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法律状态
2018-06-15
专利权的转移 IPC(主分类):C12N15/113 登记生效日:20180528 变更前: 变更后: 申请日:20130717
专利申请权、专利权的转移
2018-02-06
专利权的转移 IPC(主分类):C12N15/113 登记生效日:20180117 变更前: 变更后: 申请日:20130717
专利申请权、专利权的转移
2015-11-04
授权
授权
2015-04-15
著录事项变更 IPC(主分类):C12N15/113 变更前: 变更后: 申请日:20130717
著录事项变更
2013-10-30
实质审查的生效 IPC(主分类):C12N15/113 申请日:20130717
实质审查的生效
2013-09-25
公开
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技术领域
本发明属于药物制备领域,具体涉及一种针对微小RNA-21种子序列的反 义寡聚核苷酸及应用。
背景技术
microRNA(miRNA)是一类长度约22个核苷酸的内源性非编码单链小分子 RNA,参与细胞的分化、增殖和调亡、个体发育、机体代谢等生理过程。miRNA 5'端的“种子序列”(miRNA5'端7-8个核苷酸序列)与其靶基因mRNA的3'非翻 译区(3'untranslated region,3'UTR)进行碱基完全互补配对,促进靶基因mRNA 降解或抑制mRNA翻译,从而对靶基因的表达水平进行转录后调控。
至2012年8月,已有21264条目miRNA序列记载于人类基因组中(Sanger miRBasel9.0数据库)。有研究发现属于ncRNA范畴的miRNA不仅在胚胎发育和细 胞分化上发挥关键作用,也与肿瘤的发生、发展有着密切的关系。约有50%的 miRNA集中于肿瘤基因组的脆性位点区或者与癌症相关的区域,几乎所有的肿 瘤都有异常表达的miRNA,通过miRNA芯片检测发现,在多发性骨髓瘤患者的 骨髓瘤细胞中,miRNA-29b表达水平显著降低,miR-106b-25群(cluster)、 miR-181a/b和miR-19a/b表达则相对升高。通过本课题组的实验发现在慢性粒细 胞株K562中,miR-181a表达下调。一系列研究表明,miRNA在多种肿瘤中既可 作为抑癌基因下调癌基因的表达,也可作为癌基因下调抑癌基因的表达。并且 在不同的肿瘤组织或细胞内,miRNA具有特定的表达模式,明显的组织特异性。 miRNA对靶基因表达的调控为揭示肿瘤的发病机制、指导治疗及判断预后方面 提供了新的机遇。
miR-21是miRNA家族中的一个亚型,位于17q23.2染色体FRA17B脆性区域 上,是具有自主转录单位的miRNA,并且有高度保守性。Chan等(Chan J A, Krichevsky A M,Kosik K S,et a1.Cancer Res,2005,65(14):6029)首次发 现miR-21在人恶性胶质瘤中高表达,并通过抑制细胞凋亡促进肿瘤的发生。对 肿瘤样本或细胞株中的miRNAs的表达水平进行转录图谱研究,发现miR-21负性 调节STAT3、PTEN、PDCD4、AP1、TGFβ等多种靶基因,在多种实体瘤(肺 癌、胃癌、肝癌、乳腺癌、前列腺癌、胰腺癌、结肠癌、头颈部肿瘤、食管癌 等)以及非实体瘤(慢性淋巴细胞性白血病、B细胞性淋巴瘤等)中高表达,起 着致癌基因的作用。miR-21与肿瘤的转移侵入也有密切关系。通过一系列的实 验方法调节miR-21在肿瘤中的表达,能够减少肿瘤的增殖,抑制肿瘤的转移及 侵入。所以,敲除或抑制miR-21的表达,使其失去癌基因的功能,就可以在一 定程度上治疗相关癌症。研究表明,miR-21可以作为癌症诊断以及治疗的一种 新的生物标志物(Zheng J,Xue H,Wang et a1.J Cell Biochem,2011,112: 872-880.)。因此,miRNA-21可能成为多种癌症治疗新的靶点。
慢性粒细胞白血病以及多发性骨髓瘤都是恶性增殖性疾病,传统的化学药 物都存在一定的毒副作用,因此急需寻找新的药物。已有研究结果表明 microRNA-21在包括慢性髓系白血病的多种癌症中高表达,并且对肿瘤细胞的 增殖和迁移起到明显的促进作用,提示拮抗microRNA-21的表达可能成为慢性 髓系白血病等肿瘤治疗的新靶点,针对microRNA-21靶点的药物开发成为一个 亟待解决的应用。
