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利用腈水解酶工程菌制备1-氰基环己基乙酸的方法

摘要

本发明公开了一种利用腈水解酶工程菌制备1-氰基环己基乙酸的方法:将含重组腈水解酶基因的工程菌经发酵培养后的培养液离心,以湿菌体作为催化剂,以1-氰基环己基乙腈为底物,以pH值为3.0~10.0的缓冲液为反应介质,在25~70℃进行转化反应,反应结束后,获得含1-氰基环己基乙酸的混合液,将混合液分离纯化,获得1-氰基环己基乙酸;所述含重组腈水解酶基因的工程菌由SEQ IDNO.2所示核苷酸序列编码基因构建而成;本发明所述含腈水解酶的工程菌作为催化剂,具有良好的区域选择性和催化活力,生产过程对环境友好。

著录项

  • 公开/公告号CN104212850A

    专利类型发明专利

  • 公开/公告日2014-12-17

    原文格式PDF

  • 申请/专利权人 浙江工业大学;

    申请/专利号CN201410395753.7

  • 申请日2014-08-12

  • 分类号C12P13/00;C12R1/19;

  • 代理机构杭州天正专利事务所有限公司;

  • 代理人黄美娟

  • 地址 310014 浙江省杭州市下城区潮王路18号

  • 入库时间 2023-12-17 02:29:08

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2023-03-31

    专利实施许可合同备案的生效 IPC(主分类):C12N15/55 专利申请号:2014103957537 专利号:ZL2014103957537 合同备案号:X2023980033594 让与人:浙江工业大学 受让人:杭州佰倍优生物科技有限公司 发明名称:利用腈水解酶工程菌制备1-氰基环己基乙酸的方法 申请日:20140812 申请公布日:20141217 授权公告日:20170613 许可种类:普通许可 备案日期:20230315

    专利实施许可合同备案的生效、变更及注销

  • 2017-06-13

    授权

    授权

  • 2015-01-07

    实质审查的生效 IPC(主分类):C12P13/00 申请日:20140812

    实质审查的生效

  • 2014-12-17

    公开

    公开

说明书

(一)技术领域

本发明涉及一种加巴喷丁关键中间体1-氰基环己基乙酸的制备方法, 特别涉及一种利用腈水解酶工程菌制备1-氰基环己基乙酸的方法。

(二)背景技术

1-氰基环己基乙酸是合成加巴喷丁的关键中间体,目前主要用化学法 生产,反应条件苛刻,产生的废气须大量碱液吸收,步骤较多,收率较低。

腈水解酶能够实现有机腈化合物的一步区域选择性水解合成对应的 有机羧酸。通过腈水解酶实现氰基水解反应条件温和,反应效率高,而且 具有比较高的区域选择性和立体选择性。近年来,利用腈水解酶进行氰基 水解合成有机羧酸已经成为研究的热点,大量文献、专利报道了利用腈水 解酶的区域选择性在有机羧酸合成中的应用。

Zhu等人报道了来自于菌株Bradyrhizobium japonicum USDA110中的 腈水解酶bll6402(Dunming Zhu,Adv.Synth.Catal.2007,349,1667-1670), 发现此腈水解酶可以催化各种双腈,对部分双腈(包括1-氰基环己基乙 腈及其类似物)具有较高的区域选择性。

Sophie Bergeron等人报道了一株腈水解酶BD9570(来自Diversa) (Sophie Bergeron,Organic Process Research & Development 2006,10, 661-665),此腈水解酶可以催化3-羟基戊二腈合成阿托伐他汀侧链关键 手性中间体(R)-4-氰基-3-羟基丁酸,具有较高的区域选择性和立体选择 性。

Zhiyi Xie等人报道了一株来自于Arabidopsis thaliana的腈水解酶 AtNit1(Zhiyi Xie,Journal of Molecular Catalysis B:Enzymatic,2006,41, 75–80),该腈水解酶可以催化异丁基丁二腈合成普瑞巴林手性中间体 (3S)-3-氰基-5-甲基己酸,具有很高的区域选择性和立体选择性。

John E.Gavagan等人报道了一株来源于Acidovorax facilis 72W腈水 解酶(John E.Gavagan,J.Org.Chem.,1998,63,4792-4801),该脂肪族腈 水解酶对于α,ω-双腈具有较好的区域选择性。专利US2005009157 A1也 报道了该腈水解酶可以催化1-氰基环己基乙腈合成加巴喷丁中间体1-氰 基环己基乙酸。

