法律状态公告日
法律状态信息
法律状态
2023-03-31
专利实施许可合同备案的生效 IPC(主分类):C12N15/55 专利申请号:2014103957537 专利号:ZL2014103957537 合同备案号:X2023980033594 让与人:浙江工业大学 受让人:杭州佰倍优生物科技有限公司 发明名称:利用腈水解酶工程菌制备1-氰基环己基乙酸的方法 申请日:20140812 申请公布日:20141217 授权公告日:20170613 许可种类:普通许可 备案日期:20230315
专利实施许可合同备案的生效、变更及注销
2017-06-13
授权
授权
2015-01-07
实质审查的生效 IPC(主分类):C12P13/00 申请日:20140812
实质审查的生效
2014-12-17
公开
公开
(一)技术领域
本发明涉及一种加巴喷丁关键中间体1-氰基环己基乙酸的制备方法, 特别涉及一种利用腈水解酶工程菌制备1-氰基环己基乙酸的方法。
(二)背景技术
1-氰基环己基乙酸是合成加巴喷丁的关键中间体,目前主要用化学法 生产,反应条件苛刻,产生的废气须大量碱液吸收,步骤较多,收率较低。
腈水解酶能够实现有机腈化合物的一步区域选择性水解合成对应的 有机羧酸。通过腈水解酶实现氰基水解反应条件温和,反应效率高,而且 具有比较高的区域选择性和立体选择性。近年来,利用腈水解酶进行氰基 水解合成有机羧酸已经成为研究的热点,大量文献、专利报道了利用腈水 解酶的区域选择性在有机羧酸合成中的应用。
Zhu等人报道了来自于菌株Bradyrhizobium japonicum USDA110中的 腈水解酶bll6402(Dunming Zhu,Adv.Synth.Catal.2007,349,1667-1670), 发现此腈水解酶可以催化各种双腈,对部分双腈(包括1-氰基环己基乙 腈及其类似物)具有较高的区域选择性。
Sophie Bergeron等人报道了一株腈水解酶BD9570(来自Diversa) (Sophie Bergeron,Organic Process Research & Development 2006,10, 661-665),此腈水解酶可以催化3-羟基戊二腈合成阿托伐他汀侧链关键 手性中间体(R)-4-氰基-3-羟基丁酸,具有较高的区域选择性和立体选择 性。
Zhiyi Xie等人报道了一株来自于Arabidopsis thaliana的腈水解酶 AtNit1(Zhiyi Xie,Journal of Molecular Catalysis B:Enzymatic,2006,41, 75–80),该腈水解酶可以催化异丁基丁二腈合成普瑞巴林手性中间体 (3S)-3-氰基-5-甲基己酸,具有很高的区域选择性和立体选择性。
John E.Gavagan等人报道了一株来源于Acidovorax facilis 72W腈水 解酶(John E.Gavagan,J.Org.Chem.,1998,63,4792-4801),该脂肪族腈 水解酶对于α,ω-双腈具有较好的区域选择性。专利US2005009157 A1也 报道了该腈水解酶可以催化1-氰基环己基乙腈合成加巴喷丁中间体1-氰 基环己基乙酸。
专利US2005009157 A1还报道了商品化腈水解酶NIT-104,NIT-105, NIT-106(来自Biocatalytics Inc.)以及来自菌株Bacillus sphaericus的腈 水解酶对于1-氰基环己基乙腈具有区域选择性活力。
Carmela Bengis-Garber等人报道了菌株Rhodococcus rhodochrous N.C.I.B.11216中的腈水解酶对于α,ω-双腈的催化具有区域选择性。且该 菌株的区域选择性与底物α,ω-双腈的碳链长度以及培养时所用的诱导剂 有关。(Carmela Bengis-Garber,Appl Microbiol Biotechnol(1989)32:11-16)
