法律状态公告日
法律状态信息
法律状态
2019-08-16
未缴年费专利权终止 IPC(主分类):C12N15/56 授权公告日:20120104 终止日期:20180826 申请日:20080826
专利权的终止
2012-01-04
授权
授权
2009-02-25
实质审查的生效
实质审查的生效
2009-01-07
公开
公开
发明领域
本发明涉及一种转糖基β-半乳糖苷酶基因,尤其涉及一种来源于扩张青霉的转糖基β-半乳糖苷酶基因及其应用。
技术背景
β-半乳糖苷酶(β-galactosidase,EC.3.2.1.23),又称乳糖酶,广泛存在于动物、植物和微生物中,能水解多糖或寡糖中的β-半乳糖苷键,也能催化转糖基反应。其水解活性可用于水解牛乳、乳清粉和其他乳制品中的乳糖,生成半乳糖和葡萄糖,解决乳糖不耐症患者的乳品消费问题等;还可用于水解硝基苯-β-D-半乳糖苷或5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷,生成显色物质,作为分子生物学筛选重组克隆的一种工具。近年来,随着糖生物学的发展,β-半乳糖苷酶逐渐成为糖类合成的重要工具之一,其转糖基活性被应用于合成功能性低聚半乳糖和具有生物活性的半乳糖苷化合物,如合成烷基糖苷类表面活性剂和糖基化的抗生素等。
β-半乳糖苷酶所催化的转糖基反应处于水解与合成的动态平衡状态,转糖基新生成的低聚糖及糖苷产物也可以作为底物被酶重新水解,导致转糖基产物的产量不高。为从根本上解决这一问题,研究人员对β-半乳糖苷酶进行分子改造,在酶催化中心用非亲核体氨基酸残基取代亲核体催化氨基酸残基,产生了一种命名为糖苷合成酶(Glycosynthases)的新型活性酶,只催化合成反应,彻底解决了产物被水解的问题,从根本上提高了糖苷酶的转糖基效率,产物产量可高达100%。目前,国际上β-半乳糖苷合成酶的来源还只局限于大肠杆菌,该酶特异合成β-1,6键,而真菌来源的β-半乳糖苷合成酶未见报道。因此,寻找并获得不同来源尤其是真菌来源的转糖基β-半乳糖苷酶基因,对于今后在此基础上进行分子改造获得新的半乳糖苷合成酶具有非常重要的理论意义。
发明内容
本发明针对现有技术的不足,提供一种来源于扩张青霉的转糖基β-半乳糖苷酶基因及其应用。
一种转糖基β-半乳糖苷酶基因,它来源于扩张青霉(Penicillium expansum)F3CGMCCNo.2352,具有如SEQ ID No.1所示核苷酸序列,全长3036碱基。
一种由上述转糖基β-半乳糖苷酶基因编码的转糖基β-半乳糖苷酶,它具有如SEQ IDNo.2所示氨基酸序列,全长1011个氨基酸。
一种插入了包含上述SEQ ID No.1所示核苷酸序列的载体。
所述核苷酸序列插入pPIC9K表达载体。
一种插入了包含上述SEQ ID No.1所示核苷酸序列或含有SEQ ID No.1序列载体的重组细胞。
所述的重组细胞为毕氏酵母。
所述转糖基β-半乳糖苷酶在制药、食品领域方面的应用。
上述转糖基β-半乳糖苷酶基因在基因表达方面的应用,通过将转糖基β-半乳糖苷酶基因克隆到pPIC9K表达载体上,转化毕氏酵母GS115(Pichia pastoris GS115),甲醇诱导高效表达重组β-半乳糖苷酶。
上述转糖基β-半乳糖苷酶基因在毕氏酵母中表达的重组酶为二亚基蛋白,聚合体分子量为240±10kDa,单亚基分子量为120±5kDa;酶对邻硝基苯-β-D-半乳糖苷(o-nitrophenyl-β-D-galactopyranoside,ONPG)的适宜反应的温度为50℃~55℃,适宜反应的pH为3.0~8.0;以pH7.0的磷酸氢二钾-磷酸二氢钾缓冲液配制的酶溶液在温度50℃条件下,能稳定保存至少55个小时,在25℃能稳定保存至少3个月;于4℃保存时,在pH2.4~9.0范围内至少稳定保存24小时;Hg2+、Ag+强烈抑制酶的活性,K+、Na+、NH4+、Ni2+、Ca2+、Mg2+、Mn2+激活酶的活性;酶对乳糖的Km值为1.18mmol/L,酶对邻硝基苯-β-D-半乳糖苷的Km值为4.25mmol/L,酶对对硝基苯-β-D-半乳糖苷(p-nitrophenyl-β-D-galactopyranoside,PNPG)的Km值为0.38mmol/L。
上述转糖基β-半乳糖苷酶基因在毕氏酵母中表达的重组酶在以乳糖为底物的反应体系中具有转糖基活性,反应中有低聚半乳糖生成。
上述重组酶对ONPG的最适反应温度为50℃;对ONPG的最适反应pH为3.6~4.0。
以上操作步骤、实验条件及试剂如无特别说明,均采用本领域常规操作和常用试剂。
本发明有益效果如下:
将上述转糖基β-半乳糖苷酶基因克隆到pPIC9K表达载体上,转化毕氏酵母GS115,甲醇诱导表达,发酵液产酶量高达963mg/L,接近工业规模的克每升水平。该基因克隆到pPIC9K表达载体上还可用于基因改造,即对酶基因进行定点突变,在酶催化中心用非亲核体氨基酸取代亲核体氨基酸,以获得新的β-半乳糖苷合成酶,从根本上提高该酶的转糖基效率。本发明填补了国内真菌转糖基β-半乳糖苷酶基因研究空白,为β-半乳糖苷合成酶的获得提供新的基因来源,并通过高效重组表达为工业生产提供大量的β-半乳糖苷酶。
附图说明
图1是本发明所述的扩张青霉F3重组β-半乳糖苷酶的SDS-PAGE电泳图;1、扩张青霉F3重组β-半乳糖苷酶,2、蛋白分子量标准。
图2是本发明所述扩张青霉F3重组β-半乳糖苷酶以乳糖为底物生成低聚半乳糖的TLC检测图;其中,1、Oligomate 55低聚糖标准品,2、重组β-半乳糖苷酶以乳糖为底物的反应产物,A为葡萄糖、B为半乳糖、C为低聚半乳糖、D为乳糖。
具体实施方式
下面结合附图和实施实例对本发明做进一步说明,但不限于此。实施例中未明确限定的均可按本领域现有技术。
实施例1:扩张青霉(Penicillium expansum)F3总RNA的提取
将扩张青霉F3 CGMCC No.2352接种于50mL产酶发酵培养液中,28℃摇床培养32小时,用超纯水洗涤菌体两次,滤纸过滤收集菌体,液氮研磨破碎细胞壁。取50mg菌粉,加入1mLTrizol试剂,混匀,于15℃~30℃保温5分钟,然后加入200μL氯仿,震荡15秒后于15℃~30℃保温2~3分钟,12000转/分离心5分钟,将上清液转入新管中,再加入0.5mL异丙醇,混匀,于15℃~30℃保温10分钟,沉淀RNA,12000转/分离心10分钟,去除上清,用75%乙醇洗涤RNA沉淀2次,真空干燥5~10分钟,重新溶于50μL无RNA酶的灭菌超纯水。
上述产酶发酵培养液成分:葡萄糖10g/L,蛋白胨10g/L,酵母粉10g/L,氯化钠3g/L,pH自然,115℃灭菌30分钟。
实施例2:扩张青霉F3 β-半乳糖苷酶基因高保守区cDNA序列的PCR扩增
从GenBank中检索到不同菌株β-半乳糖苷酶基因的cDNA序列,设计一对兼并PCR引物(DF-F3和DR-F3):
oligo-dT:5’-TTTTTTTTTTTTTTTTTT-3’
DF-F3:5’-AACGARGGTGGWCTGTACGC-3’
DR-F3:5’-GGARGTAGGWCCKATGTTG-3’
以提取的扩张青霉菌总RNA为模板,采用上述oligo-dT引物进行反转录合成cDNA第一条链,其反应总体积为20μL,先混合dNTP 2.5mmol/L、引物1μmol/L、模板RNA 3μg与无RNA酶的超纯水共12μL,65℃预变性5分钟,置于冰上;然后加入5×cDNA合成缓冲液、DTT 0.1mmol/L、RNA酶抑制剂40U/μL、反转录酶15U共8μL,混匀,50℃延伸30分钟,85℃终止反应5分钟。以上述反应合成的cDNA第一条链为模板,用DF-F3和DR-F3引物进行PCR扩增,其总体积为50μL,即超纯水35μL,10×PCR buffer 5μL、dNTP2.4mmol/L、引物各1μmol/L、MgCl21.5mmol/L、模板cDNA100ng、TaKaRa Taq酶2.5U共15μL。PCR扩增条件:95℃预变性5分钟,反应30个循环(95℃变性30秒,55℃退火30秒,72℃延伸1分钟),30个循环结束后72℃延伸10分钟。PCR产物经琼脂糖凝胶电泳,溴化乙锭染色,紫外分析仪检测,然后回收,测序大小为284bp。所得产物即为扩张青霉F3β-半乳糖苷酶基因高保守区cDNA片段,测得序列如SEQ ID No.3。
