声明
摘要
缩略语表
1 引言
1.1 蒙古牛、水牛概述
1.1.1 蒙古牛特征及分布
1.1.2 水牛特征及分布
1.2 BTG/TOB家族研究进展
1.3 BTG2研究进展
1.4 启动子研究进展
1.4.1 启动子概述
1.4.2 启动子的研究意义
1.4.3 启动子调控功能研究进展
1.5 电转染技术
1.6 荧光定量PCR技术
1.6.1 荧光定量PCR原理
1.6.2 SYBR Green Ⅰ染料监测PCR
1.7 凝胶电泳迁移率实验
1.8 研究的目的及意义
2 实验一 蒙古牛和水牛BTG2启动子的克隆及序列分析
2.1 材料
2.1.1 生物材料
2.1.2 主要试剂
2.1.3 溶液配制
2.1.4 主要仪器及耗材
2.2 方法
2.2.1 血液DNA的提取
2.2.2 DNA浓度和纯度的检测
2.2.3 BTG2启动子的扩增
2.2.4 BTG2启动子克隆与测序
2.2.5 pBTG2(p)-EGFP瞬时表达载体的构建
2.3 结果
2.3.1 蒙古牛和水牛血液基因组提取结果
2.3.2 BTG2启动子扩增结果
2.3.3 菌落PCR产物鉴定结果
2.3.4 重组pMD-BTG2(p)限制性酶切鉴定
2.3.5 蒙古牛和水牛BTG2启动子序列分析
2.3.6 pBTG2(p)-EGFP瞬时表达载体构建结果
2.4 讨论
3 实验二 蒙古牛和水牛BTG2启动子功能的初步验证
3.1 材料
3.1.1 生物材料
3.1.2 主要试剂
3.1.3 溶液配制
3.1.4 主要仪器及耗材
3.2 方法
3.2.1 瞬时表达载体P(BTG2)-EGFP-SV40 PolyA的转染及诱导表达
3.2.2 荧光定量PCR检测BTG2的表达差异
3.2.3 蒙古牛BTG2启动子269bp EMSA检测
3.3 结果
3.3.1 HeLa细胞电转染结果
3.3.2 荧光定量PCR结果
3.3.3 EMSA分析结果
3.4 讨论
4 结论
致谢
参考文献
附录
作者简介
内蒙古农业大学;