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一种筛选蒲公英耐盐突变体的方法

摘要

本发明公开了一种筛选蒲公英耐盐突变体的方法,通过挑选饱满种子培养获取无菌苗,切片进行愈伤组织诱导,获得胚性愈伤组织,将胚性愈伤组织依次接种至EMS的液体分化培养基和NaCl的固体分化培养基中筛选获得耐盐试管苗,炼苗移栽使其成活,再移栽到温室大棚中,并结合滨海盐碱原土盆栽耐盐碱鉴定方法获得耐盐蒲公英植株。本发明方法操作简单,效果好,效率高,加速了蒲公英耐盐育种的进程,应用前景非常广泛。

著录项

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2017-01-25

    授权

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  • 2015-11-11

    实质审查的生效 IPC(主分类):A01H4/00 申请日:20150325

    实质审查的生效

  • 2015-06-24

    公开

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说明书

技术领域

本发明涉及耐盐植物育种技术领域,具体涉及一种筛选蒲公英耐 盐突变体的方法。

背景技术

土壤盐渍化是影响农业生产的主要胁迫因子。我国的盐渍土近1 亿公顷,且盐渍化和次生盐渍化不断扩大,为了确保人类可持续发展, 必须探索有效治理和利用的方法。传统治理办法耗费了大量的资金和 水资源,且收效甚微。多年实践证明,种植耐盐植物是盐碱地改良的 生物学措施之一,是盐碱地改良利用技术中最经济、有效和可持续的 方法,越来越受到人们的重视。但耐盐植物资源、品种短缺,严重制 约了生物学技术改良利用盐碱地的有效性,因此,耐盐植物育种技术 研究得到较快发展。目前,耐盐植物育种的方法有选择育种、杂交育 种、基因工程育种、细胞工程育种、诱变育种等。应用较为广泛的是 细胞工程育种,通过充分利用离体培养过程中广泛的体细胞变异筛选 获得突变体。诱变育种学是近40年来兴起的一门现代育种技术,与 离体培养相结合能丰富突变类型,提高突变频率和育种效率。在离体 条件下,利用诱变技术获得耐盐突变体的方法已经在大麦、小麦、水 稻、小黑麦、甘薯、枸杞、甜橙、河北杨、猕猴桃和杜鹃等十几种植 物上得到了应用。其中发明专利《一种筛选甘薯耐盐突变体的方法》 公开了一种利用60Coγ~射线辐射胚性悬浮细胞后经离体培养获得了 甘薯耐盐突变体。

蒲公英为菊科蒲公英属多年草本植物,集食用、药用、绿化美化 环境为一体的多功能型植物,由于它是常异花授粉植物,种性不纯, 而且它的花丝与花柱的周围连接,形成一个管状体,杂交去雄时易损 伤雌性部分,杂交育种不易成功。中国科学院植物研究所开展了药蒲 公英耐盐突变体的筛选工作,发明专利《一种筛选耐盐药蒲公英的方 法及其专用引物》公开了耐盐药蒲公英体细胞变异筛选方法和耐盐检 测专用引物;张新果等在论文《药蒲公英耐1.5%NaCl变异体的筛选 及特性分析》报道了以药蒲公英叶片为外植体诱导的愈伤组织为材 料,采用NaCl溶液作为耐盐鉴定介质(压力选择剂),耐盐经3个月 继代筛选获得耐1.5%NaCl的愈伤组织,耐盐愈伤组织经4个月的分 化培养和生根培养,通过逐步递升浓度的方法来完成变异体的耐盐鉴 定,获得了耐1.5%NaCl的药蒲公英再生植株。

综上所述,蒲公英耐盐突变体的筛选主要采用体细胞无性变异获 得,变异体的耐盐鉴定主要采用NaCl水溶液;目前利用诱变育种技 术和离体培养相结合筛选耐盐突变体的研究虽然已应用于多种植物 的耐盐育种,但在蒲公英耐盐突变体筛选研究重中尚未见报道。为了 选育出更适合滨海盐碱区种植的蒲公英品种,本发明以营养体较大、 产量高、耐盐性差的一种蒲公英为材料,在建立了该蒲公英叶片离体 培养高频再生技术体系的基础上,利用EMS诱变处理愈伤组织,结 合NaCl胁迫离体筛选方法获得蒲公英耐盐突变体,然后通过盐碱原 土鉴定法对突变体进耐盐鉴定,获得蒲公英耐盐突变体。