详列如下:
tgaaggtctg aggtccgatg ttgttgacgt attttccgta ctggtacccg ttgacgaaca 60
gctgcacacg gtaagcgtcc ggaggggcag tgctgttgcc aaagttaaag tacagcggga 120
tgtcgtagcc tgatagaaga tcaaggtcaa agctggcact gtagaagcga atgccgggct 180
tggtgagacc ggtgaatgga ctgctggaat cccaattctt ggtggatggc ttgggctggt 240
ggaaaccttg acgttcggcg tacagaccac cctcgttaat ctct 300。
实施例3:扩张青霉F3β-半乳糖苷酶基因cDNA 3’端序列的扩增
根据SEQ ID No.3的序列,设计两条嵌套PCR正义引物(GSP F和GSP F1),3’RACE法合成β-半乳糖苷酶基因cDNA的3’端片段。引物序列如下:
3’AP:5’-GGCCACGCGTCGACTAGTACTTTTTTTTTTTTTTTTT-3’
第一轮PCR引物
GSP F:5’-CACCAGCCCAAGCCATCCACCAAG-3’
3’AUAP:5’-GGCCACGCGTCGACTAGTAC-3’
第二轮PCR引物
GSP F1:5’-TCCAGCAGTCCATTCACCGGTCTCACCAAGCCC-3’
3’AUAP:5’-GGCCACGCGTCGACTAGTAC-3’
以提取的扩张青霉菌总RNA为模板,采用上述3’AP引物进行反转录合成cDNA第一条链。以cDNA第一条链为模板,用GSP F和3’AUAP引物进行第一轮PCR扩增,再以上述PCR产物为模板,用GSP F1和3’AUAP引物进行第二轮PCR扩增。PCR扩增条件和PCR产物回收方法同实施例2。PCR产物测序大小为708bp。所得产物即为扩张青霉F3β-半乳糖苷酶基因cDNA3’端序列,测得序列如SEQ ID No.4。
详列如下:
tccagcagtc cattcaccgg tctcaccaag cccggcattc gcttctacag tgccagcttt 60
gaccttgatc ttccatcagg gtacgacatc ccgctgtact ttaactttgg caacagcact 120
gcccctccgg acgcttaccg tgtgcagctg ttcgtcaacg ggtaccagta cggaaaatac 180
gtcaacaacg tcggacccca gacgagcttc cctgttcccg agggtattct gaactaccat 240
ggtaccaact ggattgcgtt gagtttgtgg gctcaacagg aaagcggtgc caagttgaat 300
agctttgagc tgatcaacac cactcccgtg cttacatcct tggacaaggt caagtctgtt 360
gaccagccaa agtacaagtc tcgaaagggg gcgtactaga acggttgctt ccatgatgta 420
atgatgcaat gcttgaagga tcgctaggaa tagacaagag gcatgaggta aatatgaaaa 480
ggcattgaca agcgctcatc tttattgctc gttgagaggc cgatattcaa gaatttacac 540
cttcatatgt tggacactgt ggcgcagcta ttctcttgca aaattgactc ttgtacgtcg 600
atggaggctt atatatcaag ttacacaagt agaatcattc aacagtcact tgtggaccta 660
ctcaatatca ccaggcgtga aatcatcaaa tcaaaaaaaa aaaaaaaa 720。
实施例4:扩张青霉F3β-半乳糖苷酶基因cDNA5′端序列的扩增
根据SEQ ID No.3的序列,设计三条嵌套PCR反义引物(5’GSP R1、5’GSPR2和5′GSPR3),5’RACE法合成β-半乳糖苷酶基因cDNA的5’端片段。引物序列如下:
5’GSP R1:5’-CGACGTAGAAAGACACGCAGTTGAATCCCAATG-3’
第一轮PCR引物
5’AP:5’-GGCCACGCGTCGACTAGTACCCCCCCCCCCCCCCCC-3’
5’GSPR2:5’-TAGCAAGTAGATTCCAGCCTCTTTTGCCGC-3’
第二轮PCR引物
5’AUAP:5’-GGCCACGCGTCGACTAGTAC-3’
5’GSPR3:5’-ATCCAGGGAAACCACCGCCGGAAACTTCGG-3’
以提取的扩张青霉菌总RNA为模板,采用上述5’GSP R1引物进行反转录合成cDNA第一条链。将上述反转录产物,于37℃以RNase H作用1小时,采用PCR产物回收试剂盒回收。末端脱氧核糖核酸转移酶(TaKaRa)在回收产物5’端加上ployG寡核苷酸序列,反应条件是:37℃保温30分钟,加等体积酚/氯仿(24∶1),混匀,12000转/分离心20分钟,取上清,加2倍体积的无水乙醇和1/10体积的醋酸钠(3mol/L)沉淀DNA,离心收集沉淀,加适量体积的无RNA酶的灭菌超纯水溶解。以上述加ployG的cDNA第一条链为模板,用5’AP和5’GSPR2引物进行第一轮PCR扩增,再以该PCR产物为模板,用5’AUAP和5’GSPR3引物进行第二轮PCR扩增。PCR扩增条件和PCR产物回收方法同实施例2。PCR产物测序大小为2833bp。所得产物即为扩张青霉F3β-半乳糖苷酶基因cDNA5’端序列,测得序列如SEQ IDNo.5。
详列如下:
attggccacg cgatcgacta gtaccccccc ccccccccga aaagccgaag gaataaaaga 60
aaaaggttgc ttcctcaatt cggcttcttc acgacagcgc gccgtggaaa ttattcgcca 120
tgaagctcct gtcttcgttg gccctggctg ccttggcggc acaggtctca ggtgctgcta 180
tcagccacaa gcttgacggc ttcactcttc gcgagcatgc tgatgcttca aagcgggagt 240
tgcttcaaaa atatgtgact tgggacaagc actcaatttt catcaatggt gagcgattga 300
tgatgttcag tggtgaagtt cacccctacc ggttgcccgt tgcctcattg tacatcgatg 360
tctttgagaa aatcaaggca ttgggattca actgcgtgtc tttctacgtc gactgggcct 420
tgttggaagg caagcccggc cactacacag ctgagggcat ctttgacttg cagccctttt 480
ttgatgcggc aaaagaggct ggaatctact tgctagcccg tcccggtcct tacatcaacg 540
ccgaagtttc cggcggtggt ttccctggat ggctgcaaag ggtaaatggc acactgcgaa 600
