基于量效色卡的气滞胃痛颗粒促胃肠动力质量控制方法

摘要

基于量效色卡的气滞胃痛颗粒促胃肠动力质量控制方法，所述质量控制方法通过气滞胃痛颗粒指纹图谱的建立、气滞胃痛颗粒促胃肠动力作用药效评价，评价了气滞胃痛颗粒质量与药效相关性，建立量效关系方程，成功构建了气滞胃痛颗粒促胃肠动力作用量效色卡，实现了通过检测气滞胃痛颗粒中特定成分相对峰面积，即可将其促胃肠动力药效以“色卡”形式直观反映出来，可用于评价气滞胃痛颗粒发挥促胃肠动力作用的程度及其质量。

说明书

技术领域

本发明涉及药物质量控制方法，尤其涉及一种用“色卡”软件直观反映量效关系的气滞胃痛颗粒促胃肠动力质量控制方法。

背景技术

气滞胃痛颗粒由柴胡、延胡索（炙）、枳壳、香附（炙）、白芍、炙甘草6味中药制成，柴胡、香附、枳壳具有很好的理气止痛作用，柴胡能疏肝解郁、升阳提气，香附能行气解郁、调经止痛，常用于治疗肝气郁滞所至的脘腹饱满、胸肋胀痛等症，枳壳能理气、宽胸行滞消积，对胸胁脘痛、食积不化，胸膈痞满有很好的治疗作用。甘草可以缓解气胀疼痛并能补气和中。延胡索是活血化瘀、行气止痛之妙品。因此气滞胃痛颗粒具有舒肝行气、和胃止痛的功效,在临床上可用于治疗肝郁气滞，胸痞胀满，胃脘疼痛。同时王韶明等研究证明了，应用气滞胃痛颗粒治疗功能性消化不良的疗效较好；孙福营等人的临床研究表明，气滞胃痛颗粒可明显改善胃轻瘫患者胃肠蠕动功能，且临床上多采用促进胃肠蠕动的方法治疗功能性消化不良及胃轻瘫，气滞胃痛颗粒有着良好的促胃肠动力作用。

中药制剂质量控制一直是困扰中药制剂质量监控和走向国际市场的难点和热点问题，也是中药现代化的重要基础和关键。指纹图谱技术的出现，为成分复杂的中药制剂的质量检测带来了希望，然而，指纹图谱检测方法，虽然分析方法先进，但其脱离成分的有效活性和安全活性并且无法表达药效信息，所以大多数研究人员仅把它作为一种简单的质量鉴别手段。

目前，对气滞胃痛颗粒的质量控制已进行了较多的研究，申请人前期已针对气滞胃痛颗粒的质量控制方法进行了专利保护（气滞胃痛颗粒全时段多波长融合指纹图谱质量控制方法，专利号201210223306.4），然而单纯的质量控制方法仅从其化学成分上对其进行规范，而这些化学成分是否与其药效相关并不可知，故本专利在其基础上，针对气滞胃痛颗粒促胃肠动力药效，建立了一种基于“量效色卡”的气滞胃痛颗粒促胃肠动力质量控制方法，从而真正控制有效成分质量。

发明内容

针对上述问题，基于“量效色卡”的气滞胃痛颗粒促胃肠动力质量控制方法，通过该方法可以应用高效液相色谱法检测的结果直接评价气滞胃痛颗粒发挥促胃肠动力作用的药效，为中药制剂质量控制及应用开辟新的思路。

为实现本发明的上述目的，本发明采用如下技术方案。

本发明提供一种基于“量效色卡”的气滞胃痛颗粒促胃肠动力质量控制方法，具体步骤为。

步骤一、气滞胃痛颗粒指纹图谱的建立。

供试品溶液的制备：气滞胃痛颗粒中6味药材柴胡、延胡索、枳壳、香附、甘草均按0～10g，白芍按0～15g对用量进行20次拉丁超立方随机抽取，得到20个不同比例的药材配伍组，将各个配伍组药材混匀，置圆底烧瓶中，20倍重量水回流提取2h，滤过，挥干，定容至250mL，即得。取2mL供试品溶液，加入对乙酰氨基酚对照品200μL（浓度为0.1240mg/mL），作为内标液。其余供试品溶液置水浴锅中挥干，计算出膏率后，留作促胃肠动力药效学实验用。

