声明
符号说明
1 前言
1.1质膜型氢离子ATP酶(PM H+-ATPase)
1.1.1 PM H+-ATPase的结构
1.1.2 PM H+-ATPase的生理功能
1.1.3 PM H+-ATPase与营养元素
1.1.4 PM H+-ATPase的翻译后调控
1.1.5 PM H+-ATPase的转录调控
1.2铁素营养与植物
1.2.1铁元素对植物的重要性
1.2.2高等植物铁吸收机制
1.2.3植物铁吸收及转运相关基因
1.3植物缺铁响应调控
1.3.1植物感应缺铁的信号物质
1.3.2植物缺铁响应的转录调控
1.3.3植物缺铁响应转录因子的调控
1.4 花青苷与植物
1.4.1 花青苷在植物中的代谢
1.4.2 花青苷代谢相关基因
1.4.3 花青苷代谢途径调控
1.4.4 环境因子对植物花青苷代谢的影响
1.5蛋白的SUMO化修饰
1.5.1 SUMO化过程研究进展
1.5.2 SUMO化在植物中的功能
1.6研究目的及意义
2 材料和方法
2.1 材料
2.1.1植物材料
2.1.2菌株
2.1.3载体
2.1.4酶和生化试剂
2.1.5引物
2.1.6培养基
2.1.7抗生素
2.1.8溶液与缓冲液
2.2实验方法
2.2.1 植物总RNA提取
2.2.2 cDNA反转录(定量PCR用)
2.2.3 cDNA反转录(普通PCR用)
2.2.4 基因克隆
2.2.5 PCR产物回收
2.2.6 连接克隆载体
2.2.7转化大肠杆菌感受态细胞
2.2.8 测序
2.2.9 质粒DNA提取
2.2.10 质粒DNA酶切
2.2.11 植物过量表达载体构建
2.2.13 发根农杆菌RNA干扰(RNAi)载体构建
2.2.16 农杆菌转化
2.2.17 拟南芥种植
2.2.18 拟南芥遗传转化
2.2.19 苹果愈伤组织培养
2.2.20 苹果愈伤遗传转化
2.2.21 苹果组培苗培养
2.2.22 发根农杆菌侵染苹果组培苗
2.2.23 植物DNA提取
2.2.24 植物总蛋白提取
2.2.25 酵母双杂交
2.2.26 原核蛋白诱导和破碎
2.2.27 GST Pull-down实验
2.2.28 Co-IP沉淀蛋白实验
2.2.29 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)
2.2.30 蛋白免疫印迹实验(Western blot)
2.2.31 凝胶变动迁移实验(EMSA)
2.2.32 体外SUMO实验
2.2.33 体内SUMO实验
2.2.34 体内泛素结合实验
2.2.35 体内蛋白降解实验
2.2.36 GUS组织化学染色
2.2.37 GUS酶活测定
2.2.38 病毒载体瞬时侵染愈伤
2.2.39 叶绿素含量测定
2.2.40 铁含量测定
2.2.41 亚铁离子菲洛嗪(Ferrozine)染色
2.2.42 质膜H+-ATP酶活性的测定
2.2.43 外泌H+染色
2.2.44 植物花青苷含量测定
2.2.46 愈伤组织花青苷着色实验
2.2.46 病毒载体瞬时注射苹果
3 结果与分析
3.1 MdSIZ1响应缺铁逆境调控苹果铁吸收动态平衡
3.1.1 MdSIZ1调控PM H+-ATPase介导的苹果缺铁响应
3.1.2 MdSIZ1与MdbHLH104直接互作
3.1.3 MdSIZ1在K139和K153位点处将MdbHLH104 SUMO化
3.1.4 MdSIZ1通过抑制泛素/26S蛋白酶体途径稳定MdbHLH104蛋白
3.1.5 MdbHLH104的SUMO化影响其铁吸收功能
3.1.6 MdSIZ1部分依赖MdbHLH104促进苹果质子外泌及铁吸收
3.2 MdSIZ1响应适度低温逆境调控苹果花青苷积累
3.2.1 MdSIZ1调控适度低温下苹果花青苷生物合成
3.2.2 MBS顺式作用元件对MdSIZ1启动子响应适度低温具有重要作用
3.2.3 MdMYB2直接结合MdSIZ1启动子的MBS顺式作用元件
3.2.4 MdMYB2转录调控MdSIZ1
3.2.5 MdSIZ1位于MdMYB2下游促进苹果花青苷积累
4 讨论
4.1 MdSIZ1响应缺铁逆境调控苹果铁吸收动态平衡
4.1.1MdSIZ1部分通过MdbHLH104调控苹果PM H+-ATPase活性
4.1.2 MdSIZ1调控苹果抗逆与养分吸收
4.2 MdSIZ1响应适度低温逆境调控苹果花青苷积累
4.2.1 MdSIZ1通过MdMYB2响应适度低温逆境
4.2.2 MdSIZ1位于MdMYB2下游调控苹果花青苷积累
5 结论
参考文献
7 附录
致谢
9 攻读学位期间发表及待发表的论文