caagcattgg agactacctc aaatcgacag acaactacgc ctcgcacatc gcgaagacca 660
ttgcaaaggc gcagatcacc aacggtggac cgatcattct gtaccagccc gaaaatgagt 720
actctggagc ttgctgtggc tatgaagatt tccccgacgg ctcttacatg caatacatcg 780
aagatcatgc tcgtgatgca ggaatcgtgg ttcccttcat cagcaatgat gcctatgctg 840
gcggtcacaa cgcacccggt accggtaagg gtgcagtcga catctatggc catgatggct 900
accctcttgg attcgactgt gccaatcctt ctgtttggcc ggatggcaat ctgcccacca 960
attaccacac cttgcacgaa gaacaaagcc ctaccacgcc cttctctgtc gttgagttcc 1020
aaggtggagc tttcgacccc tggggtgggg taggcttcgc aaagtgcgca catttgctga 1080
atcacgagtt cgagagagtg ttctacaaga acgactttag ctttggcgtc acattcttca 1140
acttgtacat gatcttcggc ggtacgaatt ggggtaatct gggtcaccct ggtggttaca 1200
catcgtacga ctatggctct gccatatctg aatcgcgtaa cgtcaccaga gagaagtatt 1260
ccgagcttaa actactgggc aacttcgcca aggtttcccc tggctatgtt gtggccaacc 1320
ctggaaattt gactacttcg aaatacacca agactgcgga cctgactgtg actcctctgc 1380
tcggagaaag cagttctgcc ggctcgttct tcgtcatccg tcattccaac tacaacagcc 1440
aagcctcggt gaagtatcaa ctcactcttc caacgagcgc gggtgagctc actattcccc 1500
aactcggtgg tgaactcaca ttgagtggcc gggactcaaa gattcatgtg accgactatg 1560
atgtggctgg tagcaacatt ctctactcta ctgccgaggt gttcacatgg aagaagttcg 1620
ataatggaaa ggtcctcatt ctgtatggtg gacctggcga gcatcatgag tttgctgtca 1680
ccggtgcctc tgccagctct gtcattgagg gatcctcctc gggcatcacg tcaaagaaga 1740
ttggcgatgc ccttgtcgtc gcttgggatg tttcgagtaa gcgccgaatt attaagatcg 1800
gagacctgaa agtcttcctt ctcgaccgta actctgccta caactactgg gtgcctcacc 1860
tgccaaccaa gggcaaggca cctggctacg tcagcaagaa ggcaatcgat tcttcaatca 1920
ttgtgaaggc cggctatctg gttcgcagtg cattcctgag tggaaaggat ttgcacattc 1980
aggcggactt caacgccacc actcccattg agatcattgg cgccccatcc tctgccaaaa 2040
atcttgtcat caacggcaag aagacaaaga ctaacgtcga cgacaatggc atttggtcgg 2100
ccagtgtgtc ctactccaca cctgagatcc atcttcccag cctgaaggat ctgaagtggc 2160
aatccatcga tactcttcct gaagtcaaga actcgtacga tgactctgcg tggacgtctg 2220
ctgaccagcc tcacaccctc aacaccgccc acgagcttca gaccccaact actctcttct 2280
cgtccgacta tggataccac acaggtactc tcctctaccg cggtcacttc gttgccaatg 2340
gcaaagaatc catattcttc attcagactc agggtggttc cgcttatggc cactctgtct 2400
gggtcaatga gacatacgtt ggctcctggg agggaagtgg ttctaacgac aattacaacg 2460
ctacgtatac gctcccctcc ctggccacag gcaaaaagta cgcgatcacg gtggtcattg 2520
acaacatggg tctggacgtg aactgggtca tcggtcaaga gggcatgaag aaccctcgtg 2580
gtatcatccg ctacaacctg gctggacacg acgccagcgc catctcttgg aagctgaccg 2640
gcaaccttgg aggtgaggac taccgcgaca cagtccgcgg acctctcaat gagggaggtc 2700
tttacgccga acgtcaaggt ttccaccagc ccaagccatc caccaagaat tgggattcca 2760
gcagtccatt caccggtctc accaagcccg gcattcgctt ctacagtgcc agctttgacc 2820
ttgatcttcc atc 2880。
将上述三个序列拼接,获得3464bp的cDNA全序列,该序列含一个3036bp的ORF,编码1011个氨基酸,其中上述ORF前117bp编码的39个氨基酸为信号肽序列,后2919bp(含终止密码子)编码的972个氨基酸为成熟酶。
该3036bp的ORF即为扩张青霉(Penicillium expansum)F3 CGMCC No.2352的β-半乳糖苷酶基因编码区cDNA序列,其核苷酸序列及编码的氨基酸序列分别为SEQ ID No.1和SEQ ID No.2。
实施例5:成熟扩张青霉F3β-半乳糖苷酶基因编码区cDNA序列的扩增
设计引物F-F3和R-F3,分别引入能插入pPIC9K质粒(Invitrogen,该质粒载体具有α-factor信号肽序列,可分泌表达蛋白,便于重组蛋白的纯化)的EcoR|、Not|酶切位点(下划线所示),序列如下:
F-F3:5’-CATGAATTCGGAGTTGCTTCAAAAATATGTGACTTGGG-3’
R-F3:5’-GCATGCGGCCGCGTACGCCCCCTTTCGAGAC-3’
以提取的扩张青霉菌总RNA为模板,采用上述R-F3引物进行反转录合成cDNA第一条链。以cDNA第一条链为模板,用F-F3和R-F3引物进行PCR扩增。PCR扩增条件和PCR产物回收方法同实施例2。PCR产物经回收后连接到pMD18-T质粒载体上(TA克隆),转化大肠杆菌Top10感受态细胞,涂布氨苄青霉素平板,用菌落PCR方法筛选获得重组菌,然后测序,将测得的序列进行分析,显示由2919bp组成,与实施例4结果一致。
实施例6:扩张青霉F3β-半乳糖苷酶基因在毕氏酵母中的表达
