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库蚊黄病毒实时荧光定量RT-PCR检测方法及试剂盒

摘要

本发明公开了一种库蚊黄病毒的实时荧光定量RT-PCR检测方法及试剂盒。所述引物和TaqMan探针是根据库蚊黄病毒E基因区段的保守区域设计。试剂盒中包括的上游引物:5'-CACGCCGAACGGACTTCT-3’,下游引物:5’-TCCATTGGCCGCCATATATC-3’、TaqMan探针序列:5'-TTTCGCACCGGAGCAGCCG-3’,5’端标记FAM荧光报告基团、3’端标记TAMRA荧光淬灭基团,扩增的目前片段长度为62bp。该试剂盒可用于检测库蚊黄病毒,具有良好的灵敏度性和特异性,能检测到库蚊黄病毒的最低病毒滴度为10PFU/反应。

著录项

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2019-04-16

    授权

    授权

  • 2016-07-06

    实质审查的生效 IPC(主分类):C12Q1/70 申请日:20130730

    实质审查的生效

  • 2015-02-11

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明涉及生物技术领域中病毒的分子生物学检测方法,特别是涉及库蚊黄病毒的实时荧光定量 RT-PCR检测方法及试剂盒。

背景技术

库蚊黄病毒(Culex flavivirus,CxFV)是一种蚊传虫媒病毒,属黄病毒科黄病毒属,于2003年由日本 学者在淡色库蚊(Culex pipiens)和三带喙库蚊(Culex tritaeniorhynchus)中首次分离到病毒,随后相继在 印度尼西亚、美国、西印度群岛特立尼达、非洲乌干达、南美洲秘鲁、巴西、台湾地区和我国的山东省、 辽宁省等地的多种库蚊属蚊虫中分离到该病毒。随着近年CxFV在全球不同地区的陆续发现,可以将CxFV 分为两种基因型,在两种型别内均存在致细胞病变和非致细胞病变两种表现型。

目前,对蚊虫中CxFV的检测主要采用病毒分离和病毒核酸的普通PCR检测。病毒分离耗时且无法用 于非致病变表型CxFV的检测,普通PCR快捷特异,但易造成污染且检测敏感性低。TaqMan Real-time PCR 是一种实时荧光定量的检测方法,通过检测体系中荧光强度的动态变化对核酸进行定性、定量分析体外扩 增技术。本研究利用TaqMan Real-time PCR技术建立了针对CxFV特异、快捷、敏感、有效的分子检测方 法,为媒介中CxFV的监测与检测提供了技术支持。

发明内容

本发明提供了针对库蚊黄病毒进行实时荧光定量RT-PCR检测的引物和TaqMan探针。

本发明所提供的引物和TaqMan探针,是根据库蚊黄病毒E基因区段最为保守的保守区域设计的,即 可用于检测库蚊黄病毒,也可用于定量检测样本中库蚊黄病毒的核酸拷贝数。

所述引物与探针序列分别为:库蚊黄病毒上游引物:CxFV-E-F:5’-CACGCCGA ACGGACTTCT-3’;下游引物:CxFV-E-R:5'-TCCATTGGCCGCCATATATC-3’;TaqMan探针: CxFV-E-Probe:FAM5’-TTTCgCACCggAgCAgCCg-3’TAMRA,5’端标记FAM荧光报告基团、3’端标记 TAMRA荧光淬灭基团。

所述库蚊黄病毒25uL实时荧光定量RT-PCR检测反应体系,包括:2×ReactionMix12.5μL、Enzyme Mix 1μL、10μM上下游引物与5μM探针各1μL、RNA模板1μL、Nuclease-free water7.5μL。

所述库蚊黄病毒实时荧光定量RT-PCR检测反应体系的最佳扩增条件为:先45℃10min;然后95℃ 10min;最后95℃15s和60℃60s40个循环。

所述库蚊黄病毒实时荧光定量RT-PCR检测反应体系适用于所有荧光定量PCR反应仪。

所述库蚊黄病毒实时荧光定量RT-PCR检测反应构建的病毒数定量分析模型最低检测限为10PFU/反 应。

所述库蚊黄病毒实时荧光定量RT-PCR检测反应通过与普通PCR检测方法对蚊虫标本的检测应用比 较,结果显示该方法具有较常规PCR检测法更加敏感、特异、简便和不易污染的特征。