专利US2005009157 A1还报道了商品化腈水解酶NIT-104,NIT-105, NIT-106(来自Biocatalytics Inc.)以及来自菌株Bacillus sphaericus的腈 水解酶对于1-氰基环己基乙腈具有区域选择性活力。

Carmela Bengis-Garber等人报道了菌株Rhodococcus rhodochrous  N.C.I.B.11216中的腈水解酶对于α,ω-双腈的催化具有区域选择性。且该 菌株的区域选择性与底物α,ω-双腈的碳链长度以及培养时所用的诱导剂 有关。(Carmela Bengis-Garber,Appl Microbiol Biotechnol(1989)32:11-16)

Chandrani Mukherjee等人报道了一株来自于Synechocystis sp.Strain  PCC6803的腈水解酶(Chandrani Mukherjee,Eur.J.Org.Chem.2006, 5238–5242),该腈水解酶催化各种α,ω-双腈,其区域选择性与α,ω-双腈 的碳链长度有很大的关系。随着碳链长度的增加,该腈水解酶的区域选择 性逐渐下降。

迄今为止,有关对1-氰基环己基乙腈具有区域选择性催化活力的腈 水解酶报道较少,主要来自Acidovorax facilis 72W,Bradyrhizobium  japonicum USDA110,Bacillus sphaericus以及商品化腈水解酶NIT-104、 NIT-105、NIT-106。但是这些腈水解酶催化1-氰基环己基乙酸存在催化活 性较低和催化剂用量较大的问题。所以筛选新型生物催化剂,开发高效加 巴喷丁关键中间体酶法合成工艺,建立绿色经济的加巴喷丁合成新工艺具 有重要意义。

(三)发明内容

本发明目的在于解决传统的化学法水解1-氰基环己基乙腈为1-氰基 环己基乙酸的工艺中,反应条件苛刻,反应中需要大量的有机溶剂,成本 较高,收率较低,环境污染较为严重的问题。

本发明提供一种水解1-氰基环己基乙腈的区域选择性腈水解酶,该 酶在催化上述反应时具有良好的区域选择性和催化活力,生产过程对环境 友好。

本发明采用的技术方案是:

本发明提供一种利用腈水解酶工程菌制备1-氰基环己基乙酸的方法, 所述方法为:将含重组腈水解酶基因的工程菌经发酵培养后的培养液离 心,以湿菌体作为催化剂,以1-氰基环己基乙腈为底物,以pH值为 3.0~10.0的缓冲液为反应介质(优选pH值为7的磷酸缓冲液),在25~70 ℃(优选35℃)进行转化反应,反应结束后,获得含1-氰基环己基乙酸 的混合液,将混合液分离纯化,获得1-氰基环己基乙酸;所述含重组腈 水解酶基因的工程菌由SEQ ID NO.2所示核苷酸序列编码基因构建而成。 所述底物初始浓度为0.02~1mol/L,优选100mmol/L,所述湿菌体的质量 终浓度为10~100g/L,优选50g/L。

进一步,本发明所述催化剂按如下方法制备:将含腈水解酶基因的工 程菌接种至含终浓度50mg/L卡那霉素的LB液体培养基中,37℃、150rpm 培养10~12小时,获得种子液;随即将种子液以体积浓度2%的接种量接 种至含终浓度50mg/L卡那霉素的LB液体培养基中,37℃、150rpm培养 至培养液的OD600为0.6~0.8,向培养液中加入终浓度为0.1mM的IPTG, 28℃、150rpm诱导培养10小时,将培养液离心,取沉淀水洗,获得湿菌 体即为催化剂;所述LB液体培养基组成为:10g/L胰蛋白胨,5g/L酵母 提取物,10g/L氯化钠,溶剂为水,pH值为7。

本发明所述1-氰基环己基乙酸分离纯化的方法通常为:转化结束后, 转化液内加入7~8mL、10.5M的NaOH溶液(使产物较好溶解,提高回 收率),调pH至8.5-9.0,离心(9000rpm,10min),取上清液。往上清 液中按体积比1:1比例加入乙醇水溶液(含水量5%体积浓度)(去除菌体 破碎产生的核酸,蛋白质等),抽滤。取滤液,减压蒸馏(温度控制在50 ℃以下)。馏出酒精后的剩余液体内加入5‰的HC-767针剂用活性炭吸附 杂质,抽滤。滤液内加盐酸调pH至2.5左右,静置,抽滤,将漏斗内含 有单酸的滤液回收烘干(35℃以下),即获得产物1-氰基环己基乙酸。