将实施例5筛选到的重组菌接种于30mL LB氨苄(100μg/mL)培养液中,37℃摇床培养,提取重组质粒,加EcoR|、Not|(TaKaRa)于37℃酶切5小时,进行凝胶回收目的片段,采用同样酶切方法处理pPIC9K质粒载体。将制备好的酶基因片段与pPIC9K载体按一定比例混合,采用连接试剂盒(TaKaRa DNA Ligation Kit Ver.2.0)于16℃连接24小时。然后采用CaCl2转化法转化宿主菌大肠杆菌Top10,转化菌液涂布氨苄青霉素平板,37℃过夜培养。提取阳性菌落质粒,Stu|酶将重组质粒及pPIC9K空质粒线性化,采用电激转化法转化毕氏酵母GS115,转化液涂布MD筛选平板,30℃培养3~4天,挑选生长良好的酵母菌落,采用菌落PCR法验证阳性转化子。将重组质粒阳性转化子及pPIC9K空质粒转化子的单菌落接种于BMGY培养基中,30℃培养至OD600达到2~6,3000转/分离心5分钟收集细胞,弃去上清,用BMMY培养液重悬细胞,25℃甲醇诱导表达,每24小时加一次100%甲醇至终浓度0.5%(v/v)以保持诱导。测定发酵上清液中β-半乳糖苷酶水解活性和转糖基活性,将完全符合要求的重组菌作为菌种保存。
上述LB培养液成分:蛋白胨10g/L,酵母粉5g/L,NaCl 7g/L,pH 7.0~7.5,121℃灭菌20分钟;
上述MD培养基成分:无氨基酸酵母氮源(YNB)13.4g/L,生物素4×10-4g/L,蛋白胨20g/L,琼脂粉15g/L,pH自然,115℃灭菌30分钟;
上述BMGY培养液成分:酵母粉10g/L,蛋白胨20g/L,YNB 13.4g/L,pH6.0磷酸缓冲液100mmol/L,生物素4×10-4g/L,甘油1%(v/v),pH自然,115℃灭菌30分钟;
上述BMMY培养液成分:酵母粉10g/L,蛋白胨20g/L,YNB 13.4g/L,pH6.0磷酸缓冲液100mmol/L,生物素4×10-4g/L,甲醇0.5%(v/v),pH自然,115℃灭菌30分钟。
上述β-半乳糖苷酶水解活性测定:
取50μL上清液,加2mmol/L的ONPG溶液450μL,40℃反应10分钟,加1mL0.5mol/L的Na2CO3溶液终止反应,12,000转/分离心2分钟,上清液测OD400。酶的活力单位规定:以1分钟水解ONPG释放1μmol邻硝基苯酚的酶量为一个酶活力单位(U)。
上述β-半乳糖苷酶转糖基活性测定方法:
取50μL上清液,加入250μL pH5.4醋酸钠缓冲液配制的30%(w/v)乳糖溶液,于50℃反应4小时,12,000转/分离心5分钟,上清液即含反应产物-低聚半乳糖。
将反应产物进行薄层层析(Thin-Layer Chromatography,TLC)分析,确定转糖基活性。TLC薄板(Silica gel60,No.553,Merck)点样后,在展层剂(正丁醇∶乙醇∶水=5∶3∶2,v/v/v)中层析,雾喷显色剂(20%硫酸溶液+0.5%的3,5-二羟基甲苯),于120℃烘烤10分钟,糖斑点显色,如果乳糖斑点附近除单糖斑点外生成了新的寡糖斑点,则β-半乳糖苷酶有转糖基活性。
实施例7:扩张青霉F3β-半乳糖苷酶基因在毕氏酵母中的表达和纯化
将实施例6所保存的毕氏酵母GS115重组菌接种于200mL BMGY培养液,30℃培养24小时,转接于2L BMMY培养液培养液,25℃培养,每24小时加入甲醇至终浓度0.5%(v/v),再继续培养105小时,于3000转/分离心5分钟,获得发酵上清液,即粗酶液。用孔径为0.22μm的滤膜过滤粗酶液,然后用截流分子量为30kDa的膜反复超滤5次,即获得到了电泳纯重组β-半乳糖苷酶。
实施例8:扩张青霉F3重组β-半乳糖苷酶的基本酶学性质
(1)酶的分子量
酶蛋白分子量的测定采用聚丙烯酰胺凝胶电泳(polyacrylamide gel electrophoresis,PAGE)。根据样品和标准蛋白的PAGE图,测定样品和标准蛋白的相对迁移值Rf,用标准蛋白的Rf值对分子量的对数作标准曲线。再根据纯酶样品的Rf值,就可求得其分子量。SDS-PAGE采用垂直板式不连续系统电泳方式,电泳分离胶浓度为7%,浓缩胶4%;Native gradient PAGE(非解离梯度聚丙稀酰胺凝胶电泳)采用5~10%线形梯度垂直板状聚丙烯酰胺凝胶,4℃电泳。
Native gradient PAGE显示酶蛋白的分子量约为240±10kDa,SDS-PAGE显示酶蛋白单亚基分子量约为120±5kDa(如附图1),表明该酶为一个二亚基蛋白。
(2)酶的动力学参数
酶的动力学参数的测定采用双倒数法。
将2μL酶(0.8U/mL)与18μL不同浓度(浓度范围0.28~1.95mol/L)的乳糖溶液混合,于50℃反应30分钟,用葡萄糖试剂盒(上海丰汇医学科技有限公司)测定水解的葡萄糖含量,计算水解速率,用双倒数作图法测得酶对乳糖的Km值为1.18mmol/L。
将50μL酶与450μL不同浓度的ONPG和PNPG(浓度范围0.25~3.0mmol/L)混合,于50℃反应3分钟,加1mL 0.5mol/L的Na2CO3溶液终止反应,测定OD400,计算水解速率,用双倒数作图法测得酶对ONPG和PNPG的Km值分别为4.25mmol/L和0.38mmol/L。
(3)温度和pH对酶活性的影响
在适当的温度范围(20℃~80℃)内,每5℃为一个梯度测定酶在该温度下的相对酶活。结果表明:酶适宜反应的温度为50℃~55℃,最适反应温度为50℃。将酶在上述温度梯度下保温2小时后测定相对酶活。结果表明:酶在50℃以下比较稳定,60℃以上失活较快,65℃失去所有的酶活。
用不同pH的缓冲液配制酶反应体系,测定相对酶活,结果表明:酶适宜反应的pH范围比较广,为pH3.0~8.0,最适反应pH为3.6~4.0;酶在不同pH的缓冲液中4℃保存24小时,测定相对酶活,结果表明:酶在pH 2.4~9.0范围内稳定。
将pH7.0磷酸钾缓冲液配制的酶溶液置室温保存,测定酶在室温(25℃)的稳定性,结果表明:酶在25℃能稳定保存至少3个月。
上述酶活测定方法为:50μL酶与450μL2mmol/L的ONPG溶液混合,于40℃反应10分钟,加1mL0.5mol/L的Na2CO3溶液终止反应,测定OD400。
上述不同pH缓冲液分别为:邻苯二甲酸-盐酸缓冲液pH2.2~3.8;醋酸-醋酸钠缓冲液pH3.6~5.6;磷酸氢二钾-磷酸二氢钾缓冲液pH5.5~8.5;甘氨酸-氢氧化钠缓冲液pH8.7~10.6;碳酸氢钠-氢氧化钠缓冲液pH10.0~11.0。
(4)部分金属离子和化合物对酶活性的影响
以ONPG为底物,在酶活测定反应体系中分别加入终浓度为1mmol/L的各种化学试剂测定相对酶活。结果显示:Hg2+、Ag+强烈抑制酶的活性;K+、Na+、NH4+、Ni2+、Ca2+、Mg2+、Mn2+激活酶的活性。
实施例9:扩张青霉F3重组酶以乳糖为底物的转糖基反应
将20μL pH5.4醋酸钠缓冲液配制的30%(w/v)乳糖溶液与5μL酶于50℃反应4小时,100℃煮沸5分钟灭活酶液,然后进行薄层层析(Thin-Layer Chromatography,TLC)分析。TLC薄板(Silica gel 60,No.553,Merck)点样后,在展层剂(正丁醇∶乙醇∶水=5∶3∶2,v/v/v)中层析,雾喷显色剂(20%硫酸溶液+0.5%的3,5-二羟基甲苯),于120℃烘烤10分钟,糖斑点显色。通过高效液相色谱分析(High Performance Liquid Chromatography,HPLC)和薄层扫描分析,测定低聚半乳糖产量约为27.6%。图2显示了低聚半乳糖产物的TLC分析结果。
上述HPLC分析所用设备及条件:岛津(SHIMADZU)高效液相色谱仪;岛津RID-10A视差检测器;BIO-RAD Aminex HPX-42C柱(300mm×7.8mm);流动相为超纯水,流速为0.4mL/min,柱温70℃;结果分析软件为Class-VP6.0。样品用0.22μm滤膜过滤后,稀释成2%(w/v)的糖溶液,进样分析。
