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小干扰RNA对丙型肝炎病毒核心蛋白基因表达的抑制作用

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英文缩略词表

摘要

前言

第一部分HCV核心蛋白表达质粒pEGFP-C的构建及其在HEK 293T细胞中的表达

第二部小干扰RNA对HCV核心蛋白基因表达的抑制

总结

参考文献

综述HCV研究的新突破:体外培养HCV颗粒的产生

致谢

附录:

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摘要

丙型肝炎病毒(HCV)属黄病毒属,是导致慢性肝炎及肝硬化的主要因素。HCV基因组是9.6kb的单正链RNA,包含一个位于5’和3’非编码区之间的阅读框ORF,ORF编码全长3,008-3,037个氨基酸的前体蛋白,通过细胞及病毒的蛋白酶切割产生结构蛋白和非结构蛋白,经翻译后修饰产生至少十种不同的蛋白:核心蛋白、E1、E2、p7、非结构蛋白NS2、NS3、NS4A、NS4B、NS5A和NS5B。大多数慢性感染病人通过干扰素和利巴韦林联合治疗。RNA干扰(RNAinterference,RNAi)是指外源双链RNA(dsRNA)被RNaseⅢ家族中的Dicer酶切割为21-23个核苷酸(nucleotide,nt)的小干扰RNA(smallinterferingRNAs,siRNAs),每个siRNA两条单链末端为5’一磷酸和3’-羟基,且3’端都有2-3个突出的非配对碱基,与胞内一核酶复合物结合形成RNA诱导沉默复合物(RNA-inducedsilencingcomplex,RSC),RISC激活后通过碱基配对定位到同源mRNA转录本上,进行切割mRNA,导致相应的基因沉默,属于转录后基因沉默机制(post-transcriptionalgenesilencing,PTGS),它是1998年Fire在研究反义核苷酸时发现的。RNA干扰现象广泛存在于植物、线虫、果蝇等生物中,但在哺乳动物细胞中,长双链RNA(>30bp)会引起干扰素效应,促使细胞凋亡;而<30bp的siRNA转染哺乳动物细胞后,既能引起RNAi,又可避免干扰素效应。因此,通过引入靶mRNA序列特异的siRNA沉默基因的表达,不仅可以研究该基因的功能和复杂的信号传导途径,还可以对癌症,神经系统性疾病,感染性疾病等人类疾病进行基因治疗性研究。作为一种抑制基因表达的新技术,本研究中,我们针对HCV核心蛋白设计并用T7RiboMAXTM表达系统体外转录合成了五段C基因特异的siRNA,并选用EGFP-siRNA和无关siRNA(scramblesiRNA)分别作为阳性和阴性对照,结果筛选并证明了两段siRNA能有效且特异地抑制核心蛋白的表达。 一、HCVcore基因在HEK293T细胞中的表达选人胚肾293T(HEK293T)细胞为宿主细胞,EGFP基因为报告基因,将构建的HCVcore表达质粒pEGFP-C转染HEK293T细胞,48小时后,用荧光显微镜观察转染细胞中的绿色荧光数量和荧光强度,pEGFP-C转染的细胞中可见大量绿色荧光,利用HCVcore单克隆抗体检测核心蛋白的表达,Westernblotting结果显示,pEGFP-C转染的细胞中C-EGFP(47kd)融合蛋白表达较少,而非融合的核心蛋白(2lkd)却有较强的表达。推测其原因可能是真核细胞内有许多蛋白酶,将所表达蛋白在某些敏感的酶切位点进行了切割,使融合蛋白在表达后被切割成EGFP和core两种蛋白,具体原因有待于进一步研究。 