一种胶类中药及其制品中鹿源性成分的检测方法

摘要

本发明提供了一种胶类中药及其制品中鹿源性成分的检测方法，其利用马鹿和梅花鹿基因组中具有特异性核苷酸序列或氨基酸序列的不同进行检测，所述特异性氨基酸序列如SEQ ID No.1所示。采用本发明的方法，能够快速检测胶类中药中是否含有鹿源性成分，从而分辨真伪，尽管胶类中药中胶原蛋白多肽有一定水解与破坏，但本发明基于其主要成分胶原蛋白中的差异性多肽，其含量高，受破坏程度很小，可对胶类中药及其制品中的鹿源性成分进行鉴定。

说明书

技术领域

本发明涉及一种鹿源性成分的检测方法，具体涉及一种胶类中药及其制品中 鹿源性成分的检测方法，属于中药检测领域。

背景技术

鹿角，即鹿科动物马鹿(Cervus elaphus Linnaeus)或梅花鹿(Cervus nippon Temminck)已骨化的角或锯茸后翌年春季脱落的角基，属于传统名贵中药。据最 新版的中国药典记载，服用鹿角能够温肾阳，强筋骨，行血消肿。以鹿角为原料 而制成的鹿角胶在整个中药市场上占据着重要的位置。

据2010年版中国药典记载，鹿角胶是以鹿角为原料，经水煎煮、浓缩制成的 固体胶，性甘、咸、温，归肾、肝经。能够温补肝肾，益精养血，主要用于肝肾 不足所致的腰膝酸冷，阳痿遗精，虚劳羸瘦，崩漏下血，便血尿血，阴疽肿痛。 随着生活水平的不断提高，与阿胶类似，鹿角胶也成为人们进补的首选之一。

由于鹿角自身比较名贵，药用价值显著，并且鹿肉也常常用于烹饪各类补品 供人们食用，鹿科动物的数量在减少，梅花鹿列为国家一级重点保护动物，马鹿 列为国家二级重点保护动物。因此，鹿角原料的供应非常有限，并且价格高昂， 也直接影响到了鹿角胶的生产。在鹿角胶市场上存在某些假冒伪劣产品，其制作 原料并非鹿角，而是由其他动物杂皮、碎骨代替，包括猪皮、牛皮，甚至病死动 物之皮，脏皮、烂皮等。该类假冒伪劣产品一旦成形，无论外观、色泽、气味都 与正品鹿角胶及其相似，真伪难辨。服用这些伪品不仅没有任何疗效，还很可能 对身体有害，后果十分严重。

胶类中药由动物的皮、骨、甲等熬制而成胶类物质，包括阿胶、龟甲胶、鹿 角胶等，具有典型民族特色的传统中药。胶类中药一般经长时间高温蒸煮浓缩而 成，主要成分非常相近且不同厂家的生产工艺存在差异，采用红外、近红外、X- 衍射等方法对胶类中药纯品进行真伪鉴别常存在判断不准确等情况。胶类中药中 鹿源性成分的鉴别，已有学者从多肽的角度利用质谱定性检测胶类中药中鹿源性 成分，结果准确可靠。目前，还没有对胶类中药的制品中进行溯源鉴定的方法。

胶类中药中主要成分为胶原蛋白多肽，不同动物的胶原蛋白氨基酸序列存在 差异，同一物种稳定存在的差异性多肽可作为该物种的特征性多肽，通过限制性 内切酶酶切，利用质谱完全有可能准确对胶类中药及其制品进行溯源鉴定与含量 检测。

发明内容

本发明针对上述问题，提供了一种胶类中药及其制品中鹿源性成分的检测方 法，该方法操作简单，特征性强，灵敏度高，可用于胶类中药及其制品中鹿源性 成分的鉴定。

本发明的技术方案如下：

首先，本发明提供了一种胶类中药及其制品中鹿源性成分的检测方法，其利 用马鹿和梅花鹿基因组中具有特异性核苷酸序列或氨基酸序列的不同进行检测， 所述特异性氨基酸序列如SEQ.ID No1所示。

优选的，所述胶类中药选自阿胶、黄明胶、龟甲胶或鹿角胶。

优选的，所述胶类中药制品选自由相应胶类中药制成的食品、保健品或药品。

具体地，该方法包括如下步骤：

（1）选取马鹿和梅花鹿基因组中特异性氨基酸序列或氨基酸序列,所述特异 性氨基酸序列如SEQ.ID No1所示;