上述薄层扫描分析所用设备及条件:岛津(SHIMADZU)CS-9301双波长飞点薄层扫描仪,检测波长为550nm。
序列表
SEQ ID No.1
<110>山东大学
<120>扩张青霉转糖基β-半乳糖苷酶基因及其应用
<160>5
<210>1
<211>3036
<212>DNA
<213>扩张青霉(Penicillium expansum)
<222>(1)…(3036)
<400>1
atgaagctcc tgtcttcgtt ggccctggct gccttggcgg cacaggtctc aggtgctgct 60
atcagccaca agcttgacgg cttcactctt cgcgagcatg ctgatgcttc aaagcgggag 120
ttgcttcaaa aatatgtgac ttgggacaag cactcaattt tcatcaatgg tgagcgattg 180
atgatgttca gtggtgaagt tcacccctac cggttgcccg ttgcctcatt gtacatcgat 240
gtctttgaga aaatcaaggc attgggattc aactgcgtgt ctttctacgt cgactgggcc 300
ttgttggaag gcaagcccgg ccactacaca gctgagggca tctttgactt gcagcccttt 360
tttgatgcgg caaaagaggc tggaatctac ttgctagccc gtcccggtcc ttacatcaac 420
gccgaagttt ccggcggtgg tttccctgga tggctgcaaa gggtaaatgg cacactgcga 480
acaagcattg gagactacct caaatcgaca gacaactacg cctcgcacat cgcgaagacc 540
attgcaaagg cgcagatcac caacggtgga ccgatcattc tgtaccagcc cgaaaatgag 600
tactctggag cttgctgtgg ctatgaagat ttccccgacg gctcttacat gcaatacatc 660
gaagatcatg ctcgtgatgc aggaatcgtg gttcccttca tcagcaatga tgcctatgct 720
ggcggtcaca acgcacccgg taccggtaag ggtgcagtcg acatctatgg ccatgatggc 780
taccctcttg gattcgactg tgccaatcct tctgtttggc cggatggcaa tctgcccacc 840
aattaccaca ccttgcacga agaacaaagc cctaccacgc ccttctctgt cgttgagttc 900
caaggtggag ctttcgaccc ctggggtggg gtaggcttcg caaagtgcgc acatttgctg 960
aatcacgagt tcgagagagt gttctacaag aacgacttta gctttggcgt cacattcttc 1020
aacttgtaca tgatcttcgg cggtacgaat tggggtaatc tgggtcaccc tggtggttac 1080
acatcgtacg actatggctc tgccatatct gaatcgcgta acgtcaccag agagaagtat 1140
tccgagctta aactactggg caacttcgcc aaggtttccc ctggctatgt tgtggccaac 1200
cctggaaatt tgactacttc gaaatacacc aagactgcgg acctgactgt gactcctctg 1260
ctcggagaaa gcagttctgc cggctcgttc ttcgtcatcc gtcattccaa ctacaacagc 1320
caagcctcgg tgaagtatca actcactctt ccaacgagcg cgggtgagct cactattccc 1380
caactcggtg gtgaactcac attgagtggc cgggactcaa agattcatgt gaccgactat 1440
gatgtggctg gtagcaacat tctctactct actgccgagg tgttcacatg gaagaagttc 1500
gataatggaa aggtcctcat tctgtatggt ggacctggcg agcatcatga gtttgctgtc 1560
accggtgcct ctgccagctc tgtcattgag ggatcctcct cgggcatcac gtcaaagaag 1620
attggcgatg cccttgtcgt cgcttgggat gtttcgagta agcgccgaat tattaagatc 1680
ggagacctga aagtcttcct tctcgaccgt aactctgcct acaactactg ggtgcctcac 1740
ctgccaacca agggcaaggc acctggctac gtcagcaaga aggcaatcga ttcttcaatc 1800
attgtgaagg ccggctatct ggttcgcagt gcattcctga gtggaaagga tttgcacatt 1860
caggcggact tcaacgccac cactcccatt gagatcattg gcgccccatc ctctgccaaa 1920
aatcttgtca tcaacggcaa gaagacaaag actaacgtcg acgacaatgg catttggtcg 1980
gccagtgtgt cctactccac acctgagatc catcttccca gcctgaagga tctgaagtgg 2040
caatccatcg atactcttcc tgaagtcaag aactcgtacg atgactctgc gtggacgtct 2100
gctgaccagc ctcacaccct caacaccgcc cacgagcttc agaccccaac tactctcttc 2160
tcgtccgact atggatacca cacaggtact ctcctctacc gcggtcactt cgttgccaat 2220
ggcaaagaat ccatattctt cattcagact cagggtggtt ccgcttatgg ccactctgtc 2280
tgggtcaatg agacatacgt tggctcctgg gagggaagtg gttctaacga caattacaac 2340
gctacgtata cgctcccctc cctggccaca ggcaaaaagt acgcgatcac ggtggtcatt 2400
gacaacatgg gtctggacgt gaactgggtc atcggtcaag agggcatgaa gaaccctcgt 2460
ggtatcatcc gctacaacct ggctggacac gacgccagcg ccatctcttg gaagctgacc 2520
ggcaaccttg gaggtgagga ctaccgcgac acagtccgcg gacctctcaa tgagggaggt 2580
ctttacgccg aacgtcaagg tttccaccag cccaagccat ccaccaagaa ttgggattcc 2640
