抗肿瘤血管内皮生长因子受体VEGF－R2抗原及其编码基因与应用

摘要

本发明公开了抗肿瘤血管内皮生长因子受体VEGF－R2的抗原及其编码基因与应用。其目的是提供血管内皮生长因子受体VEGF－R2的抗原及其编码基因与其在制备预防和/或治疗性肿瘤疫苗中的应用。该抗原具有序列表中SEQ ID №：1的氨基酸残基序列。其编码基因具有序列表中SEQ ID №：2的DNA序列。本发明的血管内皮生长因子VEGF－E抗原及其编码基因具有显著的抑瘤效果，且具有表达量高，易纯化，生产周期短，生产规模大，成本低的优点，可制备成预防和/或治疗性肿瘤疫苗及药物。本发明在医学和生物制药领域具有较大的实际意义和广阔的应用前景。

说明书

技术领域

本发明涉及血管内皮生长因子受体抗原及其编码基因与应用，特别是涉及一种血管内皮生长因子受体VEGF-R₂的抗原及其编码基因与其在制备预防和/或治疗性肿瘤疫苗和药物中的应用。

背景技术

恶性肿瘤是威胁人类健康的最重要杀手之一。肿瘤的发生、发展和转移与肿瘤的血管形成密切相关，对根治性切除术的术后患者来说，无微血管侵袭的患者5年复发率为11％，而存在微血管侵袭的患者5年复发率高达50％。由于肿瘤区血管具有相同的特点，因此抗血管形成治疗适用于多种实体肿瘤。以血管为靶点、抑制血管形成，从而抑制肿瘤增殖和转移已成为一条新的肿瘤治疗途径。

研究表明，血管的形成不仅仅取决于血管内皮生长因子(vascular endothelialgrowth factor，VEGF)及其受体(vascular endothelial growth factor receptors，VEGF-R)，同时也受到细胞外基质(extracellular matrix，ECM)蛋白受体—整合素(integrin)的影响[Kerbel RS.A cancer therapy resistant to resistance[J].Nature，1997，390(6658)：335-336.Ellis LM..Angiogenesis and its role incolorectal tumor and metastasis formation[J].Semin Oncol，2004，31(6)：3-9.]。各种血管形成相关因子中，VEGF-E、VEGF-R₂和αVβ₃与肿瘤血管形成的关系最为密切，可以作为抑制病理性血管形成的直接靶标。

VEGF受体家族目前已发现5种，其中VEGF-R1(Flt-1)、VEGF-R₂(KDR/Flk-1)和VEGF-R₃(Flt-4)属于酪氨酸蛋白激酶受体(receptortyrosine kinases，RTKs)超家族，另外两种为Npn(neuropillin)-1和-2，它们在内皮细胞分化和血管形成中发挥关键性作用。VEGF-R₂在胚胎血管内皮细胞中高表达，而在成熟血管中表达下降，说明它在促进血管发生及再生中起作用。VEGF-R₂的胞外区域包含七个免疫球蛋白样区域、一个酪氨酸激酶区域以及一个跨膜区域，其中第二和第三个免疫球蛋白样区域组成高亲和性的配体结合区。

发明内容

本发明的目的是提供一种具有抗肿瘤血管形成作用的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原。

本发明所提供的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原，具有序列表中SEQ ID №：1的氨基酸残基序列。

序列表中的SEQ ID №：1由166个氨基酸残基组成，自氨基(N)端第5-55位为VEGF-R₂第二个免疫球蛋白样区域的氨基酸残基序列，来源于鹌鹑；自氨基端第101-162位为VEGF-R₂第三个免疫球蛋白样区域的氨基酸残基序列，来源于小鼠；自氨基端第56-100位为连接区的氨基酸序列，来源于人。

编码上述血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原的基因也属于本发明的保护范围，可具有序列表中SEQ ID №：2的DNA序列。

序列表中的SEQ ID №：2由498个碱基组成，其编码序列为自5’端第1-498位碱基，编码具有序列表中SEQ ID №：1的氨基酸残基序列的蛋白质。其中，自5’端第13-165位碱基编码第二个免疫球蛋白样区域，自5’端第166-300位碱基为连接区，自5’端第301-486位碱基编码第二个免疫球蛋白样区域。

含有本发明血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因的表达载体、转基因细胞系和宿主菌均属于本发明的保护范围。

扩增所述抗原基因中任一片段的引物对也在本发明的保护范围之内。

与上述血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原特异结合的抗体也属于本发明的保护范围，所述抗体包括单克隆抗体及多克隆抗体，均可按照常规方法制备。

本发明的另一个目的是提供一种表达上述血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原的方法。

本发明所提供的表达上述血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原的方法，是将含有上述血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因的重组表达载体导入宿主细胞，表达得到血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原。

用于构建所述重组表达载体的出发载体可为在大肠杆菌中表达外源基因的表达载体，如pGEX-4T-2、pET-3a、pET-30a、pET-28a、pET-28b或pET-28c，优选为pGEX-4T-2。

以pGEX-4T-2为出发载体，构建的含有所述血管内皮生长因子VEGF-E抗原基因的重组表达载体为pGEX-VEGF-R₂。

上述重组表达载体均可按照常规方法构建。

所述宿主可为大肠杆菌、酵母菌、哺乳动物细胞、昆虫细胞或枯草杆菌等，优选为大肠杆菌。

所述大肠杆菌可为E.coliBL21(DE3)、E.coli JM109、E.coli HB101或E.coliTop10等。

可采用构建工程菌所用的出发菌株的常规培养条件对工程菌进行培养，当所述工程菌为重组大肠杆菌时，需加入IPTG诱导剂，所加入IPTG的浓度为0.8-1.2mmol/L，优选为1mmol/L，诱导温度为35-39℃，优选为37℃，诱导时间为2-4小时，优选为3小时。

本发明的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原可用于制备预防和/或治疗性肿瘤疫苗，编码血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原的基因可用于制备预防和/或治疗性肿瘤DNA疫苗。

所述预防和/或治疗性肿瘤DNA疫苗中的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因可存在于真核表达载体中。

用于构建携带有血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因的真核表达载体的出发载体可为可为任意一种可在哺乳动物中表达外源基因的表达载体，优选为pCI-GPI，其物理图谱见图18。

以pCI-GPI为出发载体，构建的携带有血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因的重组表达载体为pCI-VEGF-R₂。

