus|KR059175.1)、马(Equus caballus|KT757764.1)、驴(Equus asinus|x97337.1)、牛(Bos Taurus|KT184472.1)、猪(Sus scrofa|KF569218.1)、牦牛(Bos mutus|KR106993.1)、水牛(Bubalus bulalis|JN632607.1)、兔子(Oryctolagus cuniculus|AJ001588.1)、猫(Felis catus|U20753.1)、大鼠(Rattus norvegicus|KF011917.1)、狐狸(Vulpes|JN711443.1)、狗(Canis familiaris|AY29880.1)、貉(Nyctereutes procyonoides|GU25622.1)、马鹿(Cervus elaphus|AB245427.2)、骆驼(Camelus bactrianus ferus|EF212038.2)、鸡(Gallus|KR347464.1)、鸭(Anas|KF751616.1)鹌鹑(Coturnix japonica|AP003195.2)、大雁(Anser cygnoides|KT427463.1)、鸽子(Columba livia|KP319029.1)和火鸡(Meleagris gallopavo|EF153719.1)的COI(cytochrome oxidase subunit I)序列，截取每个物种序列对CAACCACAAAGACATTGGCA和GGTGTCCGAARAAYCARAA(方向5`-3`)之间的片段核酸序列，委托北京博轩宏宇生物技术有限公司利用全基因组体外合成技术按照该核酸序列体外合成各个物种的COI片段，并将合成好的基因片段分别克隆至pUC57(武汉淼灵生物科技有限公司)上，将克隆好的载体转入感受态细胞DH5α中，制备成具有氨苄抗性的阳性菌株。将所有菌株分别扩增培养，用终浓度40％的甘油-80℃保存，制备阳性样本菌种库。

实施例2:制备阳性样本质粒

将5uL菌种保存液(来源于阳性样本菌种库)接种至5mL LA培养基(蛋白胨:10g/L，酵母:5g/L，NaCl:10g/L以及氨苄青霉素(天根生物)：100ug/mL)中37℃扩增培养24h，按照质粒提取试剂盒(TaKaRa MiniBEST plasmid purification kit Ver.4.0)的说明书操作提取质粒样本。

实施例3:设计针对哺乳动物和禽类COI片段的通用引物

比对分析实施例1中截取每个物种序列对CAACCACAAAGACATTGGCA和GGTGTCCGAARAAYCARAA(方向5`-3`)之间的片段核酸序列，在各个物种共有的序列区间共设计3对不同引物，以实施例2中提取的质粒作为模板进行PCR实验，对引物的特异性进行分析测试，结果表明第二对引物可以作为通用引物对哺乳动物类和禽类COI序列进行有效扩增(结果见附图2)。第二对的引物序列如下(方向5’→3’)：

COI-F:CGNATAAAYAAYATRAGCTTYTGA

COI-R:TANACTTCDGGRTGNCCRAARAATCA

R:A/G；Y:C/T；D:G/A/T；N:A/T/G/C

实施例4:内切酶的筛选

通过NEBcutter V2.0分析实施例1中不同物种COI序列中的内切酶位点，通过比对，初步确定Alu I，Hpa II，Hind III以及Xba I作为候选内切酶进行实验鉴定。以实施例2制备的阳性样本质粒为模板，以实施例3筛选获得的通用引物为扩增引物，用PCR扩增试剂盒(Q5 High-Fidelity Kit，NEB)分别扩增出不同物种的COI序列，PCR的反应条件遵照PCR扩增试剂盒说明书进行设定。选择NEB的内切酶Alu I，Hpa II，Hind III-HF以及Xba I对PCR产物进行单酶切，酶切反应条件为37℃，1h，灭活条件为80℃，20min。酶切体系为：PCR产物:10uL，内切酶：1uL，Cutsmart buffer：5uL，H₂O:34uL，Total:50uL。将酶切产物用DHPLC(Denaturing>2O:33uL，Total:50uL。鉴定结果表明，仅有IV:Hpa>2O:33uL，总共:50uL。

