法律状态公告日
法律状态信息
法律状态
2023-01-17
未缴年费专利权终止 IPC(主分类):C12N15/12 专利号:ZL2016100791810 申请日:20160204 授权公告日:20190201
专利权的终止
2019-02-01
授权
授权
2016-06-29
实质审查的生效 IPC(主分类):C12N15/12 申请日:20160204
实质审查的生效
2016-06-01
公开
公开
技术领域
本发明涉及牙鲆Deadend序列,具体的说是一种牙鲆原始生殖细胞deadend基因及其的应用。
背景技术
牙鲆,俗称牙片,为鲆鲽鱼类,录属于鲽形目、牙鲆科、牙鲆属,是我国和日韩等国的重要海水养殖鱼类。牙鲆的快速生长能够提高养殖效率,并减少长时间养殖过程中的各种风险。通过遗传育种技术获得快速生长的品系需要较长的时间。如何利用小分子物质促进其生长未见报道。
Deadend(Dnd)是脊椎动物特有的生殖质成分,是原始生殖细胞(PGCs)及性腺生殖细胞的标记基因,其参与了PGCs的发生、发育、迁移、存活等功能,对PGCs的发育及其脊椎动物的配子生成至关重要。它编码RNA结合蛋白,该蛋白含有6个保守的结构域,一个C端结构域,一个RRM(RNARecognizeMotif),四个N端结构域。至今为止尚未见其对生长的影响的报道。
RNA干扰技术是近些年来发展起来的一种阻抑基因表达的方法,可以特异性剔除或关闭特定基因的表达,该技术已被广泛用于探索基因功能以及表达调控等方面。该技术通过人为地引入与靶基因具有同源序列的dsRNA,宿主细胞对这些dsRNA迅即产生反应,其胞质中的核酸内切酶Dicer将dsRNA切割成多个具有特定长度和结构的小片段RNA(大约21~23bp),即siRNA,最终诱导靶基因的mRNA降解,从而达到阻抑基因的表达,进而出现基因的功能缺失。
发明内容
本发明在于提供一种牙鲆原始生殖细胞deadend基因及其的应用。
为实现上述目的,本发明采用的技术方案为:
一种牙鲆原始生殖细胞deadend基因,牙鲆Deadend基因为SEQIDNo.1中所示。
一种基于牙鲆原始生殖细胞deadend基因的siRNA,所述基于牙鲆Deadend基因的siRNA为20-50bp的siRNA。
所述siRNA的Sense(5'-3')序列为:CCACCUGAGGGUUCUGCGUG;Antisense(5'-3')序列为:CACGCAGAACCCUCAGGUGG;
或,以上述siRNA序列为核心序列在5'端和/或3'添加不同碱基或者其它核苷酸类似物等获得。
一种基于牙鲆原始生殖细胞deadend基因的靶基因应用,所述根据SEQIDNo.1中所示的核苷酸序列的20-50bpsiRNA靶基因在促生长中的应用。
所述根据SEQIDNo.1中所示的核苷酸序列的20-50bpsiRNA靶基因在鱼类中促生长中的应用。
所述鱼类为牙鲆。
本发明的优点:
本发明是首次在牙鲆中发现Deadend(Dnd)的序列,并证实以该序列为靶基因合成的siRNA有促进生长的作用,因而该序列及相关的siRNA在鱼类包括海水鱼类促进生长的应用中具有极大的价值,这为鱼类包括海水鱼类促生长相关研究提供了基础技术保证。
同时,本发明基因序列为牙鲆特有的序列,可以促进牙鲆等海水鱼生长。
附图说明
图1为本发明实施例提供的靶基因siRNA抑制目的基因表达图,其中,M,DNA标准;P1-P9,25bp的SiRNA注射组;B,PCR空白对照;C1-4,对照SiRNA注射组。
图2为本发明实施例提供的靶基因siRNA促进生长的分析图。
具体实施方式
下面结合实施例详述本发明的实验步骤。
本发明在牙鲆中获得Deadend(Dnd)的序列如SEQIDNo.1中所示。以所述SEQIDNo.1中所示的核苷酸序列为靶序列合成siRNA促进牙鲆生长的应用。本发明基因序列为牙鲆特有的序列,可以促进牙鲆生长。
实施例1
1.RNA提取
牙鲆性腺的总RNA提取采用Trizol(Invitrogen)提取,具体步骤如下:取大约0.1mg牙鲆性腺,加入0.1mLTrizol,充分混匀,然后加入Trizol0.9mL,室温放置5min。加入氯仿0.2mL,剧烈振荡15s,室温放置3min。12000×g,4℃,离心15min,离心后将离心管小心取出。取上清到新的离心管中,加入等体积异丙醇,混匀,室温放置10min,12000×g,4℃,离心10min。去掉异丙醇,加入预冷的75%乙醇1mL洗涤沉淀,7500×g,4℃,离心5min。去掉乙醇,置于超净台中使乙醇挥发。加入水(无RNA酶)30μL,55-60℃水浴10min使RNA溶解,取出后置于冰上。加入1μLDNase(无RNA酶),37℃水浴15min,消化DNA以去除DNA的残余。取出后置于冰上,1μL电泳检测质量及完整度,测吸光度检测浓度及质量。直接用于余下实验,或者液氮速冻,-80℃保存