agcagtccat tcaccggtct caccaagccc ggcattcgct tctacagtgc cagctttgac 2700
cttgatcttc catcaggcta cgacatcccg ctgtacttta actttggcaa cagcactgcc 2760
cctccggacg cttaccgtgt gcagctgttc gtcaacgggt accagtacgg aaaatacgtc 2820
aacaacgtcg gaccccagac gagcttccct gttcccgagg gtattctgaa ctaccatggt 2880
accaactgga ttgcgttgag tttgtgggct caacaggaaa gcggtgccaa gttgaatagc 2940
tttgagctga tcaacaccac tcccgtgctt acatccttgg acaaggtcaa gtctgttgac 3000
cagccaaagt acaagtctcg aaagggggcg tactag 3036
SEQ ID No.2
<211>2
<211>1011
<212>PRT
<400>2
Met Lys Leu Leu Ser Ser Leu Ala Leu Ala Ala Leu Ala Ala Gln Val Ser Gly Ala Ala
5 10 15 20
Ile Ser His Lys Leu Asp Gly Phe Thr Leu Arg Glu His Ala Asp Ala Ser Lys Arg Glu
25 30 35 40
Leu Leu Gln Lys Tyr Val Thr Trp Asp Lys His Ser Ile Phe Ile Asn Gly Glu Arg Leu
45 50 55 60
Met Met Phe Ser Gly Glu Val His Pro Tyr Arg Leu Pro Val Ala Ser Leu Tyr Ile Asp
65 70 75 80
Vla Phe Glu Lys Ile Lys Ala Leu Gly Phe Asn Cys Val Ser Phe Tyr Val Asp Trp Ala
85 90 95 100
Leu Leu Glu Gly Lys Pro Gly His Tyr Thr Ala Glu Gly Ile Phe Asp Leu Gln Pro Phe
105 110 115 120
Phe Asp Ala Ala Lys Gly Ala Gly Ile Tyr Leu Leu Ala Arg Pro Gly Pro Tyr Ile Asn
125 130 135 140
Ala Glu Val Ser Gly Gly Gly Phe Pro Gly Trp Leu Gln Arg Val Asn Gly Thr Leu Arg
145 150 155 160
Thr Ser Ile Gly Asp Tyr Leu Lys Ser Thr Asp Asn Tyr Ala Ser His Ile Ala Lys Thr
165 170 175 180
Ile Ala Lys Ala Gln Ile Thr Asn Gly Gly Pro Ile Ile Leu Tyr Gln Pro Glu Asn Glu
185 190 195 200
Tyr Ser Gly Ala Cys Cys Gly Tyr Glu Asp Phe Pro Asp Gly Ser Tyr Met Gln Tyr Ile
205 210 215 220
Glu Asp His Ala Arg Asp Ala Gly Ile Val Val Pro Phe Ile Ser Asn Asp Ala Tyr Ala
225 230 235 240
Gly Gly His Asn Ala Pro Gly Thr Gly Lys Gly Ala Val Asp Ile Tyr Gly His Asp Gly
245 250 255 260
Tyr Pro Leu Gly Phe Asp Cys Ala Asn Pro Ser Val Trp Pro Asp Gly Asn Leu Pro Thr
265 270 275 280
Asn Tyr His Thr Leu His Glu Glu Gln Ser Pro Thr Thr Pro Phe Ser Val Val Glu Phe
285 290 295 300
Gln Gly Gly Ala Phe Asp Pro Trp Gly Gly Val Gly Phe Ala Lys Cys Ala His Leu Leu
305 310 315 320
Asn His Glu Phe Glu Arg Val Phe Tyr Lys Asn Asp Phe Ser Phe Gly Val Thr Phe Phe
325 330 335 340
Asn Leu Tyr Met Ile Phe Gly Gly Thr Asn Trp Gly Asn Leu Gly His Pro Gly Gly Tyr
345 350 355 360
Thr Ser Tyr Asp Tyr Gly Ser Ala Ile Ser Glu Ser Arg Asn Val Thr Arg Glu Lys Tyr
365 370 375 380
Ser Glu Leu Lys Leu Leu Gly Asn Phe Ala Lys Val Ser Pro Gly Tyr Val Val Ala Asn
385 390 395 400
Pro Gly Asn Leu Thr Thr Ser Lys Tyr Thr Lys Thr Ala Asp Leu Thr Val Thr Pro Leu
405 410 415 420
Leu Gly Glu Ser Ser Ser Ala Gly Ser Phe Phe Val Ile Arg His Ser Asn Tyr Asn Ser
425 430 435 440
Gln Ala Ser Val Lys Tyr Gln Leu Thr Leu Pro Thr Ser Ala Gly Glu Leu Thr Ile Pro
445 450 455 460
Gln Leu Gly Gly Glu Leu Thr Leu Ser Gly Arg Asp Ser Lys Ile His Val Thr Asp Tyr
465 470 475 480
Asp Val Ala Gly Ser Asn Ile Leu Tyr Ser Thr Ala Glu Val Phe Thr Trp Lys Lys Phe
485 490 495 500
Asp Asn Gly Lys Val Leu Ile Leu Tyr Gly Gly Pro Gly Glu His His Glu Phe Ala Val
505 510 515 520
Thr Gly Ala Ser Ala Ser Ser Val Ile Glu Gly Ser Ser Ser Gly Ile Thr Ser Lys Lys
525 530 535v540
Ile Gly Asp Ala Leu Val Val Ala Trp Asp Val Ser Ser Lys Arg Arg Ile Ile Lys Ile
545 550 555 560
Gly Asp Leu Lys Val Phe Leu Leu Asp Arg Asn Ser Ala Tyr Asn Tyr Trp Val Pro His
565 570 575 580
Leu Pro Thr Lys Gly Lys Ala Pro Gly Tyr Val Ser Lys Lys Ala Ile Asp Ser Ser Ile