附图说明

图1为对库蚊黄病毒的特异性检测的扩增曲线;

图2为10倍系列稀释定量库蚊黄病毒的实时荧光定量RT-PCR检测病毒滴度PFU定量分析扩增曲线;

图3为库蚊黄病毒实时荧光定量RT-PCR检测灵敏度的病毒滴度PFU定量分析标准曲线;

具体实施方式

本发明库蚊黄病毒实时荧光定量RT-PCR检测方法是基于TaqMan Real-time PCR实时荧光定量检测技 术,利用在反应体系中加入荧光基团后产生的荧光信号积累的动态变化,从而实时监测整个反应进程,最 终可通过标准曲线对未知模板进行定量分析的方法。本发明还涉及上述检测方法建立所包含的所有内容。

该方法具体步骤为:

(1)引物与探针的设计

选择GenBank发表的世界各地不同年代不同地区分离得到的具有代表性的50株库蚊黄病毒的全基因 组序列,用生物信息学分析软件ClustalX1.8进行E片段基因的序列比对,根据TaqMan PCR引物、探针 设计原则,选择最为保守的1031-1111区域作为扩增的目的基因片段。在此区域内利用Primer Express3.0 辅助设计引物及探针序列,然后进行Blast分析验证E片段基因的广谱性和特异性。序列信息见表1。

表1  CxFV检测体系特异引物与探针序列信息

(2)荧光素的选择

荧光发射基团选用较为常用的FAM基团,荧光淬灭基团选用TAMRA基团。

(3)引物与探针的合成

引物由北京梓熙生物科技有限公司合成,探针由上海生工生物工程有限公司合成并标记,探针5’端标 记FAM荧光报告基团、3’端标记TAMRA荧光淬灭基团。

(4)样品的制备与体系的建立

将库蚊黄病毒的毒株接种到白纹伊蚊卵细胞(C6/36细胞),3天后细胞出现明显病变,收集细胞培养 上清,并测定培养上清中的病毒滴度为1×106.8PFU/mL(PFU:Plaque forming unit),病毒培养与RNA提取在 BSL-2级生物安全实验室中进行。用QIAGEN公司的QIAamp Viral RNA Mini Kit从库蚊黄病毒的细胞培 养上清中提取病毒RNA,参照试剂盒说明进行操作。使用并参照ABI公司AgPath-IDTMOne-stepRT-PCRKit 试剂盒说明建立的PCR反应体系为配制设定组分浓度的25μL体系,具体组分构成见表2。

表2.PCR反应体系组分构成表

组分 体积(μL) 2×Reaction Mix 12.5 Enzyme Mix 1 上游引物(10μM) 1 下游引物(10μM) 1 探针(5μM) 1 样本RNA 2 无核酸酶水 补足至25

设置反应条件为:

(5)库蚊黄病毒实时荧光定量RT-PCR检测体系的验证

用登革1-4型病毒、西尼罗病毒、基因1、3型乙型脑炎病毒、森林脑炎病毒、Tahyna病毒、巴泰病 毒、盖塔病毒,共3属8种11株病毒RNA作为阴性对照样本,与库蚊黄病毒RNA在建立的反应体系中 进行引物与探针的特异性验证。库蚊黄病毒的RNA成功扩增Ct值≤35,其他11个阴性对照毒株的RNA 均无阳性扩增信号。对提取的库蚊黄病毒RNA进行10倍稀释得10-1-10-4的4个不同稀释度的病毒RNA, 分别进行4次平行重复实验验证体系的重复稳定性,4次重复实验所得Ct值的标准差均<0.45,变异系数 均<1.5%。具体实验数据见表3。