（2）将胶类中药或其制品溶解，或提取其中的蛋白多肽类成分溶解，加入限 制性内切酶进行酶切；

（3）随后放入液质联用仪，以待检测的阴性样品为基质，加入步骤（1）所 得氨基酸序列或鹿角胶纯品作为对照，选择该多肽的母离子m/z435.0及其子离子 进行监测。

如果检出该离子的保留时间与对照品一致，且其子离子与对照品的子离子一 致，则所述胶类中药或其制品含有鹿源性成分；如果没有与对照品保留时间一致 的该离子，则不含有鹿源性成分。

优选的，步骤（2）中所述溶解所用的试剂是质量百分数为1%、pH值8.0 的NH₄HCO₃溶液；所述限制性内切酶为胰蛋白酶。

采用本发明的方法，能够快速检测胶类中药中是否含有鹿源性成分，从而分 辨真伪，尽管胶类中药中胶原蛋白多肽有一定水解与破坏，但本发明基于其主要 成分胶原蛋白中的差异性多肽，其含量高，受破坏程度很小，可对胶类中药及其 制品中的鹿源性成分进行鉴定。

本发明还涉及多肽，其氨基酸序列为Gly-Glu-Ala-Gly-Pro-Gln-Gly-Pro-Arg， 及其由所述多肽与相应载体组成的组合物。此外，还包括所述多肽及其组合物在 检测胶类中药及其制品中鹿源性成分中的应用。

附图说明

图1是合成多肽及纯品胶多反应监测扫描模式下选择离子对m/z435.0→ 319.2、554.3、611.3监测的质谱图；

图2是合成多肽及加入5%鹿角胶的混合胶多反应监测扫描模式下选择离子对 m/z435.0→319.2、554.3、611.3监测的质谱图；

图3是合成多肽及鹿角胶制品（以龟鹿二仙口服液为例）在多反应监测扫描 模式下选择离子对m/z435.0→319.2、554.3、611.3监测的质谱图。

具体实施方式

下面结合具体实施例来进一步描述本发明，本发明的优点和特点将会随着描 述而更为清楚。但实施例仅是范例性的，并不对本发明的范围构成任何限制。本 领域技术人员应该理解的是，在不偏离本发明的精神和范围下可以对本发明技术 方案的细节和形式进行修改或替换，但这些修改和替换均落入本发明的保护范围 内。

本发明中特异性肽链的获得：

1材料和试剂

材料：纯品胶包括阿胶、马皮胶、黄明胶、猪皮胶、龟甲胶、鹿角胶，分别 用驴皮、马皮、牛皮、猪皮、龟甲、鹿角煎煮获得。

试剂：碳酸氢铵（分析纯）、胰蛋白酶（序列纯，购自中国食品药品检定研 究院）、合成多肽Gly-Glu-Ala-Gly-Pro-Gln-Gly-Pro-Arg。

2样品的检测前处理

（1）胶样品酶解溶液的制备

取1.0g待测胶样品于500mL量瓶中，加少量1%NH₄HCO₃溶液，超声使样品 完全溶解，用1%NH₄HCO₃溶液（pH8.0）稀释至刻度，摇匀，微孔滤膜过滤，精 密量取续滤液1mL加2mg/mL的胰蛋白酶溶液100μL，37℃恒温酶解6h。

（2）合成多肽对照样品酶解溶液的制备

称取一定量的合成多肽，加入1%NH₄HCO₃溶液（pH8.0），摇匀，配制成浓 度约为0.3μg/mL，微孔滤膜过滤，备用。

3多肽的发现

（1）离子的发现

取5μL酶解溶液放入液质联用仪检测。液相条件：C₁₈反相色谱柱 （2.1mm×100mm，1.8μm），流动相A为0.1%甲酸溶液【体积分数】，流动相B 为乙腈，流速0.3mL/min；梯度洗脱：0～40min，2%～50%流动相B（这里的百 分数表示从0分钟到第40分钟，流动B由2%线性渐变为50%、流动相A则由98% 渐变为50%）。质谱条件：电喷雾正离子模式（ESI⁺）进行一级全扫，扫描范围 m/z400-m/z1000。

从各自胶样品的质谱全扫图中提取离子m/z435.0，通过对比发现在4.42min 左右只有鹿角胶中含有该离子峰，而阿胶、马皮胶、黄明胶、猪皮胶和龟甲胶中 均没有。通过多批次样品的检测与验证表明上述结论正确。说明：可以通过检测 鹿角胶中的离子m/z435.0，来确定是否含有鹿源性成分。