色谱条件：色谱柱AgilentTC-C18（4.6mm×250mm，5μm）；流动相0.2‰甲酸水（A）-乙腈（B）；流速1.0mL·min^-1；柱温为25℃；检测器波长230nm，254nm，283nm，365nm；进样量15μL；

流动相梯度洗脱参数为：

时间0min、流动相A95%、流动相B5%；

时间10min、流动相A90%、流动相B10%；

时间61min、流动相A63%、流动相B27%；

时间70min、流动相A60%、流动相B40%；

时间90min、流动相A50%、流动相B50%。

供试品全时段四波长融合图谱建立：取2mL供试品溶液，加入200μL对乙酰氨基酚作为内标液（浓度为0.1240mg/mL）。以对乙酰氨基酚为内标物，采用高效液相色谱法，利用二极管阵列（DAD）检测器，建立20个配伍组的指纹图谱，采用数据处理软件对210nm，230nm，254nm，283nm，365nm四个波长图谱数据进行处理，获得同时反映四个波长信息的全时段四波长融合图谱和一组图谱文件，并确定38个共有峰。

步骤二、气滞胃痛颗粒促胃肠动力作用药效评价。

MTT药效检测法对药效进行检测，测定细胞上清中MTT增值率、cGMP含量和NO含量，采用层次分析法，计算药效综合评分；

所述含药血浆的制备方法：将清洁级SD大鼠100只（200~220g），随机分为20组，每组5只。配伍组灌胃给予拉丁超立方设计20组不同配比药材的混悬溶液（灌胃量=各组生药量×出膏率×70kg×0.018/大鼠体重），每日两次，每次间隔12h，连续3d。大鼠取血前12h禁食不禁水，末次灌胃1h后，无菌摘取大鼠眼球取血适量，置2mL离心管中，静置30min，于高速离心机中，3000r·min^-1离心15min，无菌分离血清，合并同组血清，混匀。经56℃、30min灭活处理后，0.22μm微孔滤膜过滤除菌，置-20℃保存备用；

所述MTT药效检测方法：大鼠小肠平滑肌细胞按常规贴壁细胞培养法接种于含体积分数为15%进口胎牛血清的DMEM高糖培养基中，在温度为37℃、5%CO₂、饱和湿度的条件下常规培养。3-4天换液并传代一次，取对数生长期、生长状态良好的细胞1瓶，经PBS清洗，用0.25%胰蛋白酶消化，待细胞趋于变圆用含15%进口胎牛血清的DMEM培养液冲洗吹打细胞，制成单细胞悬液。细胞计数板上计数，细胞浓度=四大格细胞总数×10⁴/4个/mL；加培养基稀释至浓度为1×10⁵个/mL，接种于96孔培养板，每孔100μL（除空白调零孔外），继续培养约12h，待细胞贴壁完全。设空白调零组（只加培养基，酶标仪调零用）、空白对照组（只加细胞），和给药试验组（分别加入20个配伍组的15%含药血浆），每组设5个复孔。在37℃、5%CO₂培养箱中继续培养24h后，每孔吸取细胞上清液70μL，置-20℃保存，留作cGMP、NO试剂盒检测用，每孔补加70μL培养液，继续培养3h后，每孔加入20μL（5mg/mL）MTT，继续培养4h后吸净孔内上清液，每孔加入150μLDMSO。用酶标仪振摇10min，使紫色结晶完全溶解，在492nm处扫描，测定吸光值（OD）。

步骤三、气滞胃痛颗粒质量与药效相关性评价。

利用灰色关联分析方法，对20个药材配伍组38个共有峰的量化峰面积与促胃肠动力药效进行关联度分析，得到20个色谱峰，排除色谱峰峰面积低于100的色谱峰，筛选出11个与药效相关的共有峰。