585 590 595 600
Ile Val Lys Ala Gly Tyr Leu Val Arg Ser Ala Phe Leu Ser Gly Lys Asp Leu His Ile
605 610 615 620
Gln Ala Asp Phe Asn Ala Thr Thr Pro Ile Glu Ile Ile Gly Ala Pro Ser Ser Ala Lys
625 630 635 640
Asn Leu Val Ile Asn Gly Lys Lys Thr Lys Thr Asn Val Asp Asp Asn Gly Ile Trp Ser
645 650 655 660
Ala Ser Val Ser Tyr Ser Thr Pro Glu Ile His Leu Pro Ser Leu Lys Asp Leu Lys Trp
665 670 675 680
Gln Ser Ile Asp Thr Leu Pro Glu Val Lys Asn Ser Tyr Asp Asp Ser Ala Trp Thr Ser
685 690 695 700
Ala Asp Gln Pro His Thr Leu Asn Thr Ala His Glu Leu Gln Thr Pro Thr Thr Leu Phe
705 710 715 720
Ser Ser Asp Tyr Gly Tyr His Thr Gly Thr Leu Leu Tyr Arg Gly His Phe Val Ala Asn
725 730 735 740
Gly Lys Glu Ser Ile Phe Phe Ile Gln Thr Gln Gly Gly Ser Ala Tyr Gly His Ser Val
745 750 755 760
Trp Val Asn Glu Thr Tyr Val Gly Ser Trp Glu Gly Ser Gly Ser Asn Asp Asn Tyr Asn
765 770 775 780
Ala Thr Tyr Thr Leu Pro Ser Leu Ala Thr Gly Lys Lys Tyr Ala Ile Thr Val Val Ile
785 790 795 800
Asp Asn Met Gly Leu Asp Val Asn Trp Val Ile Gly Gln Glu Gly Met Lys Asn Pro Arg
805 810 815 820
Gly Ile Ile Arg Tyr Asn Leu Ala Gly His Asp Ala Ser Ala Ile Ser Trp Lys Leu Thr
825 830 835 840
Gly Asn Leu Gly Gly Glu Asp Tyr Arg Asp Thr Val Arg Gly Pro Leu Asn Glu Gly Gly
845 850 855 860
Leu Tyr Ala Glu Arg Gln Gly Phe His Gln Pro Lys Pro Ser Thr Lys Asn Trp Asp Ser
865 870 875 880
Ser Ser Pro Phe Thr Gly Leu Thr Lys Pro Gly Ile Arg Phe Tyr Ser Ala Ser Phe Asp
885 890 895 900
Leu Asp Leu Pro Ser Gly Tyr Asp Ile Pro Leu Tyr Phe Asn Phe Gly Asn Ser Thr Ala
905 910 915 920
Pro Pro Asp Ala Tyr Arg Val Gln Leu Phe Val Asn Gly Tyr Gln Tyr Gly Lys Tyr Val
925 930 935 940
Asn Asn Val Gly Pro Gln Thr Ser Phe Pro Val Pro Glu Gly Ile Leu Asn Tyr His Gly
945 950 955 960
Thr Asn Trp Ile Ala Leu Ser Leu Trp Ala Gln Gln Glu Ser Gly Ala Lys Leu Asn Ser
965 970 975 980
Phe Glu Leu Ile Asn Thr Thr Pro Val Leu Thr Ser Leu Asp Lys Val Lys Ser Val Asp
985 990 1000
Gln Pro Lys Tyr Lys Ser Arg Lys Gly Ala Tyr
1005 1010
SEQ ID No.3
<210>3
<211>284
<212>DNA
<222>(1)…(284)
<400>3
tgaaggtctg aggtccgatg ttgttgacgt attttccgta ctggtacccg ttgacgaaca 60
gctgcacacg gtaagcgtcc ggaggggcag tgctgttgcc aaagttaaag tacagcggga 120
tgtcgtagcc tgatagaaga tcaaggtcaa agctggcact gtagaagcga atgccgggct 180
tggtgagacc ggtgaatgga ctgctggaat cccaattctt ggtggatggc ttgggctggt 240
ggaaaccttg acgttcggcg tacagaccac cctcgttaat ctct 300
SEQ ID No.4
<210>4
<211>708
<212>DNA
<222>(1)…(708)
<400>4
tccagcagtc cattcaccgg tctcaccaag cccggcattc gcttctacag tgccagcttt 60
gaccttgatc ttccatcagg gtacgacatc ccgctgtact ttaactttgg caacagcact 120
gcccctccgg acgcttaccg tgtgcagctg ttcgtcaacg ggtaccagta cggaaaatac 180
gtcaacaacg tcggacccca gacgagcttc cctgttcccg agggtattct gaactaccat 240
ggtaccaact ggattgcgtt gagtttgtgg gctcaacagg aaagcggtgc caagttgaat 300
agctttgagc tgatcaacac cactcccgtg cttacatcct tggacaaggt caagtctgtt 360
gaccagccaa agtacaagtc tcgaaagggg gcgtactaga acggttgctt ccatgatgta 420
atgatgcaat gcttgaagga tcgctaggaa tagacaagag gcatgaggta aatatgaaaa 480
ggcattgaca agcgctcatc tttattgctc gttgagaggc cgatattcaa gaatttacac 540
cttcatatgt tggacactgt ggcgcagcta ttctcttgca aaattgactc ttgtacgtcg 600
atggaggctt atatatcaag ttacacaagt agaatcattc aacagtcact tgtggaccta 660
ctcaatatca ccaggcgtga aatcatcaaa tcaaaaaaaa aaaaaaaa 720
SEQ ID No.5
<210>5
<211>2833
<212>DNA
<222>(1)…(2833)
<400>5
attggccacg cgatcgacta gtaccccccc ccccccccga aaagccgaag gaataaaaga 60