（2）多肽的氨基酸序列初步推测

利用三重四极杆质谱，对上述找出的离子进行子离子扫描，确认该离子带双 电荷，通过序列拼接，推测出多肽的部分序列。根据推测的部分序列，在NCBI （http://www.ncbi.nlm.nih.gov/）数据库进行序列检索，结合其的特点（鹿中有， 而驴、马、牛、猪或龟中均没有，且被胰蛋白酶酶切后分子量约为869.0），找出 该多肽可能的序列Gly-Glu-Ala-Gly-Pro-Gln-Gly-Pro-Arg。根据肽链的CID断裂理 论，计算该多肽可能的子离子如下：

a b c" Res: x y″ z 30.0 58.0 77.1 Gly - - - 159.1 187.1 206.1 Glu 835.4 811.4 792.4

230.1 258.1 277.2 Ala 706.3 682.4 663.3 287.1 315.1 334.2 Gly 635.3 611.3 592.3 384.2 412.2 431.2 Pro 578.3 554.3 535.3 512.2 540.2 559.3 Gln 481.2 457.3 438.2 569.3 597.3 616.3 Gly 353.2 329.2 310.2 666.3 694.3 713.4 Pro 296.1 272.2 253.1 - - - Arg 199.1 175.1 156.1

能与鹿角胶中特有离子m/z435.0的子离子全扫图中的吻合。

（3）序列确定

根据推测的氨基酸序列，委托多肽合成公司（吉尔生化有限公司）进行该多 肽的合成。然后利用液质联用仪进行合成多肽的子离子全扫，其检测条件与胶样 品中相应多肽的子离子全扫条件一致。通过对比合成多肽与鹿角胶的离子出峰时 间、子离子全扫图，发现两者完全吻合，从而确定该离子m/z435.0为多肽 Gly-Glu-Ala-Gly-Pro-Gln-Gly-Pro-Arg。

实施例1

1材料和试剂

材料：纯品胶包括阿胶、马皮胶、黄明胶、猪皮胶、龟甲胶、鹿角胶，分别 用驴皮、马皮、牛皮、猪皮、龟甲、鹿角煎煮获得。

混合胶样品（含5%鹿角胶的阿胶、10%鹿角胶的阿胶、20%鹿角胶的阿胶、 40%鹿角胶的阿胶）由上述纯品胶精确混合制成。（百分数为质量百分数）

试剂：碳酸氢铵（分析纯）、胰蛋白酶（序列纯，购自中国食品药品检定研 究院）、合成多肽Gly-Glu-Ala-Gly-Pro-Gln-Gly-Pro-Arg。

2检测方法

（1）合成多肽对照样品酶解溶液的制备

取1.0g纯品阿胶样品于500mL量瓶中，加少量1%NH₄HCO₃溶液，超声使样 品完全溶解，用1%NH₄HCO₃溶液（pH8.0）稀释至刻度，摇匀，微孔滤膜过滤， 精密量取续滤液1mL加入合成多肽0.3μg，再加2mg/mL的胰蛋白酶溶液100μL， 37℃恒温酶解6h。

（2）胶样品酶解溶液的制备

取1.0g待测胶样品于500mL量瓶中，加少量1%NH₄HCO₃溶液，超声使样品 完全溶解，用1%NH₄HCO₃溶液（pH8.0）稀释至刻度，摇匀，微孔滤膜过滤，精 密量取续滤液1mL加2mg/mL的胰蛋白酶溶液100μL，37℃恒温酶解6h。

（3）检测

取5μL酶解溶液放入液质联用仪检测。液相条件：C₁₈反相色谱柱 （2.1mm×100mm，1.8μm），流动相A为0.1%甲酸溶液【体积分数】，流动相B 为乙腈，流速0.3mL/min；梯度洗脱：0～40min，2%～50%流动相B（这里的百 分数表示从0分钟到第40分钟，流动B由2%线性渐变为50%、流动相A则由98% 渐变为50%）。质谱条件：电喷雾正离子模式（ESI⁺）选择进行多反应检测，选 择m/z435.0→319.2、554.3、611.3作为检测离子对。

结果见图1，4.42min处只有合成多肽对照样品和鹿角胶中检出相应的离子峰， 其他均没有检出。以鹿角胶的百分含量为横坐标，以m/z435.0→554.3提取离子流 图中色谱峰面积为纵坐标，绘制标准曲线，R²为0.999以上，线性良好。可见该 法能够特异性检测鹿源性成分，与其他各种动物源性成分包括驴、马、牛、猪、 龟等进行区分。

实施例2

1材料和试剂

材料：混合胶样品由实施例1中的纯品胶样品分别加入5%鹿角胶制成，包括 含5%鹿角胶的阿胶、5%鹿角胶的马皮胶、含5%鹿角胶的黄明胶、5%鹿角胶的猪 皮胶、含5%鹿角胶的龟甲胶。（百分数为质量分数）