表1：DHPLC(universal model)的核酸片段分离条件

实施例5：阳性样本图谱库的构建

以实施例2制备的阳性样本质粒为模板，以实施例3筛选获得的通用引物为扩增引物，用PCR扩增试剂盒(Q5 High-Fidelity Kit，NEB)分别扩增出不同物种的COI序列，PCR的反应条件遵照PCR扩增试剂盒说明书进行设定。按照实施例4确定的酶切反应条件对PCR产物进行酶切，按照实施例4所示的DHPLC分析条件和上样量对酶切产物进行分析，储存所获得的酶切图谱(见附图1)构建阳性样本图谱库。

实施例6：样本一的动物源性成份分析

样本一来源于市购标称为“兔肉”的肉制品。称取样本0.2g，使用基因组提取试剂盒(TakaRa MiniBEST Universal Genomic DNA Extraction Kit Ver.5.0)提取样本基因组，具体提取步骤按照试剂盒说明书进行，提取获得的基因组样本浓度用超微量核酸测定仪(DUO，购自于英国柏诺有限公司)测定，经测定，样品的基因组浓度为64ng/uL。用实施例3筛选获得的通用引物为扩增引物，用PCR扩增试剂盒(Q5High-Fidelity Kit，NEB)分别扩增出不同物种的COI序列，PCR的反应条件遵照PCR扩增试剂盒说明书进行设定。按照实施例4确定的酶切反应条件对PCR产物进行酶切，按照实施例4所示的DHPLC分析条件和上样量对酶切产物进行分析，酶切图谱见图3中的(1)。经比对，所获得酶切图谱与阳性物种图谱库中的兔酶切图谱(图3中的(2))全重合(图3中的(3))，分析结果显示样品一为兔肉样本。为了验证检测结果的准确性，将PCR产物测序(委托北京博轩宏宇生物技术有限公司完成)，经过比对，测序结果显示该PCR序列与兔子(Oryctolagus cuniculus|AJ001588.1)的序列相似度为100％，本次检测结果正确。

实施例7：样本二的动物源性成份分析

样本二来源于市购标称为“鸭肉”的肉制品。称取样本0.2g，使用基因组提取试剂盒(TakaRa MiniBEST Universal Genomic DNA Extraction Kit Ver.5.0)提取样本基因组，具体提取步骤按照试剂盒说明书进行，提取获得的基因组样本浓度用超微量核酸测定仪(DUO，购自于英国柏诺有限公司)测定，经测定，样品的基因组浓度为128ng/uL。用实施例3筛选获得的通用引物为扩增引物，用PCR扩增试剂盒(Q5High-Fidelity Kit，NEB)分别扩增出不同物种的COI序列，PCR的反应条件遵照PCR扩增试剂盒说明书进行设定。按照实施例4确定的酶切反应条件对PCR产物进行酶切，按照实施例4所示的DHPLC分析条件和上样量对酶切产物进行分析，酶切图谱见图4中的(1)。经比对，所获得酶切图谱与阳性物种图谱库中任何一张图谱的洗脱峰均不相同。为了进一步确定物种成份，将样品的PCR产物克隆至T载体(pMD^TM18-T>

样品二的测序结果

Tcggataaataatatgagcttttgactcctcccaccatcattcctccttctactcgcctcatccactgtagaagctggcgctggtacgggttgaaccgtatacccacctctagcaggcaacctagcccacgccggagcctcagtggacctggctatcttctcacttcacctggctggtgtctcctccatcctcggagccattaacttcattaccacagccatcaacataaaaccccccgcactctcacaataccaaaccccacttttcgtctgatcagtcctaattaccgccatcctgctcctcctatcactccccgtcctcgccgccggcatcacaatgctactaaccgaccgaaacctaaacaccacattctttgatcctgccggagggggagacccaatcctgtaccaacacctattttgattcttcggacatcccggaagtataa