目前研究miR-21的表达调控的方法有RNA干扰技术、反义核酸技术和 miRNA海绵技术等。由于成熟miRNA只有21nt,反义核酸技术表现出明显的优 势,基于miRNA的作用机制,使用seed-targeting tiny LNA(Susanna Obad,Camila O dos Santos,Andreas Petri etal.Nature genetics,2011,43(4):371-378.)作用于 microRNA取得一定成效。
发明内容
本发明的目的在于克服现有技术的缺点与不足,提供一种针对微小RNA-21 种子序列的反义寡聚核苷酸。
本发明的再一目的在于提供上述针对微小RNA-21种子序列的反义寡聚核 苷酸的应用。
本发明的目的通过下述技术方案实现:一种针对微小RNA-21种子序列的 反义寡聚核苷酸(t-antimiR-21),其核苷酸序列如下:ATAAGCTA。
所述的反义寡核苷酸经过全硫代修饰。
所述的针对微小RNA-21种子序列的反义寡聚核苷酸在制备抗慢性粒细胞 白血病以及抗多发性骨髓瘤的药物方面应用。
本发明相对于现有技术具有如下的优点及效果:
本研究针对miR-21的种子序列合成t-antimiR-21,靶向作用于慢性粒细胞 株K562以及多发性骨髓瘤细胞株RPMI-8266的miR-21,发现t-antimiR-21对 肿瘤细胞的抑制效应影响,为制备治疗相关肿瘤疾病的药物提供的新的可能。 同时,由于t-antimiR-21只有8nt,与miR-21成熟序列合成的反义寡聚核苷酸 (antimiR-21)(如图1)性比,具有转染效率高和毒副作用小的优势,因此一定 程度上可以克服长序列antimiR-21本身所产生的转染效率低及毒副作用大的不 足。通过研究证实,t-antimiR-21具有直接或间接抑制肿瘤的发生和肿瘤的生长 的作用,所以可用于制备预防或治疗肿瘤的药物,在临床治疗中具有广阔的前 景。
附图说明
图1是miR-21、antimiR-21和t-antimiR-21的序列示意图。
图2是MTT法测K562细胞和RPMI-8266细胞增殖抑制率结果图,A:MTT 法测K562细胞增殖抑制率结果图;B:MTT法测RPMI-8266细胞增殖抑制率 结果图。
图3是台盼蓝拒染法测K562细胞和RPMI-8266细胞的活细胞数结果图。A: 台盼蓝拒染法测K562细胞的活细胞数结果图;B:台盼蓝拒染法测RPMI-8266 细胞的活细胞数结果图。
图4是Annexin V/PI双染法测K562细胞凋亡率结果图。A:流式细胞仪检 测PI和Annexin V双染色结果图;B:Annexin V/PI双染色法检测的K562细胞 凋亡率结果柱状图。
具体实施方式
下面结合实施例及附图对本发明作进一步详细的描述,但本发明的实施方式 不限于此。
下述实施例所用试剂的来源:
MTT(四甲基偶氮唑蓝)及DMSO购自Sigma公司,新生牛血清购于杭州四 季青生物工程科技有限公司,胎牛血清及RPMI-1640培养基购自GIBCO公司。 LipofectamineTM2000购自Invitrogen公司。
K562细胞株购自中科院上海细胞库,RPMI-8266细胞株受赠于南方医科大 学血液科。
实施例1反义寡核苷酸的设计与合成
从microRNA Families数据库中获取人microRNA-21种子序列,根据序列互补 原理设计针对种子序列的反义寡核苷酸序列(t-antimiR-21),并采用BLAST软件 分析确定其反义寡核苷酸序列及随机对照序列(如图1)。反义寡核苷酸序列 (t-antimiR-21):5’-ATAAGCTA-3’;随机序列(scramble,SCR):5’-TCATACTA-3’, 均由上海生物工程有限公司合成,全硫代修饰,HPLC纯化。
实施例2K562细胞培养
将K562细胞接种于含体积分数为10%的新生牛血清、无抗生素的RPMI-1640 培养基中,RPMI-8266细胞接种于含体积分数为10%的胎牛血清,无抗生素的 RPMI-1640培养基中,置于37℃、体积分数为5%的CO2培养箱,饱和湿度下培养。 每2-3天换液传代。实验选用对数生长期、质量分数为0.2%台盼蓝拒染率>95%的 细胞。