本发明所述生物催化1-氰基环己基乙腈制备1-氰基环己基乙酸的反 应方程为:

本发明所述含腈水解酶基因的工程菌的构建方法为:利用蛋白质 (PDB)和(NCBI)数据库对腈水解酶基因序列进行筛选,以紫红红球 菌K22(Rhodococcus rhodochrous K22)的腈水解酶基因(GeneBank  accession no.D12583)序列为基础,依据大肠杆菌偏好的密码子进行密码 子优化,通过基因工程的常规操作以全合成的方法合成了SEQ ID NO.2 所示的腈水解酶基因RkN,该基因编码的腈水解酶的氨基酸序列为SEQ  ID NO.1所示。然后将上述腈水解酶基因转入载体中构建重组表达载体 pET28b(+)–RkN,再用重组表达载体转化宿主菌(优选大肠杆菌BL21 (DE3)),构建含腈水解酶基因的工程菌。

经过序列比对,Rhodococcus rhodochrous K22腈水解酶与已有报道对 于1-氰基环己基乙腈具有催化活力的腈水解酶—Acidovorax facilis 72W 腈水解酶(GeneBank accession no.ABD98457)和Bradyrhizobium  japonicum USDA110的腈水解酶bll6402(GeneBank accession no. BAC51667)同源性分别为68.15%和40.31%。

与现有技术相比,本发明的有益效果主要体现在:本发明提供一种微 生物催化1-氰基环己基乙腈制备1-氰基环己基乙酸的方法,本发明所述 含腈水解酶的工程菌作为催化剂,具有良好的区域选择性和很高的催化活 力(比酶活达到4800U/g),生产过程对环境友好;解决了传统的化学法 水解1-氰基环己基乙腈为1-氰基环己基乙酸的工艺中反应条件苛刻、反 应需要大量的有机溶剂、成本较高、收率较低,环境污染较为严重的问题。

(四)具体实施方式

下面结合具体实施例对本发明进行进一步描述,但本发明的保护范围 并不仅限于此:

以下实施例所用主要实验材料来源为:

大肠杆菌宿主菌株E.coli BL21(DE3)购自Invitrogen公司,表达载体 pET-28b(+)购自Novagen公司,限制性内切酶NcoⅠ和XhoⅠ购自 Fermentas公司,T4 DNA连接酶和卡那霉素均购自大连宝生物有限公司; 异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)为Promega公司产品。DNA Marker 和染色剂Gold View购自TaKaRa公司;Axygen DNA凝胶回收试剂盒、 质粒抽提试剂盒、PCR纯化试剂盒购自爱思进生物技术有限公司。

实施例1:腈水解酶基因的合成

利用蛋白质PDB和NCBI数据库对腈水解酶基因序列进行筛选,得 到一个腈水解酶基因(GeneBank accession no.D12583)。该腈水解酶来源 于紫红红球菌K22(Rhodococcus rhodochrous K22),根据Rhodococcus  rhodochrous K22腈水解酶的序列(GeneBank accession no.D12583),依 据大肠杆菌偏好的密码子进行密码子优化,根据表达载体pET28b(+)的特 点设计了酶切位点Nco Ⅰ、Xho Ⅰ,通过基因工程的常规操作以全合成的 方法合成了该段腈水解酶基因RkN(SEQ ID NO.2所示),编码酶的氨基 酸序列为SEQ ID NO.1所示。

实施例2:腈水解酶基因表达载体及其重组转化子的构建

合成的腈水解酶基因RkN与pET28b(+)都分别用Nco I和Xho I 进行双酶切,大约酶切6h后,回收酶切产物,利用T4连接酶在16℃下 连接16小时,得到重组表达质粒pET28b(+)-RkN。将表达载体pET28b (+)-RkN转化至E.coli BL21(DE3)受体菌,涂布于含卡那霉素(终 浓度50mg/L)的LB琼脂平板上,37℃培养过夜后,平板上长出菌落(黄 白色圆形菌落)。随机挑取单克隆,培养后提取质粒进行测序,测序结果 表明得到阳性克隆E.coli BL21(DE3)/pET28b(+)-RkN。