需要的时候，以血管内皮生长因子VEGF-E抗原制备的疫苗中还可以融入颗粒白细胞-巨噬细胞集落刺激因子(GM-CSF)、干扰素-γ(IFN-γ)、白介素2(IL-2)、TGF-β4等一种或多种细胞因子的基因或蛋白质作为分子免疫佐剂。

本发明提供了血管内皮生长因子受体VEGF-R₂的抗原及其编码基因。以分别含有本发明血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因及小鼠、人、鹌鹑中相应区段的真核表达质粒作为免疫原免疫小鼠，结果与PBS和空载体对照组相比，抗原组小鼠血清中均产生了较高水平的抗体，抗原组小鼠脾细胞中分泌IFN-γ和IL-4的T淋巴细胞数量明显增加，CD4⁺/CD8⁺的比值也明显升高，且本发明的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原较小鼠、人、鹌鹑的相应抗原更能激发小鼠的体液免疫反应；免疫小鼠接受皮下移植瘤攻击后，与PBS和空载体对照组相比，抗原组小鼠的成瘤时间延长、肿瘤生长缓慢且瘤体积缩小、抑瘤率明显提高，且本发明的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原较小鼠、人、鹌鹑的相应抗原的抑瘤效果更加显著，抑瘤率可达90％左右。上述实验结果表明本发明的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原及其编码基因具有显著的抑瘤效果，且具有表达量高，易纯化，生产周期短，生产规模大，成本低的优点，可制备成预防和/或治疗性肿瘤药物及疫苗。本发明在医学和生物制药领域具有较大的实际意义和广阔的应用前景。

下面结合具体实施例对本发明做进一步详细说明。

附图说明

图1为用中心模板法分五步PCR扩增血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因的模式图

图2为PCR扩增血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因的琼脂糖凝胶电泳检测结果

图3为PCR扩增的mVEGF-R₂、qVEGF-R₂和hVEGF-R₂基因片段的琼脂糖凝胶电泳检测结果

图4为稳定转染细胞mRNA的RT-PCR鉴定结果

图5为稳定转染细胞的免疫荧光检测结果

图6为稳定转染细胞的Western Blotting鉴定结果

图7为血管内皮生长因子VEGF-R₂抗原基因原核表达载体的构建流程图

图8为pCI-VEGF-R₂和pGEX-4T-2质粒SalI和NotI双酶切产物的琼脂糖凝胶电泳检测结果

图9为原核表达及纯化的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原的SDS-PAGE检测结果

图10为免疫小鼠的IFN-γ和IL-4的ELISPOT检测结果

图11为免疫小鼠中CD₄⁺和CD₈⁺T细胞数比例的流式细胞仪测定结果

图12为免疫小鼠中CD₄⁺和CD₈⁺T细胞数比例的柱状图

图13为各组免疫小鼠皮下移植瘤的平均成瘤时间

图14为皮下移植瘤攻击后50天各组免疫小鼠的瘤体积测量结果

图15为皮下移植瘤攻击后50天各组免疫小鼠的瘤重测量结果

图16为以B组为对照组的各组免疫小鼠的抑肿瘤率统计结果

图17为皮下移植瘤攻击后50天各组免疫小鼠的存活情况、在体瘤体积和体外瘤体积

图18为载体pCI-GPI的物理图谱

具体实施方式

下述实施例中所用方法如无特别说明均为常规方法。所有引物合成及测序工作均由上海生工生物工程有限公司完成。

实施例1、血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原的设计及其编码基因的克隆

一、血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原的设计

通过国内外大范围文献检索及序列比较，获得了VEGF-R₂胞外区七个免疫球蛋白样区域的氨基酸序列及其在不同物种中的同源性差异。选取包含第二和第三个免疫球蛋白样区域的由166个氨基酸残基组成的序列，即序列表中的SEQ ID №：1，自氨基(N)端第5-55位为VEGF-R₂第二个免疫球蛋白样区域的氨基酸残基序列，来源于鹌鹑；自氨基端第101-162位为VEGF-R₂第三个免疫球蛋白样区域的氨基酸残基序列，来源于小鼠；自氨基端第56-100位为连接区的氨基酸序列，来源于人。

二、血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因及其鼠源相应基因的克隆

根据步骤一设计的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原的氨基酸序列推导出编码该序列的核苷酸序列，即序列表中的SEQ ID №：2，由498个碱基组成，其编码序列为自5’端第1-498位碱基，编码具有序列表中SEQ ID №：1的氨基酸残基序列的蛋白质。其中，自5’端第13-165位碱基编码第二个免疫球蛋白样区域，自5’端第166-300位碱基为连接区，自5’端第301-486位碱基编码第二个免疫球蛋白样区域。将全基因分成两段，利用中心模板法分5步合成该基因，同时克隆出小鼠、鹌鹑和人VEGF-R₂相应的片段作为对照，分别简称mVEGF-R₂、qVEGF-R₂和hVEGF-R₂，具体方法如下：

1、血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因的克隆

根据推导的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因的核甘酸序列设计PCR扩增引物，并在引物F5、R5两端分别添加限制性内切酶XhoI和EcoRV识别位点，引物序列如下：

前段F1 5’-ATTTCGTGGGATAATAAAAAAGGCTTCACTATACCCAGTCATCTAA-3’

前段R1 5’-GCTTCACAGAAGACCATGCCTGCGTAGTTGATTAGATGACTGGGTA-3’

前段F2 5’-AGAAAAGGTGTTCGTTCCTGACGGTAAATCCATTTCGTGGGATAAT-3’

前段R2 5’-AATAGACTGGTAACTTTCATCATTAATTTTTGCTTCACAGAAGACC-3’

前段F3 5’-ATCTCAATGTATCTCTACATGCGAAATATCCAGAAAAGGTGTTCGT-3’

前段R3 5’-TCCTATACCCTACAACGACAACTATGTACATAATAGACTGGTAACT-3’

前段F4 5’-GTGGTGATTCCATGCCTTGGAACTGTGTCAAATCTCAATGTATCTC-3’

前段R4 5’-CCATGAGACGGACTCAGAACCACATCATAAATCCTATACCCTACAA-3’

后段F1 5’-GGCTTGATTTCACCTGGCACTCTCCACCTTCAAAGTCTCATCATAA-3’

后段R1 5’-AAAGGGTTTCACATCCCGGTTTACAATCTTCTTATGATGAGACTTT-3’

后段F2 5’-AATTGTACAGCGAGAACAGAGCTCAATGTGGGGCTTGATTTCACCT-3’