Chandrani Mukherjee等人报道了一株来自于Synechocystis sp.Strain PCC6803的腈水解酶(Chandrani Mukherjee,Eur.J.Org.Chem.2006, 5238–5242),该腈水解酶催化各种α,ω-双腈,其区域选择性与α,ω-双腈 的碳链长度有很大的关系。随着碳链长度的增加,该腈水解酶的区域选择 性逐渐下降。
迄今为止,有关对1-氰基环己基乙腈具有区域选择性催化活力的腈 水解酶报道较少,主要来自Acidovorax facilis 72W,Bradyrhizobium japonicum USDA110,Bacillus sphaericus以及商品化腈水解酶NIT-104、 NIT-105、NIT-106。但是这些腈水解酶催化1-氰基环己基乙酸存在催化活 性较低和催化剂用量较大的问题。所以筛选新型生物催化剂,开发高效加 巴喷丁关键中间体酶法合成工艺,建立绿色经济的加巴喷丁合成新工艺具 有重要意义。
(三)发明内容
本发明目的在于解决传统的化学法水解1-氰基环己基乙腈为1-氰基 环己基乙酸的工艺中,反应条件苛刻,反应中需要大量的有机溶剂,成本 较高,收率较低,环境污染较为严重的问题。
本发明提供一种水解1-氰基环己基乙腈的区域选择性腈水解酶,该 酶在催化上述反应时具有良好的区域选择性和催化活力,生产过程对环境 友好。
本发明采用的技术方案是:
本发明提供一种利用腈水解酶工程菌制备1-氰基环己基乙酸的方法, 所述方法为:将含重组腈水解酶基因的工程菌经发酵培养后的培养液离 心,以湿菌体作为催化剂,以1-氰基环己基乙腈为底物,以pH值为 3.0~10.0的缓冲液为反应介质(优选pH值为7的磷酸缓冲液),在25~70 ℃(优选35℃)进行转化反应,反应结束后,获得含1-氰基环己基乙酸 的混合液,将混合液分离纯化,获得1-氰基环己基乙酸;所述含重组腈 水解酶基因的工程菌由SEQ ID NO.2所示核苷酸序列编码基因构建而成。 所述底物初始浓度为0.02~1mol/L,优选100mmol/L,所述湿菌体的质量 终浓度为10~100g/L,优选50g/L。
进一步,本发明所述催化剂按如下方法制备:将含腈水解酶基因的工 程菌接种至含终浓度50mg/L卡那霉素的LB液体培养基中,37℃、150rpm 培养10~12小时,获得种子液;随即将种子液以体积浓度2%的接种量接 种至含终浓度50mg/L卡那霉素的LB液体培养基中,37℃、150rpm培养 至培养液的OD600为0.6~0.8,向培养液中加入终浓度为0.1mM的IPTG, 28℃、150rpm诱导培养10小时,将培养液离心,取沉淀水洗,获得湿菌 体即为催化剂;所述LB液体培养基组成为:10g/L胰蛋白胨,5g/L酵母 提取物,10g/L氯化钠,溶剂为水,pH值为7。
本发明所述1-氰基环己基乙酸分离纯化的方法通常为:转化结束后, 转化液内加入7~8mL、10.5M的NaOH溶液(使产物较好溶解,提高回 收率),调pH至8.5-9.0,离心(9000rpm,10min),取上清液。往上清 液中按体积比1:1比例加入乙醇水溶液(含水量5%体积浓度)(去除菌体 破碎产生的核酸,蛋白质等),抽滤。取滤液,减压蒸馏(温度控制在50 ℃以下)。馏出酒精后的剩余液体内加入5‰的HC-767针剂用活性炭吸附 杂质,抽滤。滤液内加盐酸调pH至2.5左右,静置,抽滤,将漏斗内含 有单酸的滤液回收烘干(35℃以下),即获得产物1-氰基环己基乙酸。
本发明所述生物催化1-氰基环己基乙腈制备1-氰基环己基乙酸的反 应方程为:
本发明所述含腈水解酶基因的工程菌的构建方法为:利用蛋白质 (PDB)和(NCBI)数据库对腈水解酶基因序列进行筛选,以紫红红球 菌K22(Rhodococcus rhodochrous K22)的腈水解酶基因(GeneBank accession no.D12583)序列为基础,依据大肠杆菌偏好的密码子进行密码 子优化,通过基因工程的常规操作以全合成的方法合成了SEQ ID NO.2 所示的腈水解酶基因RkN,该基因编码的腈水解酶的氨基酸序列为SEQ ID NO.1所示。然后将上述腈水解酶基因转入载体中构建重组表达载体 pET28b(+)–RkN,再用重组表达载体转化宿主菌(优选大肠杆菌BL21 (DE3)),构建含腈水解酶基因的工程菌。