步骤四、气滞胃痛颗粒促胃肠动力作用“量效色卡”的构建。

计算筛选出的11个与药效相关共有峰的相对保留时间、相对峰面积，确定峰归属，计算与药效相关的各色谱峰的相对峰面积与关联度的乘积，并加和，以最大值为9换算至百分内，建立量效关系方程：Y_药效评分=（0.9425X₁+0.9419X₂+0.9414X₃+0.9407X₄+0.9255X₅+0.9245X₆+0.9138X₇+0.9135X₈+0.9072X₉+0.9071X₁₀+0.9015X₁₁）/9×100，其中Y_药效评分为气滞胃痛颗粒促胃肠动力的药效评分，X_1-11分别为11个色谱峰的相对峰面积，应用VisualBasic（VB）编程语言对以上过程进行程序设计，编制“量效色卡”软件。软件色卡会显示6个均分的颜色区域（红、橙、黄、绿、蓝、紫），共100分，以指针指示气滞胃痛颗粒最终药效评分。

将气滞胃痛颗粒11个促胃肠动力有效成分的高效液相色谱检测结果输入“量效色卡”软件，经待检药品选择、内标物保留时间与峰面积设定、读取数据、标准药效数据选择、读取药效数据、促胃肠动力药效检测过程，即可通过指针直观反映气滞胃痛颗粒促胃肠动力的药效。

与现有技术相比，本发明的积极效果在于：

（1）本发明公开了一种将气滞胃痛颗粒有效成分含量与其促胃肠动力作用相关联的方法。中药指纹图谱虽然能够标示中药中的多种化学成分，可以在整体上控制中药质量，但其所体现的化学成分是否为药效成分以及与药效的相关程度并不明确。因此，单纯利用指纹图谱来评价中药质量的优劣还存在一定的局限性。本发明通过质量与药效相关性研究，阐明了气滞胃痛颗粒指纹图谱特征与其促胃肠动力作用药效的相互关系，从而使构建的气滞胃痛颗粒促胃肠动力药效指纹图谱更有针对性的控制气滞胃痛颗粒的质量。

（2）本发明首次将气滞胃痛颗粒促胃肠动力药效的综合评分，以“量效色卡”的形式表现出来。针对指纹图谱和药效作用的相关性，建立相应的量效关系方程，在此基础上开发相应的软件，将气滞胃痛颗粒促胃肠动力的药效通过“量效色卡”这一直观的形式表现出来，实现对中药药效的“可视化”预测。

（3）本发明首次应用“量效色卡”对10批气滞胃痛颗粒促胃肠动力作用进行了评价，即通过输入指纹图谱数据，直接计算出该药的药效作用，此方法操作简便，可以实现对药效作用的预测和计算，进而评价气滞胃痛颗粒的质量，将此方法应用于企业实际生产，通过测定有效成分含量即可直观反映其药效，对于企业保障药品质量，稳定临床疗效，树立良好口碑意义重大，具有较好的实际应用价值。

附图说明

图1为气滞胃痛颗粒中六个单味药配伍组全时段多波长信息融合色谱图，其中S为对乙酰氨基酚。

图2为促胃肠动力体外药效指标评价目标树图。

图3为色卡软件操作界面。

图4为1号气滞胃痛颗粒指纹融合图谱。

图5为2号气滞胃痛颗粒指纹融合图谱。

图6为3号气滞胃痛颗粒指纹融合图谱。

图7为4号气滞胃痛颗粒指纹融合图谱。

图8为5号气滞胃痛颗粒指纹融合图谱。

图9为6号气滞胃痛颗粒指纹融合图谱。

图10为7号气滞胃痛颗粒指纹融合图谱。

图11为8号气滞胃痛颗粒指纹融合图谱。

图12为9号气滞胃痛颗粒指纹融合图谱。

图13为10号气滞胃痛颗粒指纹融合图谱。

具体实施方式

1.实验材料。

1.1药材与试剂：柴胡、白芍、甘草、延胡索、枳壳、香附药材（辽宁本溪三药有限公司）；对乙酰氨基酚对照品（中国药品生物鉴定所，批号：018-8905）；乙腈（色谱纯；美国TEDIA公司）；甲酸（色谱纯；天津市科密欧化学试剂有限公司）；气滞胃痛颗粒（辽宁华润本溪三药有限公司，批号：1号：20110710；2号：20110903；3号：20110413；4号：201106035号：20110525；6号：20111224；7号：20111218；8号：201112239号：20110910；10号：20110713）；大鼠一氧化氮（NO）试剂盒（碧云天生物技术研究所）；大鼠环磷酸鸟苷（cGMP）试剂盒（上海源叶生物科技有限公司）；大鼠胃动素（MTL）试剂盒（上海朗顿生物科技有限公司，批号：201501019）；大鼠胃泌素（SOD）试剂盒（上海朗顿生物科技有限公司，批号：201501019）；左旋精氨酸（上海源叶生物科技有限公司，批号：JN1114RA14）；水为超纯水。

