声明
摘要
缩略语表(Abbreviation)
第1章 文献综述
1.1 副猪嗜血杆菌研究进展
1.1.1 副猪嗜血杆菌病概述
1.1.2 副猪嗜血杆菌的致病机理
1.1.3 HPS潜在致病因子的挖掘与鉴定
1.1.4 小结与展望
1.2 细菌性脑膜炎研究进展
1.2.1 细菌性脑膜炎与血脑屏障
1.2.2 病原菌穿过BBB的基本要素
1.2.3 脑脊液细胞增多及BBB功能的损伤
1.2.4 神经元损伤以及细菌性脑膜炎的临床结果与危害
1.2.5 小结与展望
第2章 副猪嗜血杆菌潜在毒力因子的筛选及capD基因的功能研究
2.1 研究目的与意义
2.2 实验材料
2.2.1 菌株和质粒
2.2.2 主要试剂及试剂盒
2.2.3 培养基及抗生素溶液的配制
2.2.4 主要溶液及其配制
2.2.5 主要实验器材
2.2.6 实验动物
2.2.7 引物
2.3 实验方法
2.3.1 HPS菌株的复苏和传代培养
2.3.2 HPS血清5型菌株SH0165和4型菌株7140的攻毒试验
2.3.3 SH0165和7140菌株细菌基因组的提取
2.3.4 抑制消减杂交(Suppression Subtractive Hybridization,SSH)
2.3.5 消减片段文库的构建和鉴定
2.3.6 Dot-Blot复筛阳性克隆
2.3.7 PCR检测差异片段在HPS参考菌株和地方分离株中的流行
2.3.8 多糖合成基因capD缺失重组质粒的构建
2.3.9 capD基因缺失株的筛选
2.3.10 capD缺失株的PCR鉴定
2.3.11 capD缺失株的Southern鉴定
2.3.12 capD缺失株的RT-PCR鉴定
2.3.13 CapD蛋白的原核表达及纯化
2.3.14 CapD蛋白免疫血清的制备
2.3.15 capD缺失的Western Blotting鉴定
2.3.16 capD缺失的遗传稳定性检测
2.3.17 capD互补菌株的构建
2.3.18 野生、缺失和互补三者菌落形态,生长曲线及生化特性比较
2.3.19 野生株、缺失株和互补菌株三者动物感染实验
2.3.20 野生株、缺失株和互补菌株的血清杀菌实验
2.3.21 野生株和缺失株表面结构的电镜观察
2.3.22 野生株和缺失株的蛋白质组双向电泳
2.4 结果与分析
2.4.1 HPS菌株SH0165和7140的毒力比较
2.4.2 SH0165和7140基因组消减杂交
2.4.3 消减文库的构建和筛选
2.4.4 特异性消减片段的测序分析
2.4.5 消减片段在HPS参考菌株和地方分离株中的流行情况
2.4.6 capD重组质粒的构建与鉴定
2.4.7 SH0165 △capD缺失株的筛选与鉴定
2.4.8 缺失株△capD的DNA、RNA和蛋白水平的验证
2.4.9 互补菌株C-capD的构建及验证
2.4.10 野生株、缺失株和互补菌株的生物学特性
2.4.11 野生株、缺失株和互补菌株三者致病性的比较
2.4.12 野生株、缺失株和互补菌株三者的血清抗性
2.4.13 野生株和缺失株表面荚膜结构的超微切片观察
2.4.14 capD基因缺失前后菌株蛋白质水平上的差异
2.5 讨论
2.5.1 抑制消减杂交筛选的HPS潜在致病相关因子
2.5.2 消减片段在不同背景HPS菌株中的流行情况分析
2.5.3 capD基因功能的初步揭示
2.5.4 CapD蛋白与菌株其他蛋白之间的潜在联系
2.6 小结与展望
第3章 一磷酸鞘氨醇(S1P)和表皮生长因子受体(EGFR)在细菌性脑膜炎中的作用研究
3.1 研究背景
3.2 研究目的与意义
3.3 实验材料
3.3.1 菌株、细胞及质粒
3.3.2 主要试剂及试剂盒
3.3.3 培养基及相关溶液的配制
3.3.4 主要实验器材
3.3.5 实验动物
3.3.6 引物
3.4 实验方法
3.4.1 细菌的粘附侵入实验
3.4.2 HBMEC细胞的转染
3.4.3 免疫沉淀
3.4.4 Western Blotting
3.4.5 荧光定量PCR
3.4.6 小鼠感染实验
3.4.7 统计学分析
3.5 结果与分析
3.5.1 EGFR在致脑膜炎E.coli菌株突破血脑屏障中的作用
3.5.2 激活EGFR的E.coli菌株致病因子的鉴定
3.5.3 S1P和SphK2在致脑膜炎E.coli菌株突破BBB过程中的作用
3.5.4 致脑膜炎菌株RS218侵入HBMEC过程中S1P受体的鉴定
3.5.5 E.coli菌体蛋白OmpA、FimH和NlpI对SphK2的激活作用
3.5.6 致脑膜炎E.coli菌株通过SphK2/S1P/S1P2信号途径激活EGFR
3.5.7 致脑膜炎E.coli菌株对EGFR的激活通过其特异性配体HB-EGF介导
3.5.8 致脑膜炎E.coli菌株感染HBMEC后引起EGFR与c-Src互作
3.5.9 c-Src对RS218菌株侵入HBMEC细胞的影响
3.5.10 SphK2/S1P/S1P2-EGFR信号通路的激活导致后续c-Src的激活
3.5.11 ERM蛋白的激活受到SphK2/S1P/S1P2-EGFR信号通路的调控
3.6 讨论
3.6.1 EGFR在脑血管内皮细胞(BMEC)的表达
3.6.2 EGFR在不同病原菌感染过程中的作用机制
3.6.3 S1P在血管细胞功能中的作用及其对病原菌突破BBB的影响
3.6.4 S1P受体作用的探讨
3.6.5 S1P信号途径激活EGFR的分子机制
3.6.6 c-Src在病原菌感染过程中的作用
3.6.7 ERM蛋白家族与病原菌对宿主细胞侵入的关系
3.7 小结与展望
结论
参考文献
文章发表
致谢