发明内容

本发明的目的在于提供一种筛选蒲公英耐盐突变体的方法,通过 EMS诱变处理叶片愈伤组织、NaCl间断反复胁迫离体筛选和盐碱原 土鉴定相结合,筛选获得蒲公英耐盐突变体的方法。

本发明具体通过以下技术方案实现:

一种筛选蒲公英耐盐突变体的方法,包括以下步骤:

1)无菌苗培养

挑选饱满种子用75%的乙醇处理30~50s,再用无菌水冲洗3~4 次,用0.1%升汞浸泡10~15min,然后用无菌水冲洗3~4次,接种到 含有7g/L琼脂粉、10g/L蔗糖、pH值5.7~6.0的MS培养基中,在室 温为21~23℃,暗培养30d后获得无菌苗;

2)愈伤组织诱导

取无菌苗的叶片,切成0.5×0.5cm大小的方块,接种到诱导培养 基中,35~40d获得胚性愈伤组织;

3)EMS诱变处理和NaCl胁迫筛选

将胚性愈伤组织接种在含有0.4%浓度EMS的液体分化培养基 中,进行震荡培养2h,用无菌水冲洗干净,转至含有300mmol/L NaCl 的固体分化培养基中,培养28d后,转至不含NaCl的相同培养基中 21d,交替进行,重复2次,选择高3~4cm的小苗,转移到含有 300mmol/LNaCl的MS培养基中,再次进行耐盐筛选,21d后将生长 正常的小苗接种到生根培养基中,7~10天完成生根,获得耐盐试管 苗;

4)耐盐植株获得

将耐盐试管苗先进行闭瓶炼苗7-15d,而后开瓶炼苗5-10d,移 栽至基质为1:1的蛭石和河沙混合物中,使其成活,20-30d后,再移 栽到温室大棚的土壤中。

5)耐盐植株的鉴定

利用土壤全盐含量0.6%左右的盐碱原土盆栽法对获得的耐盐植 株进行耐盐性鉴定,以未经诱变和NaCl筛选的再生植株作对照,筛 选出成活好,长势优,各项生长指标明显优于对照的耐盐植株。

本发明所述的诱导培养基为含0.5mg/L 6~苄氨基嘌呤(6~BA)、 0.2mg/L二氯本氧乙酸(2,4~D)、7g/L琼脂粉和30g/L蔗糖、pH值 5.7~6.0的MS培养基。

本发明所述的液体分化培养基为含1mg/L激动素(KT)、 0.3mg/L萘乙酸(NAA)、30g/L蔗糖、pH值5.7~6.0的MS培养基; 固体分化培养基为含1mg/L激动素(KT)、0.3mg/L萘乙酸(NAA)、 7g/L琼脂粉、30g/L蔗糖、pH值5.7~6.0的MS培养基。

本发明所述的生根培养基为含有0.5mg/L萘乙酸(NAA)、7g/L 琼脂粉、30g/L蔗糖、pH值5.7~6.0的MS培养基。

步骤(2)培养条件和步骤(3)分化培养条件为:温度为21~23℃, 每天光照时间为12~16小时,光照设备为白炽灯管,光照强度为 2000lux。

步骤(3)中所述的震荡培养的条件为23℃恒温下,转速70r/min, 光照强度2000lux。

步骤(4)所述的炼苗条件为:自然光照、温度21-23℃、空气湿 度为80~85%。

本发明通过EMS诱变处理叶片愈伤组织、NaCl间断反复胁迫筛 选和滨海盐碱原土鉴定相结合,获得的蒲公英耐盐突变体,能够在土 壤全盐含量0.6%左右的土壤中正常生长,且叶长、叶宽比对照增加 8~10%和5%~8%。