实施例3:腈水解酶的表达

实施例2中得到的重组转化子E.coli BL21(DE3)/pET28b(+)-RkN接 种到LB液体培养基中,37℃,150rpm培养10-12小时,然后按体积浓度 2%的接种量接种至含有卡那霉素(终浓度50mg/L)的LB液体培养基进 行扩大培养,37℃,150rpm培养至培养液的OD600为0.6-0.8之间,加入 异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)至终浓度为0.1mM,28℃,150rpm 诱导培养10小时。培养液离心收集菌体,用生理盐水清洗2次得到湿菌 体。

实施例4:腈水解酶活力验证

对实施例3中得到的湿菌体进行静息细胞催化反应,以验证腈水解酶 对于1-氰基环己基乙腈的活力。

实验方法:称取0.5g湿菌体(终浓度50g/L)悬浮于10mL磷酸氢二 钠-磷酸二氢钠缓冲液体系中(pH=7.0,0.2M),加入0.296g1-氰基环己基 乙腈(终浓度200mM),35℃恒温水浴反应30min。反应完成后,取1mL 反应液,12000rpm离心,弃去沉淀,取上清液用高效液相色谱(C18柱) 分析产物浓度。高效液相色谱分析条件为:流动相为缓冲液(0.58g磷酸 二氢铵+1.83g过氯酸钠溶于1L纯水中,用高氯酸调节pH为1.8)∶乙腈 =76∶24,柱温为40℃。同样条件下,以E.coli BL21(DE3)空载体和未诱 导的E.coli BL21(DE3)/pET28b(+)-RkN以及含有Acidovorax facilis 72W 腈水解酶的E.coli BL21(DE3)/pET28b(+)-AcN为对照,结果如表1所示。 酶活定义为:在一定条件下,每分钟催化底物生产1μmol产物所需的酶 量定义为一个活力单位,记为U。

表1:腈水解酶RkN活力验证结果

实施例5:使用含有腈水解酶RkN的重组大肠杆菌转化100mM 1-氰 基环己基乙腈。

实验方法:称取0.5g湿菌体(实施例3制备,终浓度50g/L)悬浮于 10mL磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲液体系中(pH=7.0,0.2M),加入 0.148g1-氰基环己基乙腈(终浓度100mM),35℃恒温水浴反应4小时。 反应完成后,取1mL反应液,12000rpm离心,弃去沉淀,取上清液用高 效液相色谱(C18柱)分析产物浓度。高效液相色谱分析条件为:流动相 为缓冲液(0.58g磷酸二氢铵+1.83g过氯酸钠溶于1L纯水中,用高氯酸 调节pH为1.8)∶乙腈=76∶24,柱温为40℃。结果:产物1-氰基环己 基乙酸的浓度为99mM,产率为99%。

实施例6:使用含有腈水解酶RkN的重组大肠杆菌转化200mM 1-氰 基环己基乙腈

实验方法:称取0.5g湿菌体(实施例3制备,终浓度50g/L)悬浮于 10mL磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲液体系中(pH=7.0,0.2M),加入 0.296g1-氰基环己基乙腈(终浓度200mM),35℃恒温水浴反应30min。 反应完成后,取1mL反应液,12000rpm离心,弃去沉淀,取上清液用高 效液相色谱(C18柱)分析产物浓度。高效液相色谱分析条件为:流动相 为缓冲液(0.58g磷酸二氢铵+1.83g过氯酸钠溶于1L纯水中,用高氯酸 调节pH为1.8)∶乙腈=76∶24,柱温为40℃。

结果如下:产物1-氰基环己基乙酸的浓度为192mM,产率为96%。

实施例7:使用含有腈水解酶RkN的重组大肠杆菌转化500mM 1-氰 基环己基乙腈

实验方法:称取实施例3方法制备的10g湿菌体(终浓度100g/L) 悬浮于100mL磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲液体系中(pH=7.0,0.2M), 加入7.4g1-氰基环己基乙腈(终浓度500mM),35℃恒温水浴反应12小 时。反应液使用2倍体积的乙酸乙酯萃取,弃去有机相。水相加入醋酸酸 化,再加入2倍体积的乙酸乙酯萃取。有机相35℃烘干,得到1-氰基环 己基乙酸。

结果如下:得到产物1-氰基环己基乙酸6.75g,产率为91.2%。

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