2.cDNA合成及检测
取上述获得性腺总RNA2ug及1uloligod(T)加入灭过菌的PCR(无RNA酶)中,放入PCR仪70℃,5分钟,取出立即置于冰上,加入5.0μL5X反转录酶缓冲液,5.0μLdNTPMix(10mM),1.0μLRNase抑制剂(RNaseInhibitor)(40U/μL),1.0μLm-mlv反转录酶,并用水(无RNA酶)补至25ul,轻轻混匀,42℃温育60min。
用牙鲆β-actin基因作内参PCR检测cDNA,PCR所用引物如下:5'端引物5'–ACTACCTCATGAAGATCCTG–3',3'端引物5'–TTGCTGATCCACATCTGCTG–3'
PCR混合物体系如下:
PCR按照如下程序进行:94℃5min;94℃30s,55℃30s,72℃30min,反应30个循环;72℃10min,4℃+∞;反应结束后取出5μL在1.0%的琼脂糖电泳检测,发现PCR产物中为500bp左右的片段。
3.Dnd的获得。
PCR所用引物如下:(1)5'端引物5'–CACCTGAGGGTTCTG–3',3'端引物5'–TACAACAACCAGTGATCCGAGTG–3'
PCR混合物体系如下:
PCR按照如下程序进行:94℃5min;94℃30s,55℃30s,72℃1min,反应45个循环;72℃10min,4℃∞;反应结束后取出5μL在1.0%的琼脂糖电泳检测,发现PCR产物中含700左右的片段,然后将剩下的产物(约45μL)通过胶回收的方法回收其适当的片段。
PCR产物的回收采用胶回收试剂盒(康为公司)进行,具体方法如下:制备大孔的琼脂糖凝胶,将回收用PCR反应液加入点样孔内,100V电压恒压电泳,使电泳条带分离效果达到最佳为止。在紫外灯下切下目的片段所在琼脂糖块放入1.5mL离心管中。按每100mg琼脂糖加300μLS1液的比例加入S1液,置50℃水浴10min,使琼脂糖块完全溶化。每2min颠倒混匀一次。将琼脂糖溶化后的溶液移入吸附柱,离心30s。倒掉收集管中液体,再将吸附柱放入收集管。
在吸附柱中加入500μLW1液,离心15s。倒掉收集管中液体,将吸附柱放入收集管。在吸附柱中加入500μLW1液,静置1min后,离心15s。倒掉收集管中液体,将吸附柱放入收集管。离心1min。将吸附柱放入一个干净的1.5mL的离心管中,在吸附膜中央加入20uLEB液,37℃5min后,离心1min,取3μL回收溶液电泳检测回收结果。将DNA贮存于-20℃保存备用。将PCR产物用EcoRI(宝生生物)和BamHI(宝生生物)对质粒进行双酶切,酶切的反应体系如下:5μL10×KBuffer,2.5μLEcoRI,2.5μLBamHI,15μL质粒DNA,25μLddH2O,37℃酶切3h。酶切后进行电泳检测,连接到用EcoRI(宝生生物)和BamHI(宝生生物)对质粒进行双酶切pBlueScript-sk(+)载体中,并转化入DH-5α感受态细胞(天根公司)中。
4.质粒的获得及测序。
铺平板(内含IPTG、X-gal和100μg/mL氨苄青霉素),37℃培养过夜。挑取白色菌落于预先分装的3mL含有100μg/mL氨苄青霉素的试管中,37℃培养过夜,碱裂解法提取质粒,具体如下:将1.5mL过夜培养的菌液,5000rpm离心5min,除去上清;加入200μLBuffer1(50mMGlucose,25mMTris-Hcl(pH8.0),10mMEDTA(pH8.0)),重悬菌体。加200μLBuffer2(0.2mol/LNaOH,1%SDS),轻轻混匀,冰上放置5min;200μLBuffer3(3MNaAc,pH5.2),充分混匀,冰上放置5min;12000rpm离心5min,取上清至一新的离心管,加入等体积异丙醇,混匀;冰上放置5min。12000rpm离心5min,除去上清,沉淀用300μL70%乙醇洗涤,7500rpm离心5min。除去上清,室温晾干后加40μL灭菌双蒸水溶解质粒。除去上清,室温晾干后加40μL灭菌双蒸水溶解质粒。用EcoRI(宝生物)对质粒进行酶切,酶切的反应体系如下:1μL10×MBuffer,0.5μLEcoRI,3μL质粒DNA,6.5μLddH2O,37℃酶切2h。酶切后进行电泳检测,将阳性克隆菌株送到测序。将获得序列与已有的部分序列进行比较分析,从而获得如SEQIDNo.1所示的Dnd序列。
SEQIDNo.1
