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【6h】

Toll样受体4在成骨细胞共培养体系中对干细胞向破骨细胞分化的影响及机制

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摘要

主要略缩词一览表

引言

第一章 大鼠骨髓间质干细胞的分离、培养及鉴定

1.前言

2.实验目的

3.实验材料

3.1 实验动物

3.2 实验试剂/试剂盒

3.3 实验仪器及器材

3.4 实验试剂的配置

4.实验方法

4.1.大鼠BMSCs的分离及原代培养

4.2.流式细胞技术检测大鼠BMSCs表面标志物

4.3.MTT法检测大鼠BMSCs细胞活力

5.实验结果

5.1.大鼠BMSCs的分布及形态

5.2.流式细胞技术检测细胞生长周期和细胞表面标志物

5.3.MTT法检测细胞活力及生长曲线的绘制

6.结果讨论

第二章 TLR-4在“干细胞-成骨细胞”共培养体系中对BMSCs向破骨细胞分化的影响

1.前言

2.实验目的

3.实验材料

3.1 实验动物

3.2 实验试剂/试剂盒

3.3 实验仪器及器材

3.4 实验试剂的配置

4.实验方法

4.1.大鼠BMSCs的分离、培养、传代及流式细胞技术鉴定表面标志物

4.2.诱导大鼠BMSCs向大鼠成骨细胞分化大鼠成骨细胞株的鉴定

4.3.Western blotting检测骨钙素及Ⅰ型胶原鉴定大鼠成骨细胞株

4.4.茜素红染色及碱性磷酸酶染色鉴定大鼠成骨细胞株

4.5.“干细胞-成骨细胞”共培养体系的构建

4.6.共培养体系中诱导干细胞向破骨细胞分化及分组干预

4.7.TRAP染色检测破骨细胞及破骨细胞计数

5.实验结果

5.1.大鼠BMSCs的分离、培养、传代及流式细胞技术鉴定表面标志物

5.2.大鼠成骨细胞形态及鉴定结果

5.3.“干细胞-成骨细胞”共培养体系

5.4.TRAP染色及染色阳性细胞计数分析

6.结果分析

第三章 TLR-4在“干细胞-成骨细胞”共培养体系中促进BMSCs向破骨细胞分化的机制研究

1.前言

2.实验目的

3.实验材料

3.1 实验动物

3.2 实验试剂/试剂盒

3.3 实验仪器及器材

3.4 实验试剂的配置

4.实验方法

4.1.大鼠BMSCs的分离、培养、传代及流式细胞技术鉴定表面标志物

4.2.诱导大鼠BMSCs向大鼠成骨细胞分化大鼠成骨细胞株的鉴定

4.3.“干细胞-成骨细胞”共培养体系的构建及分组处理

4.4.Western blotting检测RANKL的表达

5.实验结果

5.1.大鼠BMSCs的分离、培养、传代及流式细胞技术鉴定表面标志物

5.2.大鼠成骨细胞的诱导生成及鉴定

5.3.TLR-4对“干细胞-成骨细胞”中RANKL表达的影响

6.结果分析

参考文献

综述:RANKL/RANK通路在破骨细胞形成过程中的作用

攻读硕士学位期间发表文章

致谢

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摘要

目的:
  探索Toll样受体4(Toll Like Receptor,TLR)-4在“干细胞(上室)-成骨细胞(下室)”共培养体系中对大鼠骨髓间充质干细胞(Bone marrowmensenchymal stem cells,BMSCs)向破骨细胞分化的影响及机制。
  方法:
  以Percoll密度梯度离心法分离大鼠BMSCs,常规培养、传代,镜下观察细胞形态。取第3代活力良好的细胞以流式细胞技术检测经典干细胞表面标志物CD34、CD44、CD54、CD90,鉴定干细胞。取孔径为8μm的Transwell小室,将第3代活力良好的BMSCs制成细胞悬液(密度为1×107/ml)置于共培养小室的上室;将由大鼠BMSCs诱导分化而来的大鼠成骨细胞株进行培养、传代并鉴定后,取活力较好的第3代细胞制成细胞悬液(密度为1×107/ml)置于共培养小室的下室,构建“干细胞-成骨细胞”共培养体系。将构建完成的“干细胞-成骨细胞”共培养体系分为TLR-4激活组和空白组,前者上室中加入TLR-4激动剂脂多糖(10ng/ml),后者上室中加入等体积PBS缓冲液,两组的上室中均加入破骨细胞诱导培养基进行培养。培养第6天,分别取TLR-4激活组和空白组上室细胞制成细胞爬片,进行抗酒石酸酸性磷酸酶(Tartrate resistant acidphosphatase,TRAP)染色,染色阳性认为是破骨细胞,比较两组上室破骨细胞数目。在培养第6天,分别取2组下室细胞悬液,以β-肌动蛋白作为内参,蛋白质印迹法(Western blot法)检测并比较核因子κB受体活化因子配体(Receptoractivator for nuclear factor-κB ligand,RAKL)的蛋白表达。
  结果:
  Percoll密度梯度离心法获得细胞,镜下观察原代细胞由最初的散在的非贴壁细胞逐渐形成集落并贴壁,形态由小圆形淋巴细胞样转变为纤维细胞样。经流式细胞技术鉴定,细胞表面标志物表达为CD34阴性,CD44阳性,CD54阳性,CD90阳性,符合BMSCs细胞表面标志物表达特征。细胞在“干细胞-成骨细胞”共培养体系中经干预措施处理后,TRAP染色结果显示,TLR-4激活组上室中破骨细胞数目(55.83±2.44个)多于空白组上室细胞中破骨细胞数目(37.50±2.20个),结果差异有统计学意义(t=13.556,P<0.05)。Western blot法检测结果显示,TLR-4激活组RANKL的蛋白表达较空白组RANKL的蛋白表达更为明显,定量分析显示差异具有统计学意义(t=17.630,P<0.05)。
  结论:
  在“干细胞-成骨细胞”共培养体系中,激活TLR-4能够促进干细胞向破骨细胞分化,其机制可能与TLR-4促进成骨细胞分泌RANKL有关,上调的RANKL与干细胞表面的核因子κB受体活化因子(Receptor activator for nuclear factor-κB,RANK)作用,通过RANKI/RANK通路促进干细胞向破骨细胞分化。

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