经过序列比对,Rhodococcus rhodochrous K22腈水解酶与已有报道对 于1-氰基环己基乙腈具有催化活力的腈水解酶—Acidovorax facilis 72W 腈水解酶(GeneBank accession no.ABD98457)和Bradyrhizobium japonicum USDA110的腈水解酶bll6402(GeneBank accession no. BAC51667)同源性分别为68.15%和40.31%。
与现有技术相比,本发明的有益效果主要体现在:本发明提供一种微 生物催化1-氰基环己基乙腈制备1-氰基环己基乙酸的方法,本发明所述 含腈水解酶的工程菌作为催化剂,具有良好的区域选择性和很高的催化活 力(比酶活达到4800U/g),生产过程对环境友好;解决了传统的化学法 水解1-氰基环己基乙腈为1-氰基环己基乙酸的工艺中反应条件苛刻、反 应需要大量的有机溶剂、成本较高、收率较低,环境污染较为严重的问题。
(四)具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明进行进一步描述,但本发明的保护范围 并不仅限于此:
以下实施例所用主要实验材料来源为:
大肠杆菌宿主菌株E.coli BL21(DE3)购自Invitrogen公司,表达载体 pET-28b(+)购自Novagen公司,限制性内切酶NcoⅠ和XhoⅠ购自 Fermentas公司,T4 DNA连接酶和卡那霉素均购自大连宝生物有限公司; 异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)为Promega公司产品。DNA Marker 和染色剂Gold View购自TaKaRa公司;Axygen DNA凝胶回收试剂盒、 质粒抽提试剂盒、PCR纯化试剂盒购自爱思进生物技术有限公司。
实施例1:腈水解酶基因的合成
利用蛋白质PDB和NCBI数据库对腈水解酶基因序列进行筛选,得 到一个腈水解酶基因(GeneBank accession no.D12583)。该腈水解酶来源 于紫红红球菌K22(Rhodococcus rhodochrous K22),根据Rhodococcus rhodochrous K22腈水解酶的序列(GeneBank accession no.D12583),依 据大肠杆菌偏好的密码子进行密码子优化,根据表达载体pET28b(+)的特 点设计了酶切位点Nco Ⅰ、Xho Ⅰ,通过基因工程的常规操作以全合成的 方法合成了该段腈水解酶基因RkN(SEQ ID NO.2所示),编码酶的氨基 酸序列为SEQ ID NO.1所示。
实施例2:腈水解酶基因表达载体及其重组转化子的构建
合成的腈水解酶基因RkN与pET28b(+)都分别用Nco I和Xho I 进行双酶切,大约酶切6h后,回收酶切产物,利用T4连接酶在16℃下 连接16小时,得到重组表达质粒pET28b(+)-RkN。将表达载体pET28b (+)-RkN转化至E.coli BL21(DE3)受体菌,涂布于含卡那霉素(终 浓度50mg/L)的LB琼脂平板上,37℃培养过夜后,平板上长出菌落(黄 白色圆形菌落)。随机挑取单克隆,培养后提取质粒进行测序,测序结果 表明得到阳性克隆E.coli BL21(DE3)/pET28b(+)-RkN。
实施例3:腈水解酶的表达
实施例2中得到的重组转化子E.coli BL21(DE3)/pET28b(+)-RkN接 种到LB液体培养基中,37℃,150rpm培养10-12小时,然后按体积浓度 2%的接种量接种至含有卡那霉素(终浓度50mg/L)的LB液体培养基进 行扩大培养,37℃,150rpm培养至培养液的OD600为0.6-0.8之间,加入 异丙基-β-D-硫代吡喃半乳糖苷(IPTG)至终浓度为0.1mM,28℃,150rpm 诱导培养10小时。培养液离心收集菌体,用生理盐水清洗2次得到湿菌 体。
实施例4:腈水解酶活力验证
对实施例3中得到的湿菌体进行静息细胞催化反应,以验证腈水解酶 对于1-氰基环己基乙腈的活力。