表3.CxFV检测体系重复稳定性结果

(6)阳性质粒标准品RNA的体外转录

合成蚊虫黄病毒E片段基因高度保守区域作为检测目的基因,并克隆至PGEM-Teasy载体中,基因合 成与质粒克隆由北京梓熙生物科技有限公司完成。用TaKaRa公司GoTaq Green Master Mix试剂盒对克隆 质粒中含有目的基因的M13引物进行PCR扩增,用QIAgen公司Gel Extraction Kit试剂盒回收纯化PCR 产物,利用紫外核酸蛋白定量仪对回收的线性化DNA模板定量,用Promega公司RiboMAX Large Scale  RNA Production System T7试剂盒进行目的基因的RNA体外转录。上述操作均按照试剂盒说明进行。

(7)建立相应的定量分析模型

对阳性质粒体外转录的RNA进行定量,按照公式(6.02×1023)×(转录产物浓度ng/μl)/(转录产物分子 量)=copies/μL计算RNA拷贝数。对已知浓度RNA进行10倍系列稀释得到1×101~1×105copies/μL5 个样品浓度。按照上述的反应体系与反应条件进行RT-PCR扩增。对扩增所得结果进行分析,根据101~105copies/μL不同浓度样品的拷贝数和循环阈值(Ct)绘制标准曲线。获得检测体系标准曲线方程为 Y=-3.913X+42.93,R2=0.998,扩增效率Eff=80.1%。通过所得标准曲线知所建立的库蚊黄病毒荧光定量 RT-PCR检测方法的最低检测限为100copies/反应。

对已测定出病毒滴度(1×106.8PFU/mL)的培养上清进行系列稀释得到1×101~1×106PFU/mL共7 个梯度,用QIAGEN公司的QIAamp Viral RNA Mini Kit提取各稀释度细胞培养上清中病毒RNA,参照试 剂盒说明进行操作。按照上述的所建立体系与反应条件进行RT-PCR扩增。根据1×101~1×106PFU/mL 不同浓度样品的拷贝数和循环阈值(Ct)绘制标准曲线。获得检测体系标准曲线方程为Y=-3.551X+37.56, R2=0.994,扩增效率Eff=91.3%。所建立的库蚊黄病毒荧光定量RT-PCR检测方法的最低检测限为 10PFU/mL。

(8)在实际蚊虫标本中的应用与比较

用普通PCR方法与TaqMan PCR两种方法同时对246批蚊虫标本进行CxFV的病毒核酸检测,普通 PCR检出核酸阳性标本9份,TaqManPCR检出核酸阳性(Ct<35)标本16份(包括普通PCR阳性9份)。 表明该方法具有更高的敏感性。

(9)结果判断

当待检样本的Ct(阈值)≤35时即判为阳性;当待检样本35<Ct<40时需重新检测,如结果仍在35<Ct<40 之间则判为阳性,否则判为阴性。无Ct值的待检样本判为阴性。

本发明具有以下优点:

1.首次建立了库蚊黄病毒实时荧光定量RT-PCR检测方法,检测方法可以直接用于任何标本提取核 酸后的库蚊黄病毒定量检测。

2.本检测方法与其他库蚊黄病毒检测方法相比,灵敏度更高,操作更加简便且可有效防止污染,检 测结果更加直观准确,使检测效率得到很大提高。

3.本检测方法不仅能够评价标本中蚊虫黄病毒的感染状况,同时也为该病毒在与疾病关系方面的进 一步研究提供了有效工具。

综上所述,本发明的目的就是利用TaqMan Real-time PCR技术建立了专门针对库蚊黄病毒的特异、快 捷,更加敏感、有效的分子检测方法。通过序列比对挑选出库蚊黄病毒基因组中E基因片段上高度保守的 序列,在此序列上设计一对引物及一条TaqMan探针,建立实时荧光定量RT-PCR反应体系,进行体系的 特异性与稳定性验证,并初步应用于实际蚊虫标本的检测。本发明方法为今后蚊虫媒介中库蚊黄病毒的检 测与该病毒相关领域的研究提供了有效工具。

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