后段R2 5’-TGCTCAAAAACATCTTCGCCACAGTCCCAGGAAAGGGTTTCACATC-3’

后段F3 5’-TGAACTATCTGTTGGAGAAAAGCTTGTCTTAAATTGTACAGCGAGA-3’

后段R3 5’-TCACTCTTGGTCACACTTTCTATTGTCAAGGTGCTCAAAAACATCT-3’

后段F4 5’-ATGATGTGGTTCTGAGTCCGTCTCATGGAATTGAACTATCTGTTGG-3’

后段R4 5’-ACTGGATGCTGCACAGGTGTATTCCCCTTGGTCACTCTTGGTCACA-3’

F5     5’-GCCTCGAGGTGGTGATTCCATGCCTTGGAACTG-3’(带下划线碱基为限制性内切酶XhoI识别位点)

R5  5’-GCGATATCACTGGATGCTGCACAGGTGTATTCC-3’(带下划线碱基为限制性内切酶EcoRV识别位点)

采用中心模板法分五步PCR扩增目的基因，合成模式图见图1，将全基因分成前、后两段，两片段均用四步PCR合成法获得目的基因，然后利用PCR方法将前后两端拼接起来，具体方法如下：第一步扩增体系为：10×PCR缓冲液5μl，MgCl₂(2.5mM)5μl，dNTPs(2.5mM)4μl，上、下游引物(20μM)各1μl，Taq DNA聚合酶(5U/μl)1μl，加去离子水至50μl。PCR反应条件为：先94℃预变性5min；然后94℃变性30s，55℃退火30s，72℃延伸30s，共5个循环；最后72℃继续延伸10min。

第二步、第三步和第四步扩增均以上一步PCR产物稀释50倍后作模板进行。扩增体系同上，只是引物第二步PCR扩增选用引物和F2，第三步选用引物R3和F3，第四步选用引物R4和F4。PCR反应条件为：94℃1min，55℃1min，72℃1min，共30个循环。四次PCR扩增后所得的两段目的基因，分别命名为前段和后段。

最后一步PCR扩增体系为：10×PCR缓冲液5μl，MgCl₂(2.5mM)5μl，dNTPs(2.5mM)4μl，合成引物(20μM)F5和R5各1μl，Taq DNA聚合酶(5U/μl)1μl，稀释50倍后的前段1μl，稀释50倍后的后段1μl，加去离子水至50μl。PCR反应条件同步骤二至四。五次PCR扩增后，对PCR扩增产物进行1.2％琼脂糖凝胶电泳检测，检测结果如图2所示(泳道M.DNA相对分子质量标准DL-2000；泳道1-4.前段分步PCR产物；泳道5和6.PCR终产物(498bp)；泳道7-10.后段分步PCR产物)，结果经PCR扩增获得了长度约为498bp的基因片段(图2中箭头所指片段)，与预期结果相符。用北京博大泰克生物基因技术有限责任公司的“PCR片断快速胶回收试剂盒”并参照试剂盒说明书回收并纯化该目的片段，将其克隆到pMD18-T载体(购自TaKaRa公司)中，对含有回收片断的重组载体进行测序，结果扩增片断具有序列表中SEQ ID №：2的核苷酸序列，扩增序列正确。

2、鹌鹑中相应基因片断的扩增

1)设计引物

根据GeneBank中鹌鹑的VEGF-R₂基因序列(序列号：X83288)设计扩增相应区域(将该片段命名为qVEGF-R₂)的引物，并在上、下游引物的两端分别引入限制性内切酶酶XhoI和EcoRV的识别位点，引物序列如下：

F6(上游引物)：5’-GCGCTAGCGTAGTGCCATGCCTTGGAACTGTG-3’(带下划线碱基为限制性内切酶XhoI识别位点)

R6(下游引物)：5’-GCGATATCGTTCATGCGACCACTGGATGCTGC-3’(带下划线碱基为限制性内切酶EcoRV识别位点)

2)制备鹌鹑胚组织匀浆

超净台内无菌取出鹌鹑胚胎，用剪刀剪碎；将剪碎的组织放于研钵中边加液氮边研细至粉末状，收集于冰预冷的玻璃匀浆器中，加入1ml Trizol，匀浆至透明；组织匀浆转入无菌RNase-free EP管中备用。

3)Trizol法提取组织匀浆的总RNA

收获组织匀浆的EP管中加入氯仿200μl，立即颠倒混匀15s，室温静置5min；4℃/12000rpm，离心15min；小心将上层液相移入另一新的无菌RNase-free的1.5mL EP管中，加入等量的异丙醇，颠倒混匀，室温静置10min；4℃、12000rpm离心10min；弃上清，加入75％的乙醇1mL，颠倒混匀，4℃、7500rpm离心5min，弃上清；重复上步后彻底弃上清，将沉淀自然干燥，加入DEPC水10μl溶解沉淀，直接用于逆转录反应。

4)逆转录反应

将步骤3)提取的鹌鹑胚组织的总RNA为模板，以olig(dT)20为引物，用美国Invitrogen公司的SuperScript III RNase H-Reverse Transcriptase并参照产品说明书逆转录合成cDNA。

5)qVEGF-R₂的PCR扩增

以步骤4)反转录合成的cDNA为模板，在引物F6和R6的引导下进行PCR扩增，100μl PCR反应体系为：2×GC缓冲液I(TaKaRa公司La Taq附带，详细说明参见TaKaRa产品目录)50.0μl，dNTPs混合物(2.5mM)16.0μl，TaKaRa La Taq(5U/μl)1.0μl，逆转录产物2.0μl，F6引物(20μM)2.0μl，R6引物(20μM)2.0μl，用灭菌去离子水补充总体积至100μl。PCR反应条件：94℃预变性5分钟；然后94℃30s，60℃30s，72℃2分钟，共30个循环；最后72℃延伸10分钟。反应结束后，对PCR扩增产物进行1.2％琼脂糖凝胶电泳检测，检测结果如图3所示(泳道M.DNA相对分子质量标准DL-2000；泳道1.qVEGF-R₂；泳道4.血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因)，结果经PCR扩增获得了长度为498bp的目的片段，与预期结果相符。用北京博大泰克生物基因技术有限责任公司的“PCR片断快速胶回收试剂盒”并参照试剂盒说明书回收并纯化该目的片段，将其克隆到pMD18-T载体(购自TaKaRa公司)中，对含有回收片断的重组载体进行测序，结果扩增序列正确。