阳性样本库中鸭(Anas|KF751616.1)的序列

Cggataaaataatatgagcttttgactcctcccaccatcattcctccttctactcgcctcatccactgtagaagctggcgctggtacgggttgaaccgtatacccacctctagcaggcaacctagcccacgccggagcctcagtggacctggctatcttctcacttcacctggctggtgtctcctccatcctcggagccattaacttcattaccacagccatcaacataaaaccccccgcactctcacaataccaaaccccacttttcgtctggtcagtcctaattaccgccatcccgctcctcctatcactccccgtcctcgccgccagcatcacaatgctactaaccgaccgaaacctaaacaccacattctttgatcctgccggagggggagacccaatcctgtaccaacacctattttgattcttcggacatcccgaaagtttaa

实施例8：样本三的动物源性成份分析

样本三来源于市购标称为“牛肉”的肉制品。称取样本0.2g，使用基因组提取试剂盒(TakaRa MiniBEST Universal Genomic DNA Extraction Kit Ver.5.0)提取样本基因组，具体提取步骤按照试剂盒说明书进行，提取获得的基因组样本浓度用超微量核酸测定仪(DUO，购自于英国柏诺有限公司)测定，经测定，样品的基因组浓度为86ng/uL。用实施例3筛选获得的通用引物为扩增引物，用PCR扩增试剂盒(Q5High-Fidelity Kit，NEB)分别扩增出不同物种的COI序列，PCR的反应条件遵照PCR扩增试剂盒说明书进行设定。按照实施例4确定的酶切反应条件对PCR产物进行酶切，按照实施例4所示的DHPLC分析条件和上样量对酶切产物进行分析，酶切图谱见图5中的(1)。经比对，所获得酶切图谱与阳性物种图谱库中的牛的酶切图谱(图5中的(2))不重合而与阳性物种图谱库中猪的酶切图谱(图5中的(3))完全重合(图5中的(4))，分析结果显示样品三为猪肉样本。为了验证检测结果的准确性，将PCR产物测序(委托北京博轩宏宇生物技术有限公司完成)，经过比对，测序结果显示该PCR序列与猪(sus scrofa|KF569218.1)的序列相似度为100％，本次检测结果正确。

实施例9：样本四的动物源性成份分析

样本四来源于市购标称为“驴肉”的肉制品。称取样本0.2g，使用基因组提取试剂盒(TakaRa MiniBEST Universal Genomic DNA Extraction Kit Ver.5.0)提取样本基因组，具体提取步骤按照试剂盒说明书进行，提取获得的基因组样本浓度用超微量核酸测定仪(DUO，购自于英国柏诺有限公司)测定，经测定，样品的基因组浓度为126ng/uL。用实施例3筛选获得的通用引物为扩增引物，用PCR扩增试剂盒(Q5High-Fidelity Kit，NEB)分别扩增出不同物种的COI序列，PCR的反应条件遵照PCR扩增试剂盒说明书进行设定。按照实施例4确定的酶切反应条件对PCR产物进行酶切，按照实施例4所示的DHPLC分析条件和上样量对酶切产物进行分析，酶切图谱见图6中的(1)。经比对，所获得酶切图谱与阳性物种图谱库中的驴和马的酶切图谱完全重合(图6中的(4))，分析结果显示样品四为马肉和驴肉混合样本。为了进一步确定物种成份，将样品的PCR产物克隆至T载体(pMD^TM18-T>

实施例10：样本五的动物源性成份分析

样本五来源于市购标称为“驴肉”的肉制品。称取样本0.2g，使用基因组提取试剂盒(TakaRa MiniBEST Universal Genomic DNA Extraction Kit Ver.5.0)提取样本基因组，具体提取步骤按照试剂盒说明书进行，提取获得的基因组样本浓度用超微量核酸测定仪(DUO，购自于英国柏诺有限公司)测定，经测定，样品的基因组浓度为64ng/uL。用实施例3筛选获得的通用引物为扩增引物，用PCR扩增试剂盒(Q5High-Fidelity Kit，NEB)分别扩增出不同物种的COI序列，PCR的反应条件遵照PCR扩增试剂盒说明书进行设定。按照实施例4确定的酶切反应条件对PCR产物进行酶切，按照实施例4所示的DHPLC分析条件和上样量对酶切产物进行分析，酶切图谱见图7中的(1)。经比对，所获得酶切图谱与阳性物种图谱库中的猪和马的酶切图谱(图7中的(4))完全重合，分析结果显示样品五为猪肉和马肉的混合物。为了进一步确定物种成份，将样品的PCR产物克隆至T载体(pMD^TM18-T>