二、小干扰RNA抑制HCV核心蛋白的表达采用T7体外转录法合成siRNA,首先合成七段siRNAs(C-siRNA1、C-siRNA2、C-siRNA3、C-siRNA4、C-siRNA5、阴性对照scramblesiRNA和阳性对照EGFP-siRNA)的正、反义链DNA模板以及T7启动子引物模板,用T7RNA聚合5-酶分别转录正、反义链siRNA,然后退火形成双链,用单链特异的S1核酶和无RNA酶的DNase1分别消化dsRNA的5’端突出序列和残留的DNA模板,得到长21nt的双链siRNA。然后将这七段siRNA与pEGFP-C共转染HEK293T细胞。48小时后,在荧光显微镜下观察绿色荧光,初步筛选出两段有效的siRNA(C-siRNA2和C-siRNA2),以未转染的HEK293T细胞作空白对照,用流式细胞仪检测各实验组中发绿色荧光的细胞数及平均荧光强度,并用CellQuest软件进行定量分析;提取细胞总RNA,逆转录后用HCVcore和GAPDH基因特异的引物进行半定量RT-PCR和实时定量PCR(Real-timePCR);Westernblotting检测核心蛋白的表达。结果显示,与单独转染质粒pEGFP-C组(其荧光细胞百分数为43.35%,平均荧光强度为110.68)相比,共转染scramblesiRNA组绿色荧光细胞的百分数及平均荧光强度均无明显下降,而共转染EGFP-siRNA组下降了3.9倍和2.5倍,C-siRNA1组下降3.5倍和1.8倍,C-siRNA2组下降2.9倍和3.2倍;与未转染siRNA组相比,共转染EGFP-siRNA或C-siRNA组core基因mRNA水平均明显降低,其中共转染EGFP-siRNA组下降了约15倍,C-siRNA1及C-siRNA2组分别下降了约13倍和9倍,而阴性对照组core基因转录水平无明显抑制,但各实验组看家基因GAPDH的转录水平均未受任何影响。单独转染pEGFP-C的细胞在转染后48h可见到核心蛋白呈高水平表达,阴性对照组核心蛋白的表达水平与之相似,但共转染EGFP-siRNA和C-siRNA1及C-siRNA2组的核心蛋白表达水平均明显降低,只见很弱的蛋白表达条带,但各组看家基因GAPDH的蛋白表达均不受影响。这些结果说明siRNAs通过下调靶基因的转录水平,从而有效且特异的抑制了靶蛋白的表达。 将空载体pEGFP-N1和pEGFP-C分别转染HEK293T细胞,利用Westernblotting检测MAPK/ERK的活化形式磷酸化水平即核心蛋白的激活功能,结果显示空载体对此分子没有作用,而转染核心蛋白表达载体的细胞内MAPK/ERK的磷酸化水平却有显著提高,说明运用瞬时表达的方法可以检测到核心蛋白对MAPK/ERK的激活作用。然后将RNAi与信号转导结合起来,检测RNAi前后MAPK/ERK的磷酸化水平的变化。将筛选的两段有效的siRNA干扰细胞中核心蛋白基因的表达后,再次检测MAPK/ERK的磷酸化水平,结果显示RNAi后核心蛋白对MAPK/ERK产生的激活作用明显降低。 小结:1、本实验以EGFP基因为报告基因,构建真核表达质粒pEGFP-C并转染HEK293T细胞使之表达,蛋白免疫印迹实验结果显示,转染的细胞中核心蛋白有较高水平表达,为后续的RNA干扰实验奠定了基础。 2、本实验针对HCVcore蛋白基因设计并用T7RiboMAXTM表达系统体外转录合成了五段针对core基因的siRNA,与表达质粒pEGFP-C共转染HEK293T细胞,筛选出两段有高效抑制作用的siRNA,并同时利用EGFP-siRNA和scramblesiRNA作为阳性和阴性对照,结果证明这两段siRNA均能有效且特异地抑制核心蛋白的表达。利用Westernblotting检测了瞬时转染空载体pEGFP-N1和pEGFP-C的细胞中MAPK/ERK磷酸化水平,结果表明核心蛋白对MAPK/ERK的激活作用。利用核心蛋白表达的RNAi后,此激活作用明显降低,说明在MAPK/ERK的水平siRNA的有效性。

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