超顺磁氧化铁标记对大鼠脂肪干细胞内IRPs/IREs结合活力与铁含量的关联研究

摘要

研究背景： 随着基础实验医学的发展，干细胞移植技术也经历着日新月异的变化;其在人体多种疾病的治疗，比如堵塞血管的再通，受损组织的修复，以及糖尿病的移植治疗等等方面，前景十分的诱人。因此，近年来，干细胞研究愈发成为实验医学界的研究热点。 目前，在临床应用中，主要有以下两种干细胞的应用性较好:1、骨髓间充质干细胞(Bone Marrow Mesenchyme Stem Cells，BMSCs);2、胚胎干细胞(Embryonic Stem Cells，ESCs)。但是，其两者，在具备一定的临床应用价值的同时，都具有较显著的局限性:1、骨髓间充质干细胞具有来源比较不足、提取相对困难的缺点;2、胚胎干细胞由于是一种来源于异体的干细胞，其不可避免的具有免疫排斥反应;而且，胚胎干细胞在使用过程中，还不可避免地涉及到伦理学等种种问题。所以，急需找到一种来源充分、取材方便、且患者容易接受的干细胞来源，以使干细胞移植在临床应用方面，取得长足的进展与突破。 在2001年，Zuk等人研究宣布，从人体抽脂术所提取的脂肪组织悬液中，经过一定的不太繁杂的实验步骤，能够成功地分离提取出一种细胞:这种细胞具有干细胞的生物学特性，当时称之为脂肪间充质干细胞(AdiposeTissue-Derived Mesenchymal Stem Cells，ADMSCs)，如今简称其为脂肪干细胞(Adipose Tissue-Derived Stem Cells，ADSCs)。脂肪干细胞的发现，打开了干细胞移植研究的一扇新窗户，为临床应用的干细胞来源提供了新的选择与希望。 干细胞移植入受试者体内后，及时和准确地了解细胞在受试者体内的迁徙、归巢、增殖以及分化等情况，非常有助于评估移植治疗的效果、对移植方法的优化以及对移植窗口期行更合适的选择。近年来，国内、外众多研究者使用超顺磁氧化铁（Supraparamagnetic Iron Oxide，SPIO）对移植的干细胞进行体外标记;超顺磁氧化铁实为一种磁共振阴性对比剂，经其标记后，能够借助磁共振成像(Magnetic Resonance Imaging，MRI)在体、无创、动态、实时地对移植细胞进行活体示踪成像，根据靶组织与器官内部的磁共振信号改变，可以判断移植干细胞在体内的迁徙、归巢以及增殖等情况。 诚然，SPIO标记干细胞，能够对标记细胞行体外示踪，但是，其对标记细胞最直接的影响就是引起细胞内的铁超载。研究证实，SPIO标记细胞后，细胞体内的铁浓度较未标记时的浓度增加数十倍甚至数百倍。铁，是细胞体内的一种非常重要的微量元素，它是维持细胞的增殖、生长以及机能活动的一种不可或缺的重要物质，它在细胞体内的电子传递、DNA合成以及氧气的运输等过程中，具有着举足轻重的作用。对干细胞行SPIO铁标记后，细胞内铁含量的时间-浓度关系，即铁标记后，细胞内的铁含量随时间的变化关系，未有研究明确涉及，有必要阐明此两者关系。 干细胞移植治疗的主要目的，是将干细胞移植到特定的靶器官或组织内，使用相应的技术手段，使其按照预想地程序分化成特定的组织细胞，执行特定器官或组织的相应功能。所以，要求SPIO在细胞内的停留应该能够持续足够的时间，让使用MRI对干细胞行示踪观察时，MRI能够准确、全面地判断移植干细胞在体内的各种情况，并对移植疗效进行精确评估。有研究证实，SPIO标记干细胞后，MRI对其行示踪观察的有效时间可长达21天。所以，有必要阐明SPIO标记干细胞后，细胞内铁含量，能否被MRI作定性、定量分析，这也是对移植细胞在体示踪的关键。 铁调节蛋白/铁反应元件系统（Iron Regulatory Proteins/Iron ResponsiveElements System，IRPs/IREs系统）是细胞体内一种非常重要的调节系统，它能够维持细胞体内的铁稳态。IRPs/IREs系统包括:铁蛋白(Ferritin，Fn)、转铁蛋白受体(Transferrin Receptor, TfR)以及铁调节蛋白(Iron Regulatory Proteins，IRPs)，三者相互作用，共同维持细胞内的铁稳态;其中Fn和TfR的表达，均受到IRPs在转录后水平上的调控。