声明
摘要
引言
第一章 兔USCs原代培养与诱导分化
1.1 兔尿液的收集及USCs的分离培养
1.1.1 材料
1.1.2 实验方法
1.2 兔USCs生长曲线的测定
1.2.1 材料
1.2.2 实验方法
1.3 兔USCs体外向上皮细胞(UCs)和平滑肌细胞(SMCs)方向诱导
1.3.1 材料
1.3.2 实验方法
1.4 USCs诱导分化细胞的鉴定
1.4.1 材料
1.4.2 实验方法
1.5 实验结果
1.5.1 兔尿液的收集及USCs的分离培养
1.5.2 兔尿源性干细胞生长曲线
1.5.3 兔尿源性干细胞多潜能分化(上皮分化和平滑肌分化)
1.5.4 兔USCs诱导分化的细胞鉴定
1.6 讨论
1.6.1 兔尿源形干细胞(USCs)
1.6.2 尿源性干细胞诱导分化为上皮细胞和平滑肌细胞
第二章 小肠粘膜下层脱细胞基质(SIS)的制备与检测
2.1 小肠粘膜下层脱细胞基质(SIS)的制备
2.1.1 材料
2.1.2 实验方法
2.2 SIS电镜扫描观察
2.3 SIS的HE检测
2.3.1 材料
2.3.2 实验方法
2.4 SIS的Hoechst染色
2.4.1 材料
2.4.2 实验方法
2.5 经不同浓度PAA氧化脱细胞处理的SIS单轴力学拉伸实验测定
2.5.1 材料
2.5.2 实验方法
2.6 经不同浓度PAA处理的SIS的残余DNA量测定
2.6.1 材料
2.6.2 实验方法
2.7 经不同浓度PAA处理的SIS的生长因子TGF-β、VEGF的残余量测定
2.7.1 材料
2.7.2 实验方法
2.8 SIS的细胞毒性研究
2.8.1 材料
2.8.2 实验方法
2.9 统计学方法
2.10 实验结果
2.10.1 SIS的大体标本观察
2.10.2 SIS电镜扫描观察
2.10.3 SIS的组织学检查(HE染色和Hoechst染色)
2.10.4 经不同浓度PAA氧化脱细胞处理的SIS单轴力学拉伸测定结果
2.10.5 经不同浓度PAA处理的SIS的残余DNA量测定结果
2.10.6 经不同PAA浓度处理的SIS中的生长因子TGF-β、VEGF的残余量测定结果
2.10.7 USCs在SIS上的黏附实验研究
2.11 讨论
第三章 初级组织工程尿道的体外构建
3.1 初级组织工程尿道的体外构建
3.1.1 材料
3.1.2 实验方法
3.2 实验结果
3.2.1 复合支架的HE检测和Hoeehst染色
3.2.2 初级组织工程尿道的Masson三色染色和Hoechst染色
3.3 讨论
结语
参考文献
附录
在校期间发表论文情况
致谢
广州中医药大学;