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蒙古牛和水牛BTG2启动子的克隆及功能分析

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摘要

缩略语表

1 引言

1.1 蒙古牛、水牛概述

1.1.1 蒙古牛特征及分布

1.1.2 水牛特征及分布

1.2 BTG/TOB家族研究进展

1.3 BTG2研究进展

1.4 启动子研究进展

1.4.1 启动子概述

1.4.2 启动子的研究意义

1.4.3 启动子调控功能研究进展

1.5 电转染技术

1.6 荧光定量PCR技术

1.6.1 荧光定量PCR原理

1.6.2 SYBR Green Ⅰ染料监测PCR

1.7 凝胶电泳迁移率实验

1.8 研究的目的及意义

2 实验一 蒙古牛和水牛BTG2启动子的克隆及序列分析

2.1 材料

2.1.1 生物材料

2.1.2 主要试剂

2.1.3 溶液配制

2.1.4 主要仪器及耗材

2.2 方法

2.2.1 血液DNA的提取

2.2.2 DNA浓度和纯度的检测

2.2.3 BTG2启动子的扩增

2.2.4 BTG2启动子克隆与测序

2.2.5 pBTG2(p)-EGFP瞬时表达载体的构建

2.3 结果

2.3.1 蒙古牛和水牛血液基因组提取结果

2.3.2 BTG2启动子扩增结果

2.3.3 菌落PCR产物鉴定结果

2.3.4 重组pMD-BTG2(p)限制性酶切鉴定

2.3.5 蒙古牛和水牛BTG2启动子序列分析

2.3.6 pBTG2(p)-EGFP瞬时表达载体构建结果

2.4 讨论

3 实验二 蒙古牛和水牛BTG2启动子功能的初步验证

3.1 材料

3.1.1 生物材料

3.1.2 主要试剂

3.1.3 溶液配制

3.1.4 主要仪器及耗材

3.2 方法

3.2.1 瞬时表达载体P(BTG2)-EGFP-SV40 PolyA的转染及诱导表达

3.2.2 荧光定量PCR检测BTG2的表达差异

3.2.3 蒙古牛BTG2启动子269bp EMSA检测

3.3 结果

3.3.1 HeLa细胞电转染结果

3.3.2 荧光定量PCR结果

3.3.3 EMSA分析结果

3.4 讨论

4 结论

致谢

参考文献

附录

作者简介

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摘要

BTG2是新型细胞抗增殖因子BTG/TOB基因家族成员之一,它是由神经生长因子诱导表达产生的一种分泌蛋白,属于瞬时早期反应基因。BTG2在猪和牛中均存在品种和个体表达差异。本研究选择蒙古牛和水牛BTG2启动子区进行研究,以阐明蒙古牛和水牛BTG2差异表达分子机理。
  本文以蒙古牛和水牛基因组DNA为模板,分别克隆获得蒙古牛和水牛1708bp、1478bp的BTG2启动子序列。序列比对结果显示,相对于蒙古牛,水牛BTG2启动子存在269bp的缺失,生物信息学分析发现,该序列存在多个转录因子结合位点,这为后续多态性分析和功能鉴定奠定了基础。将蒙古牛和水牛BTG2启动子序列分别重组到哺乳动物表达载体pEGFP-N1中,获得瞬时表达载体pBTG2(p)-EGFP,并将它们分别导入HeLa细胞,神经生长因子诱导后,均检测到报道基因GFP表达,且蒙古牛BTG2启动子转录活性高于水牛,由此推测,水牛BTG2启动子区缺失的269bp片段很可能是导致该现象的根本原因。利用qRT-PCR检测BTG2在水牛、蒙古牛肌肉组织中的实时表达状况,由此揭示BTG2启动子区269bp缺失是否影响其转录。研究结果表明,与蒙古牛相比,水牛BTG2表达明显降低,这表明缺失的269bp DNA序列很可能与BTG2启动子活性直接相关。将蒙古牛BTG2启动子区较水牛多出的269bp片段与蒙古牛核蛋白相互作用。EMSA结果表明,在DNA含量相同的条件下,随着核蛋白浓度的增加,DNA与核蛋白的结合率呈上升趋势。该研究推测,这段DNA片段中可能存在与肉品质或抗寒相关的特定的顺式元件。该研究初步预测BTG2很可能是牛肉品质以及抗寒、抗旱能力的候选基因,这为BTG2的后续研究奠定了基础。

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