3、小鼠中相应基因片断的扩增

1)设计引物

根据GeneBank中小鼠的VEGF-R₂基因序列(序列号：NM-010612)设计扩增相应区域(将该片段命名为mVEGF-R₂)的引物，并在上、下游引物的两端分别引入限制性内切酶酶XhoI和EcoRV的识别位点，引物序列如下：

F7(上游引物)5’-GCGCTAGCGTGGTGATCCCCTGCCGAGGGTCG-3’(带下划线碱基为限制性内切酶XhoI识别位点)

R7(下游引物)：5’-GCGATATCACTGGACGCTACACAGGTGTATTC-3’(带下划线碱基为限制性内切酶EcoRV识别位点)。

2)制备鼠胚组织匀浆

断颈处死孕鼠，浸泡于75％乙醇中5min；无菌取出子宫及其中的胚胎、胎盘，用剪刀尽量剔除脂肪和结缔组织并剪碎；将剪碎的组织放于研钵中加液氮研细至粉末状，收集于冰预冷的玻璃匀浆器中，加入1mL Trizol，匀浆至透明；组织匀浆迅速转入无菌RNase-free EP管中备用。

3)Trizol法提取组织匀浆的总RNA

方法请参照步骤2相应方法。

4)逆转录反应

将步骤3)提取的鼠胚组织的总RNA为模板，以olig(dT)20为引物，用美国Invitrogen公司的SuperScript III RNase H-Reverse Transcriptase并参照产品说明书逆转录合成cDNA。

5)mVEGF-R₂的PCR扩增

以步骤4)反转录合成的cDNA为模板，在引物F7和R7的引导下进行PCR扩增，除模板及引物外，PCR反应体系及反应条件与步骤2相同。反应结束后，对PCR扩增产物进行1.2％琼脂糖凝胶电泳检测，检测结果如图3所示(泳道M.DNA相对分子质量标准DL-2000；泳道3.qVEGF-R₂；泳道4.血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因)，结果经PCR扩增获得了长度约为498bp的基因片段，与预期结果相符。用北京博大泰克生物基因技术有限责任公司的“PCR片断快速胶回收试剂盒”并参照试剂盒说明书回收并纯化该目的片段，将其克隆到pMD18-T载体(TaKaRa公司)中，对含有回收片断的重组载体进行测序，结果扩增序列正确。

4、人中相应基因片断的扩增

1)设计引物

根据GeneBank中人的VEGF-R₂基因序列(序列号：AF-063658)设计扩增相应区域(将该片段命名为hVEGF-R₂)的引物，并在上、下游引物的两端分别引入限制性内切酶酶XhoI和EcoRV的识别位点，引物序列如下：

F8(上游引物)5’-GCGCTAGCGTGATTCCATGTCTCGGGTCCATT-3’(带下划线碱基为限制性内切酶Xho I识别位点)

R8(下游引物)：5’-GCGATATCCCCACTGGATGCTGCACAGGTGTA-3’(带下划线碱基为限制性内切酶EcoRV识别位点)。

2)人脐静脉内皮细胞(HUVEC)的消化和培养

超净台内将20-30cm长的新鲜脐带表面及脐静脉内壁以Hanks平衡盐溶液(购自北京中山公司)反复冲洗干净，加入0.1％的胶原酶10ml于37℃消化静脉管腔壁20min，消化液移入离心管内1000rpm离心10min，弃上清后加入10ml M199培养液(购自GibcoBRL公司)混匀，以每孔0.2ml接种入96孔培养板中，置于CO₂孵箱在5％CO₂、37℃条件下孵育。12小时后换液一次，以后每2-3天换液，待细胞渐融合时使用。

3)留取细胞样品

0.25％的胰酶将生长状态好的HUVEC细胞消化制成单细胞悬液，收集于玻璃离心管中，1000rpm离心5min，弃上清；PBS洗三次后完全吸弃上清；重悬细胞并计数，使细胞的终密度为1×10⁶/ml；取1ml细胞液转移至1.5ml无菌RNase-free EP管中，2000rpm离心3min；弃上清并加入适量Trizol混匀备用。

4)Trizol法提取组织匀浆的总RNA

方法与步骤2相同。

5)逆转录反应

将步骤3)提取的鼠胚组织的总RNA为模板，以olig(dT)20为引物，用美国Invitrogen公司的SuperScript III RNase H-Reverse Transcriptase并参照产品说明书逆转录合成cDNA。

6)hVEGF-R₂的PCR扩增

以步骤4)反转录合成的cDNA为模板，在引物F8和R8的引导下进行PCR扩增，除模板及引物外，PCR反应体系及反应条件与步骤2相同。反应结束后，对PCR扩增产物进行1.2％琼脂糖凝胶电泳检测，检测结果如图3所示(泳道M.DNA相对分子质量标准DL-2000；泳道2.hVEGF-R₂；泳道4.血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因)，结果经PCR扩增获得了长度约为498bp的基因片段，与预期结果相符。用北京博大泰克生物基因技术有限责任公司的“PCR片断快速胶回收试剂盒”并参照试剂盒说明书回收并纯化该目的片段，将其克隆到pMD18-T载体(TaKaRa公司)中，对含有回收片断的重组载体进行测序，结果扩增序列正确。