1.2仪器与设备：Agilent-1290高效液相色谱仪（美国安捷伦科技公司）；ACCULABALC-11C.4型电子天平（德国赛多利斯集团）；DZTW型调温电热套（北京市永光明医疗仪器厂）；SHZ-DⅢ型循环水式真空泵（巩义市予华仪器有限责任公司）；Milli-Q超纯水处理装置（美国Millipore公司）。

1.3细胞株：大鼠原代小肠平滑肌细胞，购自江阴齐氏生物科技有限公司。

1.4实验动物：健康清洁级SD大鼠，体重（200~220g），雌性，由大连医科大学实验动物中心提供，动物许可证号SCXK（辽）2011-0002。动物饲养于空调室内，室温20±2℃，相对湿度50%-60%，颗粒饲料喂养，自由饮水。

2.实验方法与结果。

2.1气滞胃痛颗粒指纹图谱研究。

2.1.1供试品溶液的制备：应用Isight软件气滞胃痛颗粒中6味药材柴胡、延胡索、枳壳、香附、甘草按0～10g，白芍按0～15g对用量进行20次拉丁超立方随机抽取，得到20个不同比例的药材配伍组，结果见表1。将各个配伍组药材混匀，置圆底烧瓶中，20倍重量水回流提取2h，滤过，挥干，定容至250mL，即得。取2mL供试品溶液，加入对乙酰氨基酚对照品200μL（浓度为0.1240mg/mL），作为内标液。其余供试品溶液置水浴锅中挥干，计算出膏率后，留作促胃肠动力药效学实验用。

表1拉丁超立方抽样结果（单位：g）。

水平柴胡香附白芍枳壳延胡索甘草13.78.511.05.82.97.226.79.213.01.53.65.235.22.511.32.71.14.841.54.08.56.77.22.455.75.74.04.24.87.666.06.34.87.21.76.277.58.27.30.50.59.783.41.41.69.76.62.694.77.713.61.69.23.7101.37.110.03.76.25.5118.50.89.29.40.51.0128.50.512.36.02.33.0132.29.514.42.37.79.2140.13.23.00.14.16.8154.13.77.63.18.70.2169.22.25.58.78.28.5170.86.76.35.05.51.5182.71.60.28.29.58.1199.65.10.87.65.24.1207.14.63.44.53.01.2

2.1.2供试品全时段四波长融合图谱建立。

（1）色谱条件：色谱柱AgilentTC-C18（4.6mm×250mm，5μm）；流动相0.2‰甲酸水（A）-乙腈（B）；流速1.0mL·min^-1；柱温为25℃；检测器波长230nm，254nm，283nm，365nm；进样量15μL。流动相梯度洗脱参数见表2。

表2流动相梯度洗脱参数。

时间（min）流动相A（%）流动相B（%）0955109010616327706040905050

（2）供试品全时段四波长融合图谱建立。

以对乙酰氨基酚为内标，采用高效液相色谱法，通过DAD检测器对20个配伍组色谱图进行紫外全波长（200-400nm）扫描，根据扫描结果确定融合波长为230nm，254nm，283nm，365nm，建立20个配伍组的指纹图谱，采用使用Matlab软件编程对230nm，254nm，283nm，365nm四个波长图谱数据进行处理，获得20个同时反映四个波长信息的全时段四波长融合图谱和一组图谱文件，并确定38个共有峰。以配伍7为例，全时段多波长信息融合色谱图见图1。

