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论文说明
摘要
第一章单纯疱疹病毒与单纯疱疹病毒载体
1.1.单纯疱疹病毒的生物学特性
1.2单纯疱疹病毒载体
1.2.1非复制型单纯疱疹病毒载体
1.2.2复制型单纯疱疹病毒载体(溶瘤病毒载体)
1.2.3单纯疱疹病毒载体的应用
第二章溶瘤病毒与肿瘤基因治疗
2.1肿瘤基因治疗概述
2.2溶瘤病毒(复制型病毒载体)
2.2.2理想的溶瘤病毒特征及来源
2.2.3溶瘤病毒杀灭肿瘤细胞的一般机制
2.2.4溶瘤病毒特异性增殖的机制
2.2.5溶瘤病毒抗癌特异性
2.2.6病毒溶瘤作用产生的免疫反应
2.2.7溶瘤病毒技术进展
2.2.8常见的几种溶瘤病毒及应用
2.3结语
第三章本研究的已有基础以及研究目的和意义
3.1关于mtHSV的研究成果
3.1.1关于mtHSV的构建以及细胞和小鼠水平的杀瘤效应
3.1.2关于mtHSV对荷人肝癌Hep-3B裸鼠的杀瘤实验
3.2关于腺病毒的研究成果
3.2.1关于非复制型腺病毒的研究成果
3.2.2关于复制型腺病毒的研究成果
3.3本研究的目的和意义
第四章Ras/RTN3介导mtHSV侵染HeLa细胞
4.1前言
4.2.材料和方法
4.2.1病毒、菌株、细胞、和试剂
4.2.2载体
4.2.3细胞培养
4.2.4细胞冻存
4.2.5细胞复苏
4.2.6质粒DNA的制备
4.2.7低熔点琼脂糖凝胶法回收DNA片段
4.2.8DNA操作
4.2.9菌种的保存
4.2.10菌落PCR
4.2.12亚细胞组分的制备:从细胞中分离细胞质膜及内质网组分
4.2.13人法尼基转移酶(FTase)siRNA靶序列的选择
4.2.14 MTT分析
4.2.15细胞表面蛋白的流式细胞术定量检测
4.2.16激光共聚焦荧光定位
4.2.17免疫共沉淀
4.2.18 Western blot分析
4.2.19抗体的制备
4.2.20免疫荧光分析
4.2.21统计学分析
4.3研究结果
4.3.1载体的构建
4.3.2 mtHSV能有效杀死Hela细胞
4.3.3 mtHSV感染的Hela细胞中Ras和RTN3的表达
4.3.4 mtHSV感染Hela细胞后Ras和RTN3在细胞质膜和内质网上的表达
4.3.5 Ras和RTN3蛋白的共定位
4.3.6 Ras和RTN3蛋白的相互作用
4.3.7 siRNA沉默了Hela细胞中Ras和RTN3蛋白的表达
4.3.8 siFTa and siRTN3能有效的杀死Hela细胞
4.3.9 siFTa and siRTN3有效抑制了mtHSV对Hela细胞的侵染
4.4讨论
第五章mtHSV引起HeLa细胞死亡:凋亡?裂解?
5.1前言
5.2材料和方法
5.2.1病毒、菌株、细胞和试剂
5.2.2细胞培养
5.2.3细胞冻存
5.2.4细胞复苏
5.2.5 Hoechst 33258染色
5.2.6 DNA提取及琼脂糖凝胶电泳分析
5.2.7 Annexin V/PI双染法
5.2.8细胞表面蛋白的流式细胞术定量检测
5.2.9 Western blot分析
5.2.10激光共聚焦蛋白质免疫荧光定位
5.2.11统计学分析
5.3研究结果
5.3.1 mtHSV感染Hela细胞后P53蛋白的表达
5.3.2 mtHSV感染后P53蛋白在Hela和Hep3B细胞内的定位
5.3.3 mtHSV感染Hela细胞不诱发Hela细胞核形态改变
5.3.4 mtHSV感染Hela细胞不诱发Hela细胞DNA片断化
5.3.5流式细胞术(Annexin V/PI双染)检测结果
5.4讨论
第六章重组单纯疱疹病毒相互作用蛋白RasGRP2的筛选、表达及其功能鉴定
6.1前言
6.2材料与方法
6.2.1病毒、菌株、细胞、和试剂
6.2.2文库
6.2.3病毒的增殖、分离和提纯
6.2.4噬菌体文库筛选
6.2.5 PCR
6.2.6质粒DNA的制备
6.2.8重组质粒的构建
6.2.9重组质粒DNA的转座
6.2.10重组Bacmid DNA(>100 kb)的提取与制备
6.2.11 RasGRP2的真核表达及纯化
6.2.12 SDS-PAGE电泳
6.2.13 Western blot分析
6.2.14 DNA操作
6.2.15细胞培养
6.2.16质粒DNA转染
6.2.17 RasGRP2蛋白的跨膜区预测
6.2.18病毒吸附感染
6.3研究结果
6.3.1病毒的增殖、分离和提纯
6.3.2重组单纯疱疹病毒相互作用蛋白的筛选与鉴定
6.3.3载体和重组杆状病毒的构建
6.3.4 RasGRP2蛋白的表达
6.3.5 RasGRP2蛋白的跨膜区预测结果
6.3.6转染pAdtrackCMV RasGRP2的NIH3T3细胞可以被mtHSV和HSV-1感染
6.4讨论
研究总结
本文的创新点
参考文献
攻读博士学位期间发表和待发表的文章
致谢