实施例2、血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因真核表达载体的构建及其鉴定

一、血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因真核表达载体的构建

将实施例1扩增的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因用限制性内切酶XhoI和EcoRV进行双酶切后，与经相同酶双酶切的载体pCI-GPI[在Promega公司的真核表达质粒pCI-neo+基础上构建而成。主要是在pCI-neo+原多克隆位点NheI和XbaI酶切位点之间插入通用序列构建而成。通用序列的基因顺序为5’-NheI-信号肽-XhoI-EcoRV-EcoRI-IgG Fc-GPI-XbaI-3’，外源免疫分子基因可以在NheI-EcoRI之间选择合适的酶切位点插入。pCI-GPI除含有人IgG Fc段(GenBank号：Z17370)和糖基化磷脂酰肌醇GPI(GenBank号：XM676434)编码序列外，还含有pCI载体的主要骨架结构，如CMV早期启动子、嵌合内含子、Neo筛选标记、SV40增强子和氨苄抗性基因Ampr+等，物理图谱见图18]在16℃下连接12-24小时，连接体系为：10×T4 DNA连接缓冲液1μl，T4 DNA连接酶(12u/μl)1μl，PCR纯化产物4μl，pCI-GPI载体1μl，加灭菌双蒸水至10μl。将连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞，将转化细胞涂布于含100mg/mL氨苄青霉素的LB抗性平板上进行筛选。然后挑取在抗性平板上长出的单菌落进行菌落PCR鉴定：将单菌落接种于3mL含100mg/mL氨苄青霉素(Amp⁺)的LB液体培养基中扩大培养3h。培养结束后，取1μl菌液用100μl水稀释，煮沸10min，12000rpm离心3min，取上清做模板，在引物F5和R5的引导下进行PCR扩增，25μl PCR反应体系为：上清5μl，引物F5和R5各1μl，10×PCR缓冲液2.5μl，MgCl₂ 2.5μl，dNTPs 0.5μl，Taq DNA聚合酶0.5μl，加灭菌双蒸水至25μl。PCR反应条件：先94℃预变性5分钟；然后94℃30s，60℃30s，72℃2分钟，共30个循环；最后72℃延伸10分钟。反应结束后，对PCR扩增产物进行1.2％琼脂糖凝胶电泳检测，经PCR扩增可获得长度约为498bp的DNA片段的为阳性重组子。提取经PCR鉴定出的阳性重组子的质粒，用测序方法作进一步鉴定，测序结果表明目的基因的序列及在载体中的位置均正确，得到了血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因的真核表达载体，命名为pCI-VEGF-R₂。同时用相同方法将实施例1扩增的鹌鹑、小鼠及人的VEGF-R₂基因片段也分别连接入载体pCI-GPI中，得到各自的真核表达载体，分别命名为pCI-qVEGF-R₂、pCI-mVEGF-R₂和pCI-hVEGF-R₂。

二、真核表达质粒的鉴定

1、瞬时转染RenCa细胞

将步骤一获得的分别携带有目的基因的真核表达载体pCI-VEGF-R₂、pCI-qVEGF-R₂、pCI-mVEGF-R₂和pCI-hVEGF-R₂的阳性克隆菌接种于LB液体培养基中，在37℃下培养12-24小时，用QIAGEN公司的质粒小量提取试剂盒并参照产品说明书提取质粒，然后用QIAGEN公司的转染试剂SuperFect^Transfection Reagent并参照产品说明书将所提取的质粒分别转染小鼠肾癌RenCa细胞，以pCI-neo(Promega公司)为对照。

2、稳定转染细胞的筛选

将转染细胞培养约48小时至细胞密度达到50-70％融合时，弃培养液，换用含有G-418(400μg/mL)的RPMI 1640培养基(Gibco公司)进行抗性细胞筛选培养，同时用未转染的RenCa细胞作对照。当对照细胞几乎全部死亡时，G-418浓度可降至200μg/mL以维持筛选作用。两周后，可见有抗性克隆形成，待其逐渐增大后，用0.25％(质量百分浓度)的胰酶将细胞消化下来，用有限稀释法挑取单克隆并进行扩大培养。

3、稳定转染细胞的鉴定

1)稳定转染细胞mRNA的RT-PCR鉴定

用0.25％的胰酶将扩大培养的单克隆细胞消化制成单细胞悬液，收集于玻璃离心管中，1000rpm离心5min，弃上清；PBS洗三次后完全吸弃上清；重悬细胞并计数，使细胞的终密度为1×10⁶/mL；取1mL细胞悬液加1mL Trizol混匀，提取细胞总RNA，然后用引物F5和R5对转染有pCI-VEGF-R₂质粒的细胞进行RT-PCR鉴定，用引物F6和R6对转染有pCI-qVEGF-R₂质粒的细胞进行RT-PCR鉴定，用引物F7和R7对转染有pCI-mVEGF-R₂质粒的细胞进行RT-PCR鉴定，用引物F8和R8对转染有pCI-hVEGF-R₂质粒的细胞进行RT-PCR鉴定，鉴定结果如图4所示(泳道M.DNA相对分子质量标准DL-2000；泳道1.VEGF-R₂；泳道2.qVEGF-R₂；泳道3.hVEGF-R₂；泳道4.mVEGF-R₂)，经扩增均获得了长度约为498bp的片段，表明血管内皮生长因子抗原受体VEGF-R₂基因在转染有pCI-VEGF-R₂质粒的RenCa细胞中已在mRNA水平上表达，mVEGF-R₂基因在转染有pCI-mVEGF-R₂质粒的RenCa细胞中也已在mRNA水平上表达，qVEGF-R₂基因在转染有pCI-qVEGF-R₂质粒的RenCa细胞中也已在mRNA水平上表达，hVEGF-R₂基因在转染有pCI-hVEGF-R₂质粒的RenCa细胞中也已在mRNA水平上表达。

2)稳定转染细胞的免疫荧光检测

将步骤1)鉴定的稳定转染细胞(以pCI-neo⁺转染细胞和RenCa细胞分别作为阴性对照和空白对照)用0.25％的胰酶消化制备成单细胞悬液；PBS洗3次后，封闭剂(3％BSA)室温封闭20-30分钟；去除封闭剂，加入荧光素标记的鼠抗人IgG(购自北京中杉金桥技术有限公司)，4℃避光孵育12-24小时；PBS洗3次，调整细胞浓度至5×10⁵/mL，细胞悬液滴到载玻片上，封片剂(购自北京中杉金桥技术有限公司)封片。检测结果如图5所示(1.pCI-VEGF-R₂转染细胞；2.pCI-qVEGF-R₂转染细胞；3.pCI-hVEGF-R₂转染细胞；4.pCI-mVEGF-R₂转染细胞；5.pCI-neo⁺转染细胞；6.RenCa细胞)，表明血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因、qVEGF-R₂、mVEGF-R₂、hVEGF-R₂基因分别在各自的转染细胞中获得表达。