（3）色谱峰归属分析。

以气滞胃痛颗粒中六个单味药材所含化学成分为基础，将配伍组中的各个色谱峰归属其药材来源，并进一步归属其化学成分，使有效成分更加明确，配伍组共有峰归属见表3。

表3配伍组共有峰归属。

峰号保留时间（min）药材归属色谱峰定性17.60延胡索28.13白芍没食子酸310.03延胡索413.72514.95香附618.21720.40白芍氧化芍药苷821.05香附922.52白芍芍药苷亚硫酸酯1028.13白芍芍药内酯苷1129.28枳壳1231.23白芍芍药苷1336.63枳壳圣草次苷1438.19白芍芍药内酯苷类似物1539.07甘草芹糖基甘草苷1640.39甘草甘草苷1741.52白芍1842.42枳壳新圣草苷1946.59枳壳芸香柚皮苷2047.20枳壳2149.23枳壳柚皮苷2250.79枳壳橙皮苷2353.37枳壳新橙皮苷2456.10枳壳2557.03甘草2658.46枳壳2759.21甘草异甘草苷2862.19甘草甘草素2967.143068.24枳壳枸橘苷3171.59白芍苯甲酰芍药苷3272.74白芍3373.74柴胡6 -->3474.63甘草3576.85甘草异甘草素3677.49香附3779.32甘草甘草酸单铵盐3881.18柴胡柴胡皂苷A

应用Matlab软件编程，将20个配伍组色谱图进行全时段多波长信息融合，得到20个配伍组中各个色谱峰峰面积的数据，将色谱峰的峰面积转化成化学成分含量（每天给大鼠灌胃的药物中某化学成分的含量），与体外药效数据进行灰色关联分析。

2.2气滞胃痛颗粒促胃肠动力作用药效评价。

2.2.1含药血浆的制备。

将清洁级大鼠100只（200~220g），随机分为20组，每组5只。配伍组灌胃给予按表1拉丁超立方设计20组不同配比药材的混悬溶液（灌胃量=各组生药量×出膏率×70kg×0.018/大鼠体重），每日两次，每次间隔12h，连续3d。大鼠取血前12h禁食不禁水，末次灌胃1h后，无菌摘取大鼠眼球取血适量，置2mL离心管中，静置30min，于高速离心机中，3000r·min^-1离心15min，无菌分离血清，合并同组血清。经56℃、30min灭活处理后，0.22μm微孔滤膜过滤除菌，置-20℃保存备用。

2.2.2MTT药效检测方法。

大鼠小肠平滑肌细胞按常规贴壁细胞培养法接种于含体积分数为15%进口胎牛血清的DMEM高糖培养基中，在温度为37℃、5%CO₂、饱和湿度的条件下常规培养。3-4天换液并传代一次，取对数生长期、生长状态良好的细胞1瓶，经PBS清洗，用0.25%胰蛋白酶消化，待细胞趋于变圆用含15%进口胎牛血清的DMEM培养液冲洗吹打细胞，制成单细胞悬液。细胞计数板上计数，细胞浓度=四大格细胞总数×10⁴/4个/mL；加培养基稀释至浓度为1×10⁵个/mL，接种于96孔培养板，每孔100μL（除空白调零孔外），继续培养约12h，待细胞贴壁完全。设空白调零组（只加培养基，酶标仪调零用）、空白对照组（只加细胞），和给药组（分别加入20个配伍组的15%含药血浆），每组设5个复孔。在37℃、5%CO₂培养箱中继续培养24h后，每孔吸取细胞上清液70μL，置-20℃保存，留作NO、cGMP试剂盒检测用，每孔补加70μL培养液，继续培养3h后，每孔加入20μL（5mg/mL）MTT，继续培养4h后吸净孔内上清液，每孔加入150μLDMSO。用酶标仪振摇10min，使紫色结晶完全溶解，在492nm处扫描，测定吸光值（OD）。

MTT增殖率=（OD_试验组/OD_对照组-1）×100%。

2.2.3小肠平滑肌细胞上清液中cGMP和NO含量检测。

将细胞上清液，按cGMP和NO试剂盒说明书操作，用酶标仪测定OD值，计算各组cGMP和NO的含量。

2.2.4层次分析法确定权重系数。

2.2.4.1建立评价目标树。

对促胃肠动力体外药效这个总评价目标，通过MTT增值率、cGMP和NO含量3个次级目标来反映。这样建立起促胃肠动力体外药效指标评价目标树图，见图2。

2.3.4.2构成两两比较优先矩阵。

通过同一层次药效指标两两比较得到其相对重要性，并构成两两比较矩阵。目标树图各层次评分标准见表4。目标成对比较判断优先矩阵见表5。

表4目标树图各层次评分标准。

对比打分相对重要程度关联系数1同等重要两者对目标的贡献相同3略为重要根据经验一个比另一个评价稍有利5基本重要根据经验一个比另一个评价更为有利7确实重要一个比另一个评价更有利，且在实践中证明9绝对重要重要程度明显2，4，6，8两相邻程度的中间值需要折衷时采用

