食用菌中多菌灵和噻菌灵残留分析方法研究

摘要

农药与其他农用化学品的应用对环境以及人类的健康都带来了很大的危害。基于这种情况，农药残留分析的方法有了很大的提高，尤其是多残留分析技术，更是有了突飞猛进的变化。近些年食用菌的产量也在日益扩大，食用菌中的农药残留分析就成为人们更加关注的课题。榆黄蘑(Flammulina velutipes)、平菇(Pleurotus ostracatus)和滑子菇(Pholiota nameko)是全国各地四季生产的食用菌，本文旨在通过对吉林省食用菌研究中心生产三种食用菌的栽培原料中噻菌灵(Thiabendazole)、多菌灵(Carbendazim)两种常用杀菌剂在培养料中残留动态的研究，控制食用菌培养料长残留农药含量，提出合理使用农药防治病虫害的决策，为绿色食用菌生产提供一种可行的农药多残留测定方法。 本论文在总结国内外关于食用菌中农残研究的基础上，利用高效液相色谱仪对农药多残留分析方法，进行了细致研究，结果表明：该方法具有很高的准确度和精确度，并且具有良好的重现性。同时利用该种方法对三种食用菌子实体以及培养料中的两种杀菌剂进行残留测定，两种农药分析方法的研究结果显示其线性相关系数为0.9988～1，平均回收率是多菌灵在培养料中为86.1％～87.9％，多菌灵在平菇中为75.3％～84.4％，多菌灵在榆黄蘑中为74.2％～89.4％，噻菌灵在培养料中为84.6％～87.5％,噻菌灵在平菇中为81.9％～88.1％，噻菌灵在榆黄蘑中为82.4％～87.8％。多菌灵最小检出浓度为0.0015mg kg<'-1>，噻菌灵的最小检出浓度为0.0075mg kg<'-1>。均可以达到《农药残留试验准则》所规定的要求。 培养料样品经甲醇提取后，过弗罗里硅土柱净化，以甲醇水作为流动相，进行高效液相色谱(HPLC)分析。食用菌子实体用乙腈进行提取后，过弗罗里硅土柱净化。降解过程符合一级反应动力学模式C=C<,0>e<'-kt>。多菌灵在平菇中的动态消解方程为C=1.7253e<'-0.0819t>。多菌灵在榆黄蘑培养料中的动态降解方程为C=1.8709 e<'-0.1177t>。多菌灵在滑子菇子实体中的动态降解方程为C=5.0308e<'-0.439t>，噻菌灵在滑子菇子实体中的动态降解方程为C=2.8189e<'-0.384t>。同时得出多菌灵在平菇培养料中降解半衰期为2.97天，在榆黄蘑培养料中的降解半衰期为5.83天。而多菌灵在滑子菇子实体的半衰期为2.24天，噻菌灵在滑子菇子实体中的半衰期为1.05天。

目录

文摘

英文文摘

声明

第一章前言

1.1食用菌生产现状

1.2食用菌中农药污染现状

1.3农药及农药残留检测技术

1.3.1农药及农药残留

1.3.2农药残留来源

1.3.3农药残留毒性

1.3.4农药残留分析

1.4食用菌中农药残留分析方法

1.5研究目的和意义

第二章残留分析方法

2.1材料

2.1.1仪器设备及试剂

2.2方法

2.2.1色谱条件及环境要求

2.2.2前处理条件

2.3结果与分析

2.3.1添加回收率及变异系数

2.3.2最小检出量的测定

2.3.3检测极限的测定

2.3.4标准曲线

2.3.5分离效果及色谱图

2.4仪器条件方法优化

2.4.1分析方法的选择

2.4.2仪器的选择

2.4.3检测器波长的选择

2.4.4色谱柱的选择

2.4.5流动相的选择

2.4.6检测温度的选择

2.4.7流动相流速的选择

2.5前处理方法优化

2.5.1不同提取方法比较

2.5.2不同净化方法比较

2.6小结

第三章残留动态

3.1田间试验

3.1.1试验材料

3.1.2试验地点

3.1.3试验方法

3.2残留量测定

3.2.1仪器与试剂

3.2.2样品制备

3.2.3分析测定

3.3多菌灵与噻菌灵在滑子菇子实体上的残留动态

3.3.1试验时间

3.3.2试验地点

3.3.3试验药剂

3.3.4试验作物

3.3.5试验方法

3.3.6消解动态试验

3.3.7多菌灵和噻菌灵残留量测定

第四章结论

4.1食用菌中残留分析方法研究

4.1.1两种杀菌剂在食用菌培养料中的残留分析方法研究

4.1.2两种杀菌剂在平菇和榆黄蘑子实体中的分析方法研究

4.2多菌灵在平菇和榆黄蘑培养料以及多菌灵、噻菌灵在滑子菇子实体中的消解动态

参考文献

致谢

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