3)稳定转染细胞的Western Blotting鉴定

将步骤2)鉴定的稳定转染细胞(以pCI-neo⁺转染细胞和RenCa细胞分别作为阴性对照和空白对照)用0.25％胰酶消化，收集细胞，PBS洗涤两次；用含1％Triton X-100的TBS(50mM Tris-Cl，pH7.6，150mM NaCl)裂解细胞30min；4℃、12000rpm离心10min收集上清；对待测样品进行15％SDS-PAGE电泳分离后，用半干转移仪将蛋白从聚丙烯酰胺凝胶转移至硝酸纤维素膜(电压15V，转移1小时)；用含5％脱脂奶粉的TBST(TBS+0.05％Tween 20)室温封闭1小时；加入HRP标记的鼠抗人IgG单克隆抗体(购自北京中杉金桥技术有限公司)按1∶500比例稀释4℃孵育12-24小时；TBST洗涤后，加入二抗辣根过氧化物酶标记的山羊抗小鼠IgG(购自北京中杉金桥技术有限公司)按1∶2000比例稀释，室温孵育2小时；TBST洗涤后，用ECL进行曝光显色。检测结果如图6所示(泳道1.pCI-VEGF-R₂转染细胞；泳道2.pCI-qVEGF-R₂转染细胞；泳道3.pCI-hVEGF-R₂转染细胞；泳道4.pCI-mVEGF-R₂转染细胞；泳道5.pCI-neo⁺转染细胞；泳道6.RenCa细胞)，进一步证明血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因、qVEGF-R₂、mVEGF-R₂、hVEGF-R₂基因分别在各自的转染细胞中获得表达。

实施例3、血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因的原核表达

一、血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因原核表达载体的构建

参见图7构建血管内皮生长因子VEGF-R₂抗原基因的原核表达载体，具体方法为：将纯化的pCI-VEGF-R₂质粒和pGEX-4T-2(Pharmacia公司)分别用限制性内切酶Sal I和NotI进行双酶切，对酶切产物进行1.2％琼脂糖凝胶电泳检测，检测结果如图8所示(泳道M1.DNA相对分子质量标准DL-15000；泳道M2.DNA相对分子质量标准DL-2000；泳道1.pGEX-4T-2酶切前；泳道2.pGEX-4T-2酶切后；泳道3.pCI-VEGF-R₂酶切片段)，用北京博大泰克生物基因技术有限责任公司的“PCR片断快速胶回收试剂盒”并参照试剂盒说明书回收并纯化线形化的pGEX-4T-2及498bp的pCI-VEGF-R₂的酶切片段(图8中箭头所指片段)，然后将纯化的目的片段和线性化pGEX-4T-2载体16℃连接12-24小时，连接体系为：10×连接酶缓冲液1μl，T₄DNA连接酶1μl，目的基因4μl，pGEX-4T-2载体1μl，用双蒸水补充反应体系至10μl。将连接产物转化大肠杆菌DH5α感受态细胞，将转化细胞涂布于含100mg/mL氨苄青霉素的LB抗性平板上进行筛选，然后挑取在抗性平板上长出的单菌落并在引物F5和R5的引导下进行菌落PCR鉴定，经PCR扩增可获得长度约为498bp的DNA片段的为阳性重组子。提取经PCR鉴定出的阳性重组子的质粒，用测序方法作进一步鉴定，测序结果表明目的基因的序列及在载体中的位置均正确，得到了血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原基因的原核表达载体，命名为pGEX-VEGF-R₂。

二、工程菌的获得及包涵体的大量制备

将pGEX-VEGF-R₂转化大肠杆菌BL21(DE3)感受态细胞，用与步骤一相同的方法筛选出阳性重组菌株，然后按1∶100的比例将阳性重组菌接种至含100mg/mL氨苄青霉素的1000mL LB液体培养基中在37℃下进行大量培养，培养至对数生长期时加入化学诱导剂IPTG至终浓度为1mmol/L，在37℃下继续培养12-24小时。培养结束后，4℃、6000rpm离心15min收集菌体，用100mL TE缓冲液(20mmol/L，pH8.0)重悬菌体沉淀，加入溶菌酶(1mg/mL)于室温磁力搅拌10min；冰浴中超声波(30秒/开，20秒/停，15个循环)破碎菌体；4℃、12000rpm离心20min分别收集包涵体沉淀和上清。将包涵体沉淀用1mol/L的NaCl(TE配制)洗涤1次，4℃、12000rpm离心20min以去除包涵体中的杂蛋白，弃上清后再用TE缓冲液洗涤2次，4℃、12000rpm离心20min收集沉淀，用下述步骤进行纯化。

三、目的蛋白的纯化

用8mol/L的脲溶解包涵体，20℃、12000rpm离心10min后添加巯基乙醇至1％(体积百分浓度)；将Q-Sepharose Fast Flow阴离子交换柱(购自Pharmacia公司)用6mol/L脲的TE缓冲液平衡后上样；用6mol/L脲的TE缓冲液洗脱出穿过峰后，用不同浓度(分别为0.05M、0.1M、0.15M、0.2M、0.25M、0.5M和1M)的NaCl(6mol/L脲的TE缓冲液配制)洗脱，收集相关洗脱峰；每个峰取样进行SDS-PAGE鉴定，根据电泳结果，将55KD的目的蛋白组分再进行S-Sepharose Fast Flow阳离子交换柱和SephardexG-50柱(购自Pharmacia公司)进行纯化，最后对经纯化的目的蛋白进行SDS-PAGE检测，检测结果如图9所示，表明获得了55KD经纯化的目的蛋白，即血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原。

实施例4、血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原的抑瘤活性检测

一、动物的分组与免疫

6周龄Balb/c小鼠分为5组，每组9只。A组为空白对照组；B组为PBS对照组；C组为pCI-neo+空载体组；D-1组为pCI-mVEGF-R₂组；D-2组为pCI-hVEGF-R₂组；D-3组为pCI-qVEGF-R₂组；D-4组为pCI-VEGF-R₂组。

将五种质粒DNA(pCI-neo、pCI-mVEGF-R₂(实施例2构建)、pCI-hVEGF-R₂(实施例2构建)、pCI-qVEGF-R₂(实施例2构建)、pCI-VEGF-R₂(实施例2构建))分别与转染试剂LipofectAMINE按1∶1(m∶v)的比例混合，轻轻振荡后室温放置15分钟，得到LipofectAMINE-质粒DNA复合物，作为免疫用DNA。免疫采用股四头肌肌肉多点注射，100μg/只：首先注射100μl 0.25％布比卡因预处理接种部位，72h后在相同部位初次免疫，分别于第3周和第6周各加强免疫1次。

二、血清抗体效价的ELISA检测

每组小鼠于每次免疫后2周经尾静脉取血，室温放置3h后3000rpm离心10min，取上层血清用ELISA法检测抗体滴度，以验证抗原的体液免疫反应，同时设立免疫前鼠血清的阴性对照和PBS空白对照，ELISA检测方法如下：