表5目标成对比较判断优先矩阵。

目标MTT增值率cGMP含量NO含量MTT增值率11/51/7cGMP含量511/2NO含量721

2.2.4.3初始权重系数计算公式。

按公式计算初始权重系数w_i^＇。

计算初始权重系数，同理得：w₂^＇=1.3572，w₃^＇=2.4101；

2.2.4.4归一化权重系数计算公式。

按公式计算归一化权重系数w_i。

计算归一化权重系数w₁=0.3057/（0.3057+1.3572+2.4101）=0.0751，同理得：w₂=0.3332，w₃=0.5917。

2.2.4.5权重系数随机一致性比率。

通过两个药效指标比较得到的矩阵表，由于主客观因素许多比较可能会得到不一致的结果，要安全达到判断一致性是非常困难的，所以允许在一致性上有一定的偏离，为此要进行一致性检验；

CR=CI/RI；

，矩阵的最大特征根，式中m为受检验的次目标数。

查找相应的平均随机一致性指标RI，见表6。

表6平均随机一致性指标RI表。

矩阵阶数123456789RI0.000.000.580.901.121.241.321.411.45

λ_max=3.0142；CI=(3.0142-3)/(3-1)=0.0071；CR=0.0071/0.58=0.012，CR<0.1；

当CR<0.1时，即认为3项指标优先比较矩阵满足一致性要求，所以其相应求得的权重有效，它可用在促胃肠动力体外药效结果优选的综合评分中。

2.2.5体外药效检测结果

各配伍组对胃肠平滑肌细胞的药效数据结果见表7。

表7各配伍组对胃肠平滑肌细胞的药效数据结果。

组别OD₄₉₂增值率(%)cGMP(nmol/L)cGMP抑制率NO(μM)NO抑制率综合评分空白组0.211-42.07-32.85--配伍10.39687.68^*19.0354.78^*22.5331.41^*43.42配伍20.29821.23^*31.0526.21^*24.1126.62^*26.08配伍30.28233.65^*18.4456.17^*19.2141.52^*45.81配伍40.24114.22^*21.9647.81^*14.4456.03^*50.15配伍50.32252.61^*16.4960.82^*19.1641.67^*48.87配伍60.32654.50^*15.5163.13^*17.7445.99^*52.34配伍70.46711.33^*33.1221.29^*27.1117.47^*18.28配伍80.422100.0^*16.6860.35^*17.4346.93^*55.39配伍90.23440.9^*30.427.74^*27.516.30^*21.96配伍100.25520.85^*17.8557.57^*16.6749.25^*49.89配伍110.41797.63^*14.3465.93^*14.2356.68^*62.84配伍120.40190.05^*15.3263.60^*18.0944.93^*54.54配伍130.461118.48^*18.2456.64^*25.9121.14^*40.28配伍140.32122.13^*31.8124.39^*29.689.65^*15.5配伍150.30444.08^*16.8859.88^*26.8618.23^*34.05配伍160.451113.74^*15.962.21^*15.7652.05^*60.07配伍170.486130.33^*26.6436.68^*15.0154.34^*34.57配伍180.565167.77^*24.3142.22^*17.5946.46^*54.16配伍190.516144.55^*24.6941.31^*19.5340.54^*48.61配伍200.662213.74^*20.7850.61^*19.8239.67^*56.39

注：与空白组比较：*P＜0.05

2.3气滞胃痛颗粒质量与药效相关性评价。

应用灰色系统理论建模软件（GTMS3.0）对20个不同比例药材组的38个共有峰的量化峰面积与气滞胃痛颗粒促胃肠动力药效进行关联度分析，选取关联度大于0.9的共有峰，结果见表8。

表8各共有峰与促胃肠动力药效相关性。

排序峰号关联度归属药材归属成分1200.9478枳壳2210.9425枳壳柚皮苷33.0.9419延胡索4230.9414枳壳新橙皮苷5220.9407枳壳橙皮苷6300.9378枳壳新枸橘苷7320.9303白芍8190.9255枳壳芸香柚皮苷9 -->980.9246香附10110.9245枳壳11150.9159甘草芹糖基甘草苷12340.9138甘草1340.913514260.9110枳壳15140.9105白芍芍药内酯苷类物1610.9085延胡索17290.907218130.9071枳壳新圣草苷19330.9018柴胡20160.9015甘草甘草苷