依照以上技术方案,本发明只需要260~280d就能筛选出能够适 应土壤全盐含量0.6~0.8%土壤的蒲公英耐盐突变体,具有操作简单, 效果好,效率高,加速了蒲公英耐盐育种的进程,应用前景非常广泛。

与蒲公英耐盐突变体筛选现有技术相比,本发明具有以下特点:

1)利用EMS诱变处理与NaCl间断反复胁迫离体筛选相结合, 筛选耐盐突变体,变异率高,经历时间短,获得的突变体稳定。

2)利用盐碱原土鉴定法对变异植株进行耐盐性鉴定,比水培、 沙培等方法更切合实际,鉴定结果也更加准确,为耐盐突变体鉴定最 直接最有效的鉴定方法。

具体实施方式

下面结合实施例对本发明做进一步的说明,以下所述,仅是对本 发明的较佳实施例而已,并非对本发明做其他形式的限制,任何熟悉 本专业的技术人员可能利用上述揭示的技术内容加以变更为同等变 化的等效实施例。凡是未脱离本发明方案内容,依据本发明的技术实 质对以下实施例所做的任何简单修改或等同变化,均落在本发明的保 护范围内。

实施例1蒲公英耐盐突变体的筛选

本实施例培养基配置:

诱导培养基:含0.5mg/L 6~苄氨基嘌呤(6~BA)、0.2mg/L二氯 本氧乙酸(2,4~D)、7g/L琼脂粉和30g/L蔗糖、pH值5.7~6.0的MS 培养基。

液体分化培养基:含1mg/L激动素(KT)、0.3mg/L萘乙酸 (NAA)、30g/L蔗糖、pH值5.7~6.0的MS培养基;

固体分化培养基:含1mg/L激动素(KT)、0.3mg/L萘乙酸 (NAA)、7g/L琼脂粉、30g/L蔗糖、pH值5.7~6.0的MS培养基。

生根培养基:含有0.5mg/L萘乙酸(NAA)、7g/L琼脂粉、30g/L 蔗糖、pH值5.7~6.0的MS培养基。

具体试验方法:

1、无菌苗培养

挑选饱满种子用75%的乙醇处理30s,再用无菌水冲洗3次,用 0.1%升汞浸泡12min,然后用无菌水冲洗3次,接种到含有7g/L琼 脂粉、10g/L蔗糖、pH值5.8的MS培养基中,室温21~23℃,暗培 养30d后获得无菌苗。

2、愈伤组织的诱导

取无菌苗的叶片,切成0.5×0.5cm大小的方块,接种到诱导培养 基中,温度为21~23℃,每天光照时间为12~16小时,光照设备为白 炽灯管,光照强度为2000lux,40d后获得胚性愈伤组织。

3、EMS诱变处理最佳剂量和时间的确定

将愈伤组织接种在含有0、0.2%、0.4%、0.6%EMS的液体分化 培养基中,23℃恒温下,转速70r/min,光照强度2000lux,进行震 荡培养1h、2h和3h,转至不含EMS的固体培养基中继续分化培养, 温度为21~23℃,每天光照时间为12~16小时,光照设备为白炽灯管, 光照强度为2000lux,28d后统计胚性愈伤组织的存活率和分化率, 结果表明(表1),胚性愈伤组织的存活率和分化率都随着处理时间 的增加和EMS浓度增加而降低。EMS浓度0.2%时,对胚性愈伤组 织的伤害不大,存活率都在75%以上,分化率也在70%以上,EMS 浓度达到0.6%时,对胚性愈伤组织的杀伤力极强,即使处理1h,愈 伤组织的存活率、分化率也仅有34.7%和19.2%,EMS浓度0.4%时, 处理1h,愈伤组织存活率和分化率均在60%以上,处理2h,存活率 为47.8%,分化率为57.5%,处理3h时,存活率、分化率为36.2%和 32%,可见0.4%的EMS浓度可以达到愈伤组织致死率接近50%,从 处理时间来看,2h的存活率接近50%,而分化率却不低,为了达到 较好的诱变效果,选取0.4%处理2h为最佳处理剂量和处理时间。