实施例11：样本六的动物源性成份分析

样本六来源于市购标称为“羊肉”的肉制品。称取样本0.2g，使用基因组提取试剂盒(TakaRa MiniBEST Universal Genomic DNA Extraction Kit Ver.5.0)提取样本基因组，具体提取步骤按照试剂盒说明书进行，提取获得的基因组样本浓度用超微量核酸测定仪(DUO，购自于英国柏诺有限公司)测定，经测定，样品的基因组浓度为54ng/uL。用实施例3筛选获得的通用引物为扩增引物，用PCR扩增试剂盒(Q5 High-Fidelity Kit，NEB)分别扩增出不同物种的COI序列，PCR的反应条件遵照PCR扩增试剂盒说明书进行设定。按照实施例4确定的酶切反应条件对PCR产物进行酶切，按照实施例4所示的DHPLC分析条件和上样量对酶切产物进行分析，酶切图谱见图8中的(1)。经比对，所获得酶切图谱与阳性物种图谱库中的绵羊和猪的酶切图谱(图8中的(4))完全重合。分析结果显示样品六为猪肉和羊肉的混合物。为了进一步确定物种成份，将样品的PCR产物克隆至T载体(pMD^TM18-T>

实施例12：样本七的动物源性成份分析

样本七来源于市购标称为“羊肉”的肉制品。称取样本0.2g，使用基因组提取试剂盒(TakaRa MiniBEST Universal Genomic DNA Extraction Kit Ver.5.0)提取样本基因组，具体提取步骤按照试剂盒说明书进行，提取获得的基因组样本浓度用超微量核酸测定仪(DUO，购自于英国柏诺有限公司)测定，经测定，样品的基因组浓度为109ng/uL。用实施例3筛选获得的通用引物为扩增引物，用PCR扩增试剂盒(Q5High-Fidelity Kit，NEB)分别扩增出不同物种的COI序列，PCR的反应条件遵照PCR扩增试剂盒说明书进行设定。按照实施例4确定的酶切反应条件对PCR产物进行酶切，按照实施例4所示的DHPLC分析条件和上样量对酶切产物进行分析，酶切图谱见图9中的(1)。经比对，所获得酶切图谱与阳性物种图谱库中羊和鸭的酶切图谱完全重合(图9中的(4))，分析结果显示样品七为鸭肉和羊肉的混合物。为了进一步确定物种成份，将样品的PCR产物克隆至T载体(pMD^TM18-T>

实施例13：样本八的动物源性成份分析

样本八来源于市购标称为“羊肉”的肉制品。称取样本0.2g，使用基因组提取试剂盒(TakaRa MiniBEST Universal Genomic DNA Extraction Kit Ver.5.0)提取样本基因组，具体提取步骤按照试剂盒说明书进行，提取获得的基因组样本浓度用超微量核酸测定仪(DUO，购自于英国柏诺有限公司)测定，经测定，样品的基因组浓度为96ng/uL。用实施例3筛选获得的通用引物为扩增引物，用PCR扩增试剂盒(Q5 High-Fidelity Kit，NEB)分别扩增出不同物种的COI序列，PCR的反应条件遵照PCR扩增试剂盒说明书进行设定。按照实施例4确定的酶切反应条件对PCR产物进行酶切，按照实施例4所示的DHPLC分析条件和上样量对酶切产物进行分析，酶切图谱见图10中的(1)。经比对，所获得酶切图谱与阳性物种图谱库中的绵羊、鸭和鸡的酶切图谱完全重合(图10中的(4))，分析结果显示样本八为羊肉、鸭肉和鸡肉的混合物。为了进一步确定物种成份，将样品的PCR产物克隆至T载体(pMD^TM18-T>

虽然为了清楚的理解，已经借助于附图和实施例在一些细节上描述了上述发明，但是说明书和实施例不应当被视为限制本发明的范围。本文中引用的所有专利和科学文献的公开内容通过引用完整地清楚并入。

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