IRPs则通过与TfR和Fn mRNA上的高度保守的非翻译区(Untranslated Region，UTR)作用，以实现调控细胞内铁稳态的功能。TfR和FnmRNA的UTR与IRPs相结合的位点被称为铁反应元件(Iron Response Elements，IREs)。IRPs/IREs对细胞内铁的基本调控机理如下:当细胞内铁超载时，(1) IRPs与TfR mRNA3'端UTR的IREs（TfR有5个IRE）结合活力下降或者不结合，导致TfR mRNA的不稳定，更易受到核酸酶的攻击从而发生降解，从而导致转铁蛋白受体翻译水平的下降，细胞摄取铁的减少。(2) IRPs与Fn mRNA5'端UTR的IRE(Fn有一个IRE)结合活力下降或者不结合，导致Fn mRNA的翻译增加，则铁蛋白的含量增多，从而螯合细胞质中的游离铁，细胞内过多的游离铁被转化为铁蛋白从而被封闭起来，得以维持了细胞内的铁稳态，降低了游离铁对细胞的毒性作用;相反的，如果细胞内的铁浓度过低时，则执行相反的调控程序。 那么，SPIO标记干细胞致细胞内铁超载数十倍甚至百倍，细胞内铁浓度的急剧升高，细胞内IRPs/IREs系统中的各个蛋白的蛋白表达情况呈现出怎么样的动态变化？铁超载后，对IRPs与IREs的结合活力存在何种影响，即细胞内铁浓度与IRPs与IREs的结合活力是否存在着“剂量—-效应”关系？目前亦未见研究报道。 本研究使用转染剂左旋多聚赖氨酸(Poly-L-Lysine，PLL)介导SPIO标记大鼠ADSCs，运用电感耦合等离子体质谱仪(Inductively Coupled Plasma MassSpectrometry，ICP-MS)及MRI定量检测标记后干细胞不同时间点的铁含量，并初步探讨SPIO标记对干细胞IRPs与IREs的结合活力的影响。 研究目的： 1.探讨PLL介导SPIO标记大鼠ADSCs后，对干细胞内铁浓度的影响。 2.初步探讨PLL介导SPIO标记大鼠ADSCs后，MRI扫描检测标记干细胞的可行性。 3.探讨PLL介导SPIO标记大鼠ADSCs后，对于细胞体内的转铁蛋白受体和铁蛋白的蛋白表达水平的影响，以及细胞内铁超载对IRPs与IREs的结合活力的影响。 材料与方法： 1.大鼠ADSCs的分离、培养以及传代 取3周至4周龄、雄性SD大鼠，无菌条件下切开腹股沟区皮肤，切取皮下脂肪组织，冷PBS洗涤3至4遍后，剪成颗粒状，并用0.25％Ⅱ型胶原酶消化30-45分钟，离心(1500 rpm，10 min)，弃上清液，用全培养液(含10％胎牛血清的低糖DMEM)重悬、接种，培养条件如下:饱和湿度、37℃、5％ CO2的标准环境。24小时后，原代培养细胞行第一次换液，以后每3天换液，贴壁细胞铺满瓶底的70％-80％时，进行传代培养。 2.大鼠ADSCs的鉴定（干细胞表面抗原的检测） 传至P4代的大鼠脂肪干细胞，吸去细胞培养液;加入5ml PBS洗去残留培养基，弃去PBS（重复二次）;加入1.5 ml0.25％胰酶，在显微镜下观察细胞消化情况，在大部分细胞开始变小时，弃去胰酶，加入5ml PBS吹打，吸出PBS，置于离心管中，再加入1ml PBS吹打，吸出PBS，置于离心管中，1000 rpm离心5min;弃去PBS，加入600ul PBS，吹打，使细胞均匀悬浮，平均分成6管，其中1管做为空白对照;每管分别加入5ul荧光素标记的抗体(CD29、CD31、CD44、CD45)，37℃下避光孵育30 min;离心(1000rpm，5 min)，弃上清;加入1ml PBS，将细胞吹打均匀，1000 rpm离心5min，弃上清（重复二次）;每管加入200ul PBS;上机检测。 3.SPIO标记大鼠ADSCs，电感耦合等离子体质谱仪(ICP-MS)检测细胞内铁含量 本实验使用的SPIO试剂（原始浓度为28 mg/ml）。