aaaaggttgc ttcctcaatt cggcttcttc acgacagcgc gccgtggaaa ttattcgcca 120
tgaagctcct gtcttcgttg gccctggctg ccttggcggc acaggtctca ggtgctgcta 180
tcagccacaa gcttgacggc ttcactcttc gcgagcatgc tgatgcttca aagcgggagt 240
tgcttcaaaa atatgtgact tgggacaagc actcaatttt catcaatggt gagcgattga 300
tgatgttcag tggtgaagtt cacccctacc ggttgcccgt tgcctcattg tacatcgatg 360
tctttgagaa aatcaaggca ttgggattca actgcgtgtc tttctacgtc gactgggcct 420
tgttggaagg caagcccggc cactacacag ctgagggcat ctttgacttg cagccctttt 480
ttgatgcggc aaaagaggct ggaatctact tgctagcccg tcccggtcct tacatcaacg 540
ccgaagtttc cggcggtggt ttccctggat ggctgcaaag ggtaaatggc acactgcgaa 600
caagcattgg agactacctc aaatcgacag acaactacgc ctcgcacatc gcgaagacca 660
ttgcaaaggc gcagatcacc aacggtggac cgatcattct gtaccagccc gaaaatgagt 720
actctggagc ttgctgtggc tatgaagatt tccccgacgg ctcttacatg caatacatcg 780
aagatcatgc tcgtgatgca ggaatcgtgg ttcccttcat cagcaatgat gcctatgctg 840
gcggtcacaa cgcacccggt accggtaagg gtgcagtcga catctatggc catgatggct 900
accctcttgg attcgactgt gccaatcctt ctgtttggcc ggatggcaat ctgcccacca 960
attaccacac cttgcacgaa gaacaaagcc ctaccacgcc cttctctgtc gttgagttcc 1020
aaggtggagc tttcgacccc tggggtgggg taggcttcgc aaagtgcgca catttgctga 1080
atcacgagtt cgagagagtg ttctacaaga acgactttag ctttggcgtc acattcttca 1140
acttgtacat gatcttcggc ggtacgaatt ggggtaatct gggtcaccct ggtggttaca 1200
catcgtacga ctatggctct gccatatctg aatcgcgtaa cgtcaccaga gagaagtatt 1260
ccgagcttaa actactgggc aacttcgcca aggtttcccc tggctatgtt gtggccaacc 1320
ctggaaattt gactacttcg aaatacacca agactgcgga cctgactgtg actcctctgc 1380
tcggagaaag cagttctgcc ggctcgttct tcgtcatccg tcattccaac tacaacagcc 1440
aagcctcggt gaagtatcaa ctcactcttc caacgagcgc gggtgagctc actattcccc 1500
aactcggtgg tgaactcaca ttgagtggcc gggactcaaa gattcatgtg accgactatg 1560
atgtggctgg tagcaacatt ctctactcta ctgccgaggt gttcacatgg aagaagttcg 1620
ataatggaaa ggtcctcatt ctgtatggtg gacctggcga gcatcatgag tttgctgtca 1680
ccggtgcctc tgccagctct gtcattgagg gatcctcctc gggcatcacg tcaaagaaga 1740
ttggcgatgc ccttgtcgtc gcttgggatg tttcgagtaa gcgccgaatt attaagatcg 1800
gagacctgaa agtcttcctt ctcgaccgta actctgccta caactactgg gtgcctcacc 1860
tgccaaccaa gggcaaggca cctggctacg tcagcaagaa ggcaatcgat tcttcaatca 1920
ttgtgaaggc cggctatctg gttcgcagtg cattcctgag tggaaaggat ttgcacattc 1980
aggcggactt caacgccacc actcccattg agatcattgg cgccccatcc tctgccaaaa 2040
atcttgtcat caacggcaag aagacaaaga ctaacgtcga cgacaatggc atttggtcgg 2100
ccagtgtgtc ctactccaca cctgagatcc atcttcccag cctgaaggat ctgaagtggc 2160
aatccatcga tactcttcct gaagtcaaga actcgtacga tgactctgcg tggacgtctg 2220
ctgaccagcc tcacaccctc aacaccgccc acgagcttca gaccccaact actctcttct 2280
cgtccgacta tggataccac acaggtactc tcctctaccg cggtcacttc gttgccaatg 2340
gcaaagaatc catattcttc attcagactc agggtggttc cgcttatggc cactctgtct 2400
gggtcaatga gacatacgtt ggctcctggg agggaagtgg ttctaacgac aattacaacg 2460
ctacgtatac gctcccctcc ctggccacag gcaaaaagta cgcgatcacg gtggtcattg 2520
acaacatggg tctggacgtg aactgggtca tcggtcaaga gggcatgaag aaccctcgtg 2580
gtatcatccg ctacaacctg gctggacacg acgccagcgc catctcttgg aagctgaccg 2640
gcaaccttgg aggtgaggac taccgcgaca cagtccgcgg acctctcaat gagggaggtc 2700
tttacgccga acgtcaaggt ttccaccagc ccaagccatc caccaagaat tgggattcca 2760
gcagtccatt caccggtctc accaagcccg gcattcgctt ctacagtgcc agctttgacc 2820
ttgatcttcc atc 2880
机译: 具有改善的转半乳糖基化活性的糖基化β-半乳糖苷酶组合物
机译: 非生理性糖基供体的β-半乳糖苷酶催化转糖基化方法
机译: 非生理性糖基供体的β-半乳糖苷酶催化转糖基化方法