声明
摘要
缩略语表
文献综述
1 DVH概述
1.1 DHAV的流行及分布
1.2 DHAV的分类地位
1.3 DHAV病原学特性
1.4 DHAV分子生物学特性
1.5 DHAV诊断方法的研究
1.6 截短基因的表达
2 研究目的与意义
材料方法
1 试验材料
1.1 毒株、动物、质粒和血清
1.2 主要试剂
1.3 主要仪器
1.4 主要培养基和溶液的配置
2 方法
2.1 鸭甲型肝炎病毒的增殖与纯化
2.2 VP0、VP1蛋白的分段设计与引物合成
2.3 VP0、VP1截短基因的克隆
2.4 重组表达质粒的构建
2.5 重组质粒的诱导表达及蛋白的纯化
2.6 间接ELISA检测方法的建立
2.7 VP0、VP1截短蛋白多克隆抗体的制备
2.8 夹心ELISA检测方法的建立
试验结果
1 鸭甲型肝炎病毒(DHAV-I)的浓度测定
2 VP0、VP1截短基因的克隆表达
2.1 VP0、VP1基因RT-PCR的扩增结果
2.2 VP0F1-3、VP1F1-2基因和VP0、VP1截短基因扩增结果
2.3 pET28a-VP0/VP1(截短)重组表达质粒的鉴定
2.4 截短蛋白诱导表达最佳条件的摸索及表达形式的鉴定
2.5 可溶性截短蛋白的纯化及浓度的测定
2.6 截短蛋白的Western blot结果
3 鸭肝炎病毒VP0截短蛋白间接ELISA检测方法的建立
3.1 VP0截短蛋白最佳包被浓度和鸭血清稀释度的确定
3.2 最佳包被条件的确定
3.3 最佳封闭剂和封闭时间的确定
3.4 血清最佳作用时间的确定
3.5 酶标二抗最佳工作浓度和最佳作用时间的确定
3.6 最佳显色时间的确定
3.7 阴阳性临界值的确定
3.8 特异性试验
3.9 敏感性试验
3.10 重复性试验
3.11 包被抗原保存期试验
4 VP0、VP1截短蛋白多克隆抗体的制备
4.1 VP0、VP1截短蛋白多克隆抗体效价的测定
4.2 VP0、VP1截短蛋白多克隆抗体浓度的测定
5 夹心EUSA检测方法的建立
5.1 捕获抗体的确定
5.2 最佳封闭剂和封闭时间的确定
5.3 捕获抗体和检测抗体最佳浓度的确定
5.4 酶标二抗最佳稀释度的确定
5.5 最佳抗原、鸭多抗和酶标二抗最佳作用时间的确定
5.6 最佳显色时间的确定
5.7 阴阳性临界值的确定
5.8 特异性试验
5.9 重复性试验
讨论
1 VP0、VP1的截短表达
2 VP0、VP1截短蛋白的分析
3 间接ELISA检测方法
4 夹心ELISA检测方法
结论
参考文献
致谢