将实施例3纯化的蛋白质用包被液稀释至终浓度为5μg/mL，包被ELISA板，4℃静置12-24小时；PBST洗涤：甩弃ELISA板孔中的包被液，PBST洗涤1次；用2％酪蛋白液室温封闭4h，弃去封闭液，拍干ELISA板；将免疫鼠血清用PBS倍比稀释后加入各孔，100ul/孔，37℃静置30min；用PBST洗涤后加入HRP标记的羊抗鼠IgG(购自北京中杉金桥技术有限公司)，37℃反应20min；PBST洗涤后，用TMB显色10min，2M硫酸终止反应；最后用SPECTRAIII酶联仪检测450nm的OD值。结果判定：待测样品的OD值与阴性对照的OD值之比大于或等于2.1(P/N≥2.1)为阳性，显示阳性结果的最大抗体稀释度为免疫小鼠血清的抗体效价。免疫小鼠血清中的抗体效价检测结果如表1所示，

                  表1免疫小鼠血清中的抗体效价

  初次免疫  2次免疫  3次免疫  A组(空白对照)B组(PBS)C组(pCI-neo⁺空载体)D-1组(pCI-mVEGF-R₂)D-2组(pCI-hVEGF-R₂)D-3组(pCI-qVEGF-R₂)D-4组(pCI-VEGF-R₂)  -＜1∶100＜1∶100＜1∶1001∶100^※1∶100^※1∶200^※  -＜1∶100＜1∶100＜1∶1001∶1600^※※1∶1600^※※1∶6400^※※  -＜1∶100＜1∶100＜1∶1001∶3200^※※1∶3200^※※1∶10000^※※

注：^※与PBS、pCI-neo⁺和同种抗原对照组相比，该组小鼠均产生特异性抗体(P＜0.05)

^※※两次加强免疫可明显增强免疫小鼠血清的抗体效价(P＜0.05)与PBS和空载体对照组相比，抗原组(D-1组、D-2组、D-3组、D-4组)小鼠血清中均产生了较高水平的抗体，两次加强免疫可明显增强免疫小鼠血清的抗体效价，此外，本发明的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原较鹌鹑、小鼠和人的相应抗原更能激发小鼠的体液免疫反应。

三、免疫小鼠的IFN-γ和IL-4的ELISPOT检测

1、免疫小鼠脾淋巴细胞的分离

每组免疫小鼠各取三只，无菌分离脾淋巴细胞，方法为：断颈处死小鼠，75％乙醇中灭菌5min，随即放入超净台内成右侧卧位；无菌取出脾脏，放于平皿(内装预冷的8mL无血清RPMI1640培养液)中，尽量剔除脂肪和结缔组织，于200目不锈钢网上用研磨棒轻轻挤压脾组织；将脾细胞悬液8mL缓慢沿管壁缓慢加入装有4mL Ficoll淋巴细胞分离液(购自Pharmacia公司)的透明离心管中，2000rpm水平离心20min；小心吸取白膜层，用10mL预冷的培养基洗2次(1000rpm、10min)，将细胞重悬于含20％胎牛血清的RPMI1640培养基中，调整细胞浓度至1×10⁷/mL。

2、免疫小鼠的IFN-γ和IL-4的ELISPOT检测

对步骤1分离的免疫小鼠的脾淋巴细胞用Murine IFNγ和IL-4ELISPOT试剂盒并参照试剂盒说明书进行IFN-γ和IL-4的ELISPOT检测，检测结果见表2和图10所示，

            表2免疫小鼠IFN-γ和IL-4的ELISPOT检测

A组(空白对照)B组(PBS)C组(pCI-neo空载体)D-1组(pCI-mVEGF-R₂)D-2组(pCI-hVEGF-R₂)D-3组(pCI-qVEGF-R₂)D-4组(pCI-VEGF-R₂)  斑点数/1×10⁶个脾细胞  IFN-γ05.73±1.319.48±0.1844.21±6.34^※98.59±6.76^※96.72±6.54^※153.4±13.56^※※  IL-404.08±0.768.65±1.0930.72±4.12^※105.80±11.09^※106.73±9.08^※166.9±19.67^※※

注：^※与B、C对照组比较，ELISPOT检测该组小鼠斑点数增多P＜0.05，^※※P＜0.01与PBS和空载体对照组相比，抗原组(D-1组、D-2组、D-3组、D-4组)小鼠脾细胞中分泌IFN-γ和IL-4的T淋巴细胞数量与对照组比均明显增加，且本发明的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原较鹌鹑、小鼠和人的相应抗原更能激发小鼠的体液免疫反应。

四、免疫小鼠脾淋巴细胞的T细胞亚群测定

取小鼠脾细胞1×10⁶/mL-2×10⁶/mL，PBS洗两次；分别加入PE标记的抗CD₄⁺mAb和FITC标记的抗CD₈⁺mAb(购自北京晶美生物有限公司)各20ul，混匀后4℃避光反应30min；PBS洗两次后，加入0.5mL荧光保存液(0.15mol/l PBS，20g/L葡萄糖，10g/L甲醛及1g/L NaN₃)重悬细胞，用流式细胞仪分析T细胞亚群，免疫小鼠CD₄⁺和CD₈⁺T细胞数比例的流式细胞仪测定结果如表3和图11、图12所示。

表3流式细胞仪测定的免疫小鼠CD₄⁺和CD₈⁺T细胞数的比例

  CD₄⁺和CD₈⁺T细胞的比值  A组(空白对照)B组(PBS)C组(pCI-neo空载体)D-1组(pCI-mVEGF-R₂)D-2组(pCI-hVEGF-R₂)D-3组(pCI-qVEGF-R₂)D-4组(pCI-VEGF-R₂)  1.81.961.674.95^※11.5^※※15.6^※※18.97^※※

注：^※与B、C对照组比较，该组小鼠CD₄⁺/CD₈⁺的比值显著增高P＜0.05，^※※P＜0.01与PBS和空载体对照组相比，抗原组(D-1组、D-2组、D-3组、D-4组)小鼠脾细胞中CD4⁺/CD8⁺的比值明显升高，且本发明的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原较鹌鹑、小鼠和人的相应抗原更能激发小鼠的体液免疫反应。

五、检测免疫小鼠对皮下移植瘤攻击的保护作用

末次免疫后一周对各组余下6只免疫小鼠进行皮下移植瘤攻击。收获对数生长期的RenCa细胞，制备单细胞悬液，用生理盐水洗两次，调整细胞浓度至1×10⁷/mL，于小鼠背部右侧皮下接种100μl细胞悬液即1×10⁶/只。皮下移植瘤攻击后，观察小鼠移植瘤的生长情况。待肿瘤结节形成后(可扪及，长径约2-3mm)，记录每组小鼠的成瘤时间，同时观察小鼠的存活状况。于肿瘤细胞攻击后50天处死小鼠，拍照；用游标卡尺测量肿瘤的垂直长径(a)和垂直短径(b)，依照公式计算移植瘤体积；称取瘤重，依照公式计算肿瘤的抑制率。