经灰色关联分析得到了气滞胃痛颗粒中与促胃肠动力药效关联较为密切的色谱峰，考虑到个别色谱峰峰面积较小，对相关药效贡献较小，针对以上结果进行了筛选，排除色谱峰峰面积低于100的色谱峰，最终得到与促胃肠动力药效相关的共有峰如下。

表9各共有峰与促胃肠动力药效相关性。

峰号关联度归属药材归属成分210.9425枳壳柚皮苷30.9419延胡索230.9414枳壳新橙皮苷220.9407枳壳橙皮苷190.9255枳壳芸香柚皮苷110.9245枳壳340.9138甘草40.9135290.9072130.9071枳壳新圣草苷160.9015甘草甘草苷

2.4量效色卡软件的程序设计

应用VisualBasic（VB）编程语言对色卡软件进行程序设计，以对乙酰氨基酚为内标，计算各色谱峰相对保留时间及相对峰面积，以相对保留时间确定峰归属，计算与药效相关的各色谱峰的相对峰面积与关联度的乘积，并加和，以最大值为9换算至百分内，建立量效关系方程：Y_药效评分=（0.9425X₁+0.9419X₂+0.9414X₃+0.9407X₄+0.9255X₅+0.9245X₆+0.9138X₇+0.9135X₈+0.9072X₉+0.9071X₁₀+0.9015X₁₁）/9×100。其中Y_药效评分为气滞胃痛颗粒促胃肠动力的药效评分，X_1-11分别为11个色谱峰的相对峰面积。最终得到气滞胃痛颗粒促胃肠动力的药效评分。

应用VB程序开发工具设计软件操作界面，以及评分输出方式。此项目VB工程共包含2个窗体，2个模块和1个用户控件，其中窗体包含欢迎界面和主要操作窗体，图3所示，主窗体中共有5个click事件和7个change事件，他们都被相应的程序设计语言所控制，由于仪器设备不同，同一色谱条件下谱峰的保留时间可能不同，因此本程序设计时采用手动输入内标峰的保留时间及峰面积，以避免由于仪器不同所导致的偏差。在2个模块中输入了程序所用到的公用的函数、过程、常数、自定义结构、全局变量等。图3所示，色卡被平均分为六个颜色区域（红、橙、黄、绿、蓝、紫），共100分，以指针指示气滞胃痛颗粒最终药效评分。通过待检测样品选择，导入待检测样品融合图谱数据，输入内标物保留时间和峰面积，读取待检测样品数据，待检测数据容量中显示待检测样品共有峰数量，选择标准药效数据，即筛选出的与促胃肠动力相关的11个共有峰的图谱数据，标准药效容量中显示为11，以标准药效数据中相对保留时间作为指标，通过量效关系方程读取待检测样品药效数据，最后检测促胃肠动力药效，即可通过指针指示分数直观反映气滞胃痛颗粒促胃肠动力的药效。

2.510批气滞胃痛颗粒指纹图谱。

2.5.1供试品溶液的制备。

取10个批次的气滞胃痛颗粒，各2.5g，混匀，研细，精密称取2.5g，置具塞锥形瓶中，精密加入蒸馏水100mL，密塞，称定重量，超声处理（功率250W，频率33kHz）60分钟，取出，放冷，再称定重量，用蒸馏水补足减失的重量，摇匀，滤过，精密吸取续滤液25mL，加在AB-8树脂柱（0.3-1.25mm，20g，内径1.5cm）上，用蒸馏水150mL洗涤，再用200mL95%乙醇洗脱，收集乙醇洗脱液，蒸干，残渣加20%乙腈使溶解并转移至10mL容量瓶中，加20%乙腈定容至刻度，摇匀，滤过，取续滤液即得，加入对乙酰氨基酚作为内标，终浓度0.02067mg·mL^-1。