实验方法:称取0.5g湿菌体(终浓度50g/L)悬浮于10mL磷酸氢二 钠-磷酸二氢钠缓冲液体系中(pH=7.0,0.2M),加入0.296g1-氰基环己基 乙腈(终浓度200mM),35℃恒温水浴反应30min。反应完成后,取1mL 反应液,12000rpm离心,弃去沉淀,取上清液用高效液相色谱(C18柱) 分析产物浓度。高效液相色谱分析条件为:流动相为缓冲液(0.58g磷酸 二氢铵+1.83g过氯酸钠溶于1L纯水中,用高氯酸调节pH为1.8)∶乙腈 =76∶24,柱温为40℃。同样条件下,以E.coli BL21(DE3)空载体和未诱 导的E.coli BL21(DE3)/pET28b(+)-RkN以及含有Acidovorax facilis 72W 腈水解酶的E.coli BL21(DE3)/pET28b(+)-AcN为对照,结果如表1所示。 酶活定义为:在一定条件下,每分钟催化底物生产1μmol产物所需的酶 量定义为一个活力单位,记为U。
表1:腈水解酶RkN活力验证结果
实施例5:使用含有腈水解酶RkN的重组大肠杆菌转化100mM 1-氰 基环己基乙腈。
实验方法:称取0.5g湿菌体(实施例3制备,终浓度50g/L)悬浮于 10mL磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲液体系中(pH=7.0,0.2M),加入 0.148g1-氰基环己基乙腈(终浓度100mM),35℃恒温水浴反应4小时。 反应完成后,取1mL反应液,12000rpm离心,弃去沉淀,取上清液用高 效液相色谱(C18柱)分析产物浓度。高效液相色谱分析条件为:流动相 为缓冲液(0.58g磷酸二氢铵+1.83g过氯酸钠溶于1L纯水中,用高氯酸 调节pH为1.8)∶乙腈=76∶24,柱温为40℃。结果:产物1-氰基环己 基乙酸的浓度为99mM,产率为99%。
实施例6:使用含有腈水解酶RkN的重组大肠杆菌转化200mM 1-氰 基环己基乙腈
实验方法:称取0.5g湿菌体(实施例3制备,终浓度50g/L)悬浮于 10mL磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲液体系中(pH=7.0,0.2M),加入 0.296g1-氰基环己基乙腈(终浓度200mM),35℃恒温水浴反应30min。 反应完成后,取1mL反应液,12000rpm离心,弃去沉淀,取上清液用高 效液相色谱(C18柱)分析产物浓度。高效液相色谱分析条件为:流动相 为缓冲液(0.58g磷酸二氢铵+1.83g过氯酸钠溶于1L纯水中,用高氯酸 调节pH为1.8)∶乙腈=76∶24,柱温为40℃。
结果如下:产物1-氰基环己基乙酸的浓度为192mM,产率为96%。
实施例7:使用含有腈水解酶RkN的重组大肠杆菌转化500mM 1-氰 基环己基乙腈
实验方法:称取实施例3方法制备的10g湿菌体(终浓度100g/L) 悬浮于100mL磷酸氢二钠-磷酸二氢钠缓冲液体系中(pH=7.0,0.2M), 加入7.4g1-氰基环己基乙腈(终浓度500mM),35℃恒温水浴反应12小 时。反应液使用2倍体积的乙酸乙酯萃取,弃去有机相。水相加入醋酸酸 化,再加入2倍体积的乙酸乙酯萃取。有机相35℃烘干,得到1-氰基环 己基乙酸。
结果如下:得到产物1-氰基环己基乙酸6.75g,产率为91.2%。
机译: 制备化合物[r,s-(z)-α-(肟基-α-(1-氮杂双环)[2.2.2] -oct-3-yl)乙腈两性离子[r-(z)-的方法α-(肟基)-α-(1-氮杂双环)[2.2.2]-辛-3-基)乙腈两性离子酸α-氰基-1-氮杂双环[2.2.2]-辛烷-3-乙酸法[ r,s] -alpha-(甲氧亚氨基)-alpha-(1-氮杂双环)[2.2.2] -oct-3-yl)乙腈和[r,s-(z)]-α(oximino的溶液的制备方法)-α(1-氮杂双环[2.2.2]-辛-3-基)乙腈和制备[r-(z)]-α-(甲氧基亚氨基)-α-(1-氮杂双环)的方法[2.2。 2] -oct-3-yl)乙腈
机译: 由1-环己六乙酸乙腈制备酸1-环己六乙乙酸的方法,该方法包括使催化剂与1-环己酮六乙腈络合物催化的Nitrilasa具有活性
机译: 利用腈水解酶或含有腈水解酶基因的微生物从腈制备手性羧酸的方法