各组免疫小鼠皮下移植瘤的平均成瘤时间见表4和图13，皮下移植瘤攻击后50天各组免疫小鼠的存活_情况、在体瘤体积和体外瘤体积见图17(从左到右依次是小鼠存活情况、在体显示肿瘤体积、离体显示肿瘤体积)，其中存活率统计结果见表5，瘤体积测量结果见表6和图14，瘤重测量结果见图15，各组免疫小鼠的抑肿瘤率统计结果见表7，其中以B组为对照组的各组免疫小鼠的抑肿瘤率统计结果的柱状图见图16，

表4各组免疫小鼠皮下移植瘤的平均成瘤时间

  平均成瘤时间(天)  A组(空白对照)B组(PBS)C组(pCI-neo空载体)D-1组(pCI-mVEGF-R₂)D-2组(pCI-hVEGF-R₂)D-3组(pCI-qVEGF-R₂)D-4组(pCI-VEGF-R₂)  /8.67±1.039.33±1.031013±1.09^※14.33±1.5^※15.3±1.09^※

注：^※与B、C对照组比较该组小鼠成瘤潜伏期延长(P＜0.05)

表5皮下移植瘤攻击后50天各组免疫小鼠的存活情况

  死亡数(只/6只)  存活率(％)  A组(空白对照)B组(PBS)C组(pCI-neo空载体)D-1组(pCI-mVEGF-R₂)D-2组(pCI-hVEGF-R₂)D-3组(pCI-qVEGF-R₂)D-4组(pCI-VEGF-R₂)  0444311  10033.333.333.350^※83.3^※83.3^※

注：^※与B、C对照组比较该组小鼠存活率明显增加(P＜0.05)

表6皮下移植瘤攻击后50天各组免疫小鼠的瘤体积

  肿瘤体积(cm³)  A组(空白对照)B组(PBS)C组(pCI-neo空载体)D-1组(pCI-mVEGF-R₂)D-2组(pCI-hVEGF-R₂)D-3组(pCI-qVEGF-R₂)D-4组(pCI-VEGF-R₂)  /6.47±0.887.19±0.692.63±0.53^※0.39±0.53^※0.30±0.33^※0.25±0.29^※

注：^※与B、C对照组比较该组小鼠肿瘤体积明显缩小(P＜0.001)

                表7各组免疫小鼠对肿瘤的抑制作用

  瘤重(g)  B为对照组  抑瘤率(％)  D-1为对照组  E-1为对照组  F-1为对照组  A组(空白对照)B组(PBS)C组(pCI-neo空载体)D-1组(pCI-mVEGF-R₂)D-2组(pCI-hVEGF-R₂)D-3组(pCI-qVEGF-R₂)D-4组(pCI-VEGF-R₂)  /5.09±0.335.93±0.962.73±0.85^※0.36±0.51^※※0.43±0.40^※※0.27±0.35^※※  /-046.31^※92.92^※※91.62^※※94.69^※※  ///-86.81^※※84.4^※※90.11^※※  ///////  ///////

注：^※与对照组相比，该组小鼠对肿瘤的抑制作用非常显著(P＜0.01)；^※※P＜0.001免疫小鼠接受皮下移植瘤攻击后，与PBS和空载体对照组相比，抗原组(D-1组、D-2组、D-3组、D-4组)小鼠的成瘤时间延长、肿瘤生长缓慢且瘤体积缩小、抑瘤率明显提高，且本发明的血管内皮生长因子受体VEGF-R₂抗原较鹌鹑、小鼠和人的相应抗原的抑瘤效果更加显著。

                           序列表

<160>2

<210>1

<211>166

<212>PRT

<213>人工序列

<220>

<223>

<400>1

Val Val Ile Pro Cys Leu Gly Thr Val Ser Asn Leu Asn Val Ser Leu

1               5                   10                  15

His Ala Lys Tyr Pro Glu Lys Val Phe Val Pro Asp Gly Lys Ser Ile

            20                  25                  30

Ser Trp Asp Asn Lys Lys Gly Phe Thr Ile Pro Ser His Leu Ile Asn

        35                  40                  45

Tyr Ala Gly Met Val Phe Cys Glu Ala Lys Ile Asn Asp Glu Ser Tyr

    50                  55                  60

Gln Ser Ile Met Tyr Ile Val Val Val Val Gly Tyr Arg Ile Tyr Asp

65                  70                  75                  80

Val Val Leu Ser Pro Ser His Gly Ile Glu Leu Ser Val Gly Glu Lys

                85                  90                  95

Leu Val Leu Asn Cys Thr Ala Arg Thr Glu Leu Asn Val Gly Leu Asp

            100                 105                 110

Phe Thr Trp His Ser Pro Pro Ser Lys Ser His His Lys Lys Ile Val

        115                 120                 125

Asn Arg Asp Val Lys Pro Phe Pro Gly Thr Val Ala Lys Met Phe Leu

    130                 135                 140

Ser Thr Leu Thr Ile Glu Ser Val Thr Lys Ser Asp Gln Gly Glu Tyr

145                 150                 155                 160

Thr Cys Ala Ala Ser Ser

                165

<210>2

<211>498

<212>DNA

<213>人工序列

<220>

<223>

<400>2

gtggtgattc catgccttgg aactgtgtca aatctcaatg tatctctaca tgcgaaatat      60

ccagaaaagg tgttcgttcc tgacggtaaa tccatttcgt gggataataa aaaaggcttc      120

actataccca gtcatctaat caactacgca ggcatggtct tctgtgaagc aaaaattaat      180

gatgaaagtt accagtctat tatgtacata gttgtcgttg tagggtatag gatttatgat      240

gtggttctga gtccgtctca tggaattgaa ctatctgttg gagaaaagct tgtcttaaat      300

tgtacagcga gaacagagct caatgtgggg cttgatttca cctggcactc tccaccttca      360

aagtctcatc ataagaagat tgtaaaccgg gatgtgaaac cctttcctgg gactgtggcg      420

aagatgtttt tgagcacctt gacaatagaa agtgtgacca agagtgacca aggggaatac      480

acctgtgcag catccagt                                                    498