试剂：碳酸氢铵（分析纯）、胰蛋白酶（序列纯，购自中国食品药品检定研 究院）、合成多肽Gly-Glu-Ala-Gly-Pro-Gln-Gly-Pro-Arg。

2检测方法

（1）合成多肽对照样品酶解溶液的制备

取1.0g待测纯品阿胶样品于500mL量瓶中，加少量1%NH₄HCO₃溶液，超声 使样品完全溶解，用1%NH₄HCO₃溶液（pH8.0）稀释至刻度，摇匀，微孔滤膜过 滤，精密量取续滤液1mL加入合成多肽0.3μg，再加2mg/mL的胰蛋白酶溶液 100μL，37℃恒温酶解6h。

（2）胶样品酶解溶液的制备

取1.0g待测样品于500mL量瓶中，加少量1%NH₄HCO₃溶液，超声使样品完 全溶解，用1%NH₄HCO₃溶液（pH8.0）稀释至刻度，摇匀，微孔滤膜过滤，精密 量取续滤液1mL加2mg/mL的胰蛋白酶溶液100μL，37℃恒温酶解6h。

（3）检测

取5μL酶解溶液放入液质联用仪检测。液相条件：C₁₈反相色谱柱 （2.1mm×100mm，1.8μm），流动相A为0.1%甲酸溶液【体积分数】，流动相B 为乙腈，流速0.3mL/min；梯度洗脱：0～40min，2%～50%B（这里的百分数表示 从0分钟到第40分钟，流动B由2%线性渐变为50%、流动相A则由98%渐变为 50%）。质谱条件：电喷雾正离子模式（ESI⁺）选择进行多反应检测，选择m/z435.0 →319.2、554.3、611.3作为检测离子对。

结果见图2，4.42min处合成多肽对照样品、加入5%鹿角胶的混合胶样品中 均检出相应的离子峰，而实施案例1中的纯品阿胶、马皮胶、黄明胶、猪皮胶、 龟甲胶中均没有检出相应的离子峰。可见该法能够特异性检测胶类中药中的鹿源 性成分。

实施例3

1材料和试剂

材料：鹿角胶、龟鹿二仙口服液（山东东阿阿胶股份有限公司）、不含鹿角胶的 龟鹿二仙口服液（自制）

试剂：三氯乙酸（分析纯）、碳酸氢铵（分析纯）、胰蛋白酶（序列纯，购 自中国食品药品检定研究院）、合成多肽Gly-Glu-Ala-Gly-Pro-Gln-Gly-Pro-Arg。

2检测方法

（1）合成多肽对照样品酶解溶液的制备

取1.0g不含鹿角胶的龟鹿二仙口服液样品加入1%NH₄HCO₃溶液24mL溶解， 加入4g三氯乙酸，4℃放置10min，10000rpm离心5min，弃上清，将沉淀物转入 100mL量瓶中，用1%NH₄HCO₃溶液（pH8.0）溶解并定容至刻度，摇匀，微孔滤 膜过滤，精密量取续滤液1mL加入合成多肽0.3μg，再加2mg/mL的胰蛋白酶溶液 100μL，37℃恒温酶解6h。

（2）待测样品酶解溶液的制备

取1.0g待测样品加入1%NH₄HCO₃溶液25mL溶解，加入4g三氯乙酸，4℃ 放置10min，10000rpm离心5min，弃上清，将沉淀物转入100mL量瓶中，用 1%NH₄HCO₃溶液（pH8.0）溶解并定容至刻度，摇匀，微孔滤膜过滤，精密量取 续滤液1mL加2mg/mL的胰蛋白酶溶液100μL，37℃恒温酶解6h。

（3）检测

取5μL酶解溶液放入液质联用仪检测。液相条件：C₁₈反相色谱柱 （2.1mm×100mm，1.8μm），流动相A为0.1%甲酸溶液【体积分数】，流动相B 为乙腈，流速0.3mL/min；梯度洗脱：0～40min，2%～50%B（这里的百分数表示 从0分钟到第40分钟，流动B由2%线性渐变为50%、流动相A则由98%渐变为 50%）。质谱条件：电喷雾正离子模式（ESI⁺）进行多反应检测，选择m/z435.0 →319.2、554.3、611.3作为检测离子对。

结果见图3，4.42min处合成多肽对照样品、鹿角胶和含有鹿角胶的龟鹿二仙 口服液检出相应的离子峰，其他没有检出，可见该法能够特异性检测鹿角胶制品 中的鹿源性成分，而与其他各种动物源性成分包括驴、马、牛、猪、龟等进行区 分。