SPIO和PLL加入无血清低糖培养基中，室温下，置于摇床摇晃30分钟混匀，待P2代有贴壁干细胞且铺满瓶底近80％-90％的培养瓶时，加入上述含SPIO及PLL培养基，再加入胎牛血清（终浓度10％）（SPIO终浓度为50μg/mL，SPIO/PLL为1∶0.03），在标准环境下（饱和湿度、37℃、5％ CO2）培养。 未标记细胞及共培养12小时以内细胞（时间点分别为:0、2、4、8、12小时），在相应时间点，取标记干细胞，弃培养液，用PBS洗涤3次以去除残余SPIO标记液，用0.25％胰酶消化细胞，加入血清终止消化，离心(1200 rpm，3分钟)。弃除上清液，用PBS重悬细胞，计数板行细胞计数，调整至1×106个/ml。取1mL细胞悬液于15 mL离心管，2％硝酸溶液6 mL充分消化溶解。电感耦合等离子体质谱仪(ICP-MS)定量分析铁含量。 测量时间点为超过12小时的细胞（16小时、1天、2天、4天、7天、14天、21天、28天），在共培养12小时后弃含SPIO培养液，冷PBS洗涤三次以去除残余SPIO及胎牛血清，加入10％全培养液继续培养，符合传代标准时可传代，在相应时间点按照上述步骤操作。ICP-MS测量标记细胞内铁含量。 4.SPIO标记大鼠ADSCs，MRI检测细胞内铁浓度 4.1磁共振扫描参数 磁共振扫描采用3.0T GE超导型磁共振扫描仪，头颅线圈。受检EP管装入自制容器内（灌满10％硫酸铜溶液）。行T2*WI扫描，并获取R2*mapping图。快速梯度回波T2加权像(FAST GRE T2*WI):行冠状位扫描，TR200 ms，TE2.2ms，翻转角Flip angle60°，层厚2mm，层间距0mm，矩阵256×256，NEX10次信号采集。FOV15 cm。 4.2标准浓度-磁共振扫描 配制Fe标准浓度的SPIO溶液:50 ug/ml、40 ug/ml、30 ug/ml、25 ug/ml、20 ug/ml、15 ug/ml、10 ug/ml、5 ug/ml、2.5 ug/ml、1ug/ml。以上浓度溶液各取1ml，分装于2 ml容量的EP管内。 将各标准浓度SPIO溶液的EP管放入自制容器内，灌满硫酸铜溶液(10mmol/l)，行MRI扫描，获取T2*值及R2*值。R2*值与浓度拟合直线，获得直线回归方程。 4.3 SPIO标记细胞-磁共振扫描 在有贴壁干细胞(P2代)且铺满瓶底约90％的培养瓶内，加入含SPIO的标记液10 ml，在标准环境下培养（饱和湿度、37℃、5％ CO2）。 共培养12小时以内细胞（时间点分别为:2、4、8、12小时），在相应时间点，取标记干细胞:弃除培养液，用冷PBS洗涤3次以去除残余SPIO标记液，用0.25％胰酶消化细胞，加入血清终止消化，离心（1200 rpm，3分钟）。弃除上清液，用冷PBS重悬细胞，计数板行细胞计数，调整至2×106个细胞/ml。取0.5ml细胞悬液，加入0.5ml的8％的明胶溶液，充分混匀，稍待片刻，等气泡升起，然后放入冰块中让其冷却、凝固。最终浓度为1×106个细胞/ml。 测量时间点为超过12小时的细胞（16小时、1天、2天、4天、7天、14天、21天、28天），在共培养12小时后弃SPIO标记液，冷PBS洗涤三次以去除残余SPIO，加入10％全陪养液继续培养，符合传代标准时予以传代，在相应时间点按照上述步骤操作。 将SPIO标记后不同时间点提取细胞的EP管放入特制容器内，灌满硫酸铜

目录

摘要

前言

第一章 大鼠脂肪干细胞的获取、培养以及鉴定

第一节 材料与方法

第二节 实验结果

第三节 讨论

第四节 小结

第二章 电感耦合等离子体质谱仪及MRI定量分析大鼠脂肪干细胞超顺磁氧化铁标记后细胞内铁含量

第一节 材料与方法

第二节 实验结果

第三节 讨论

第四节 小结

第三章 超顺磁氧化铁标记对大鼠脂肪干细胞内铁蛋白和转铁蛋白受体的蛋白表达水平的影响，以及对IREs／IRPs结合活力的影响

第一节 材料与方法

第二节 实验结果

第三节 讨论

第四节 小结

参考文献

中英文缩略词

攻读学位期间成果

致谢

声明

统计学证明