4、NaCl胁迫筛选临界浓度的确定

将胚性愈伤组织接种到含有0、50、100、150、200、250、300、 350mmol/L不同浓度NaCl的固体分化培养基中,温度为21~23℃, 每天光照时间为12~16小时,光照设备为白炽灯管,光照强度为 2000lux,培养28天,观察胚性愈伤组织的存活率和分化率。结果表 明(表2),胚性愈伤组织的存活率和分化率均随NaCl浓度的增加而 降低,NaCl浓度小于或等于200mmol/L时,对愈伤组织的影响不大, 存活率和分化率均达到50%以上,当NaCl浓度达到250mmol/L,对 愈伤组织的存活和分化产生较大的抑制作用,存活率、分化率仅为 25.3%和30%,当NaCl浓度达到300mmol/L时,愈伤组织的存活率 为6.3%,成活愈伤组织的分化率达到20%,NaCl浓度达到350mmol/L 时,愈伤组织存活率仅为1.3%,已全部失去分化能力。以选择压力 达到足以抑制大多数细胞分裂与生长,又可以保留部分愈伤组织的分 化能力为原则,研究中选取致死率达到90%以上的剂量 (300mmol/LNaCl)为筛选突变体的临界浓度。

表1不同EMS浓度诱变处理对胚性愈伤组织存活率和分化率的影响

表2不同NaCl浓度对胚性愈伤组织存活率和分化率的影响

5、EMS诱变处理和NaCl胁迫筛选

将愈伤组织接种在含有0.4%浓度EMS的液体分化培养基中, 23℃恒温下,转速70r/min,光照强度2000lux,进行震荡培养2h,用 无菌水冲洗干净,转至含有300mmol/L NaCl的固体分化培养基中, 温度为21~23℃,每天光照时间为12~16小时,光照设备为白炽灯管, 光照强度为2000lux,培养28d后,转至不含NaCl的相同培养基中 21d,交替进行,重复2次。选择高3~4cm的小苗,转移到含有 300mmol/LNaCl的MS培养基中,再次进行耐盐筛选,21d后将生长 正常的小苗接种到生根培养基中,7~10天完成生根,获得耐盐试管 苗。

6、耐盐植株获得

将耐盐试管苗在温度21-23℃,自然光下进行闭瓶炼苗12d左右, 再开瓶炼苗8d左右,移栽至基质为1:1的蛭石和河沙混合物中,自 然光照、温度21~23℃、空气湿度为80~85%的条件下培养25d后, 再移栽到温室大棚土壤中。

实施例2耐盐植株的鉴定

利用土壤全盐含量0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、1.0%盐碱原土盆 栽法对获得的耐盐植株进行耐盐性鉴定,以未经诱变和NaCl筛选的 再生植株作对照,移栽前记录植株的叶长、叶宽,移栽后30天再次 记录植株的成活率、叶长、叶宽,观察植株长势。

结果表明,土壤全盐含量0.2%的处理中,耐盐植株和对照在成 活率和长势方面基本没有区别;在土壤全含量0.4%处理中,对照植 株的成活率80%左右,耐盐植株基本全部成活,长势上两者无明显区 别;在土壤全含量0.6%处理中,对照植株的成活率下降到45%,叶 片发黄,生长较缓慢,,而耐盐植株成活率达80%以上,长势明显优 于对照,叶长、叶宽分别比对照增加8~10%和5%~8%;在土壤全盐 含量0.8%处理中,对照植株的成活率仅为15%,叶片皱缩萎蔫,生 长极其缓慢,甚至停止生长,而40%耐盐植株仍能够正常生长;在土 壤全盐含量1.0%的处理中,对照植株基本不能成活,16%耐盐植株 仍能生长,但与土壤全盐含量0.8%的处理相比,不论是成活率、叶 长、叶宽等生长指标都有所降低。

因此,筛选到的耐盐植株能够在土壤全盐含量高达0.6-0.8%的土 壤中生长,尤其在全盐含量0.6%左右的土壤中能较好的生长,各项 生长指标明显优于对照,因此通过以上方法能够筛选到蒲公英耐盐突 变体。

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