ATGAGGGTGTGGGCACAGGGCTTAGTGAGGAGTGAAGGGTGCCACTGTCCAATAATGGGACTGATCCAGATGCAGCCGCGGGGCGACAGAGAGGCGTCACAGAACCCAGCGATGGAGGAGGAGGTGATGGAGGCCGCGCAGAGCCAGGTCCTGAACTTTGAGCCGGTGCCAGCGCTGGAAACCTGGCTGAAAACAACCAATACACAACTGATTCAAGTAAACGGCCAGAGGAAGTATGGAGGACCACCTGAGGGTTCTGCGTGTGCTGACTGAGGGCGTGCAGAAAGTGTCTCTGACAGCCGGGCCTGGTATCGAGGGGGTGTCGGCCATAGTAGCCTTCTCATCCCACTACACTGCTTCTATGGCCAAGAAGATGCTGGTTGAAGTGTTCAAGAAGCAGTTTGCACTGAATATCTCAATCGTATGGCATCCAGACGAATCGCTGTCTCCAAACAAGCCTCCGAAGAGCCCTCTGGCATCTCCCCTGAAGCCACCATGCCACATCCTGAAGTCTCCACAGCCCTCAGTCCCGCCTCCACATCTCGCCCATCATTCACCCACCCCCCCAAGTTTCTGCAGAGCAGTGGGCGGACCTACGACCTTTTCACACCCTCACTGTCCCCACCACTTCACTTTTTCCTCTTCGCAGGGGGACCGAGTGCCTGTTGAATCCCCAGTGATGCTCCTGAGTAAGGTGTGTGAGGTGACGGGGGTTGGTCAGCCACGCTATGAGATGTCCTACAGCCACACTGGAAGAAATGGATTCCTCTACTTCGACTACACAGTGTGTATCCCCAGGATAACCACTCCTTTCAAAGGGCTGGTCATGACCTTGCCAGGACCCACTGCCAGCACCGTGCATGAGGAAGCTGGGCAGGCTGCAGCCCAACAGGTCCTGAAGAGAATTTACAACAACCAGTGATCCGAGTGACGAGCTCATCAACGAGAGCCTCCTCCTGTAGCACTG
(a)序列特征:
●长度:967
●类型:碱基序列
●链型:单链
●拓扑结构:线性
(b)分子类型:DNA
(c)假设:否
(d)反义:否
(e)最初来源:牙鲆
实施例2
根据上述SEQIDNo.1中所示的核苷酸序列,本领域技术人员可通过人工化学合成方式获得siRNA;即siRNA序列的Sense(5'-3')序列为:CCACCUGAGGGUUCUGCGUG;Antisense(5'-3')序列为:CACGCAGAACCCUCAGGUGG。
而后以上述获得20bp的siRNA序列为核心序列为基础按照现有技术的方式进行修饰获得25bpsiRNA,其中Sense(5'-3')序列为:ACCACCUGAGGGUUCUGCGUGUGCU;Antisense(5'-3')序列为:AGCACACGCAGAACCCUCAGGUGGU。
同时,也可按照生物的合成方式获得。
并且设置同等长度的对照siRNA,其中Sense(5'-3')序列为:UAAAUGUACUGCGCGUGGAGAGGAA;Antisense(5'-3')序列为:UUCCUCUCCACGCGCAGUACAUUUA。
实施例3
1.注射siRNA及样品收集
将上述获得的DndsiRNA(25bpsiRNA)及其对照siRNA注射到48日龄(1.9-2.2cm)的牙鲆幼鱼中,注射前采用MS222麻醉并测量体重,以剂量为0.2nmol/g进行注射,注射后放入温度范围为18-24℃的海水中养殖,充入空气,正常饲养,120天后麻醉、测量体长并分离性腺。
2.提取RNA
同实施案例1步骤1
3.合成cDNA及检测
同实施案例1步骤2
4.抑制靶基因效率的检测
通过PCR检测靶基因表达是否被降低或者完全抑制,所用引物如下:5'端引物5'-CACCTGAGGGTTCTG-3',3'端引物5'-CAGTGATGCTCCTGAGTAAG-3'。
PCR混合物体系如下:
PCR按照如下程序进行:94℃5min;94℃30s,58℃30s,72℃40s,反应45个循环;72℃10min,4℃+∞;反应结束后取出10μL在1.0%的琼脂糖电泳检测,PCR产物应在500bp左右的片段(图1)。由图1可见SiRNA的确能够将目的基因的表达抑制,效率大约在87.5%。
实施例4
将上述所注射的牙鲆通过测量体长分析生长状况(图2),结果表明对照组全长(Totallength±SD)为14.78±0.41(n=15),试验组全长(Totallength±SD)为16.28±0.34(n=20)。
由图2可见注射SiRNA牙鲆的全长比对照组的全长有大约20%增加,经分析发现两者之间有显著性差异(p<0.01),因此注射SiRNA能够增加牙鲆的生长。
机译: 转基因家禽原始生殖细胞的方法,转基因家禽原始生殖细胞的生产方法,转基因家禽的生产方法和禽蛋
机译: 家禽原始生殖细胞的遗传修饰方法,转基因家禽原始生殖细胞,转基因家禽的生产方法以及禽蛋
机译: 一种标记生殖细胞,特别是软骨鱼类原始生殖细胞的方法