实施例3MTT法筛选反义寡核苷酸的最佳作用浓度
本实验分t-antimiR-21组、随机对照组(SCR)和空白对照组,每组设5个复孔。 t-antimiR-21组中t-antimiR-21的核酸终浓度为0.2、0.3、0.4、0.5和0.6μmol/l,随 机对照组中随机序列的核酸终浓度为0.2、0.3、0.4、0.5和0.6μmol/l。取对数生长 期的K562细胞和RPMI-8266细胞,各组细胞以1×105个/mL的密度接种于96孔板, 每孔50μL,转染终体积100μL(转染方法参照Invitrogen公司LipofectamineTM2000 说明书),空白对照组加入50μL的无血清的Opti-MEM培养基。转染6h后,每孔 加入100μL含体积分数为20%胎牛血清的RPMI-1640培养基,使每孔终体积为 200μL。48小时后每孔加入5mg/ml的MTT液20μL,于培养箱中培养4小时后, 1000rpm离心10min,弃上清,每孔加入150μL二甲基亚砜(DMSO),震荡10 分钟,使结晶充分溶解,在多功能酶标仪上测定吸光度A570nm,以A570间接反映 存活细胞量。实验重复三次,计算细胞增殖抑制率。细胞增殖抑制率=[1-(A实验组/A对照组)]×100%。
MTT法测细胞增殖抑制率结果如图2所示,t-antimiR-21在终浓度为 0.3μmol/L和0.4μmol/L之间表现出有效抑制K562细胞,RPMI-8266增殖活力的效 应,其最佳作用浓度为0.4μmol/L,与随机对照组相比有显著差异(P<0.05)。 t-antimiR-21在0.5μmol/L以上的终浓度显示出非特异性作用。
实施例4台盼蓝拒染法检测不同时间段细胞的生长状况
实验分组及处理同实施例3,反义寡核苷酸组(t-antimiR-21)和随机对照组 (SCR)的核酸终浓度为0.4μmol/L。于24、48、72小时将每组细胞充分混匀后 用台盼蓝拒染法计数每组活细胞数,重复3次,取均值。
反义寡核苷酸对细胞的生长抑制作用结果如图3所示,终浓度0.4μmol/L的 t-antimiR-21分别作用于K562细胞和RPMI-8266细胞24小时后开始表现出生长抑 制效应,持续至72小时。随机对照组(SCR)、空白对照组细胞的生长基本不受 影响。
实施例5流式细胞仪计量分析K562细胞凋亡情况
实验分组同实施例3,各组细胞以5×104/ml的密度接种于24孔板,每孔400ul, 转染终体积500ul,空白对照组加入与药物同体积的RPMI-1640培养基。6小时后 加入500ul体积分数为20%胎牛血清的RPMI-1640培养基置于培养箱中培养。反义 寡核苷酸组和随机对照组的核酸终浓度为0.4μmol/L。48小时后离心收集细胞, 采用Annexin V/PI双染色,并用流式细胞仪检测细胞凋亡情况。
反义寡核苷酸对细胞凋亡的影响结果如图4所示,终浓度0.4μmol/L的反义 寡核苷酸作用于K562细胞48小时后,经AnnexinV/PI双染色,采用流式细胞 仪检测,细胞调亡率为7.52%。与对照组的3.86%相比,其凋亡率明显增加。
以上实施例的结果表明t-antimiR-21作用于K562细胞以及RPMI-8266细胞 后,细胞的增殖和生长受到抑制,细胞凋亡明显增加。终浓度0.4μmol/L为最优 的t-antimiR-21处理条件,达到最有的肿瘤细胞增殖和生长抑制效应和明显的细 胞凋亡效应。
其中,K562细胞作为慢性髓原白血病细胞株和RPMI-8266细胞作为骨髓瘤 细胞株,t-antimiR-21对两种细胞的增殖抑制、生长抑制和细胞凋亡增加的作用, 表明t-antimiR-21通过干扰miRNA-21表达可有效抑制淋巴瘤细胞生长,同时表 明miRNA-21可能作为淋巴瘤基因治疗的潜在靶点。为t-antimiR-21应用于制备 抗肿瘤药物,应用于慢性粒细胞白血病以及多发性骨髓瘤疾病治疗提供实验证 据。
上述实施例为本发明较佳的实施方式,但本发明的实施方式并不受上述实施 例的限制,其他的任何未背离本发明的精神实质与原理下所作的改变、修饰、替 代、组合、简化,均应为等效的置换方式,都包含在本发明的保护范围之内。
机译: 针对人乙酰胆碱酯酶的合成反义寡聚核苷酸
机译: 核酸二聚体,二聚体DNA的六边形环状分子及其在针对基因病原体的反义序列传递中的应用
机译: 筛选方法以鉴定针对靶核苷酸序列的有效反义序列或核酶