2.5.2色谱条件。

同第一部分“2.1.2”项下色谱条件。使用Matlab软件编程，对4个波长下的指纹图谱进行多波长融合，融合结果见图4-13。

2.5.310批气滞胃痛颗粒药效评分。

将融合后的结果导出，按色卡软件操作过程操作，得到各组促胃肠动力药效评分，如表10所示。

表10各组药效评分及综合评分。

编号1号2号3号4号5号6号7号8号9号10号药效评分55.4566.0086.1387.9485.8973.5779.79109.8568.0965.38

2.610批气滞胃痛颗粒促胃肠动力体内药效验证。

2.6.1造模及给药。

将健康SD大鼠按体重随机分为12组，每组10只，分别为空白组、模型组、10批次气滞胃痛颗粒组，除空白组外，其余大鼠均腹腔注射L-精氨酸，剂量为第1日5g·kg^-1，第2-5日2.6g·kg^-1，加生理盐水后，调PH至7，与此同时，除空白组和模型组外，其余大鼠均灌胃给药0.15g·d^-1，连续5天，从第4天开始，禁食不禁水12小时。大鼠于第5天灌胃给药后1h，灌服半固体糊3mL（0.2%CMC-Na和5%炭末），30min后摘眼球取血，脱颈处死，结扎幽门和贲门，取出胃和小肠，称量胃的全重，沿胃大弯剪开胃体，洗去胃内容物后拭干，称胃净重，测小肠全长和黑色半固体糊前沿至幽门的距离，记录结果。

2.6.2气滞胃痛颗粒对胃残留率及小肠推进率的影响。

按如下公式计算胃残留率及小肠推进率，结果见表11。

胃残留率（%）=（胃全重-胃净重）/半固体糊重×100%

小肠推进率（%）=半固体糊在小肠中的推进距离/小肠全长×100%。

表11对胃排空及肠推进的影响（±S）。

组别样本量胃残留率（%）小肠推进率（%）空白组1023.65±5.62*83.21±4.77**模型组1039.70±3.5147.85±3.211号1031.10±3.7761.88±5.092号1029.38±5.1971.08±5.34**3号1022.87±3.37*76.36±4.90**4号1025.91±4.85*71.97±3.33**5号1014.60±4.00**63.47±2.046号1022.75±4.92*69.94±5.67*7号1019.20±4.40**62.33±4.888号1024.33±5.36*83.69±5.70**9号1037.33±4.0575.49±5.49**10号1028.31±4.0559.96±5.38

注：与模型组比较，*P＜0.05，**P＜0.01

2.6.3胃动素及胃泌素的测定

各组大鼠取血后，静置30min，3000r离心15min，分离血清，按胃动素及胃泌素试剂盒操作说明检测，结果如下。

表12对胃动素及胃泌素的影响（±S）。

组别样本量胃动素（ng·L^-1）胃泌素（ng·L^-1）空白组10263.98±7.34**271.88±7.61*模型组10201.90±3.55331.98±4.791号10229.16±6.04280.10±6.09*2号10191.32±4.90295.83±6.453号1022.87±3.37*76.36±4.90**4号1025.91±4.85*71.97±3.33**5号1014.60±4.00**63.47±2.046号10204.71±4.79283.49±5.97*7号10247.97±3.95**294.35±7.818号10233.99±4.28*280.80±6.88*9号10221.72±7.06330.25±7.3110号10239.69±3.21*290.91±5.88

注：与模型组比较，*P＜0.05，**P＜0.01

2.6.410批气滞胃痛颗粒促胃肠动力体内药效综合评价

以胃残留率、小肠推进率、胃动素（MTL）相对含量、胃泌素（GAS）相对含量为指标，对10批气滞胃痛颗粒促胃肠动力体内药效进行综合评价，按照评分公式：综合评分=[（1-给药组胃残留率/胃残留率_mas）+给药组小肠推进率/小肠推进率_mas+给药组MTL含量/MTL含量_mas+（1-给药组GAS含量/GAS含量_mas）]，各指标统计时，具有统计学差异者相对抑制率（或含量）赋予真实比值，不具有统计学差异者计分为0，结果见表13。

表13气滞胃痛颗粒促胃肠动力体内药效综合评分结果。

指标相对残留率相对小肠推率MTL相对含量GAS相对含量综合评分1号0000.150.152号0.210.85001.063号0.390.91102.34号0.310.860.970.162.35号0.6100.9801.596号0.390.8400.141.377号0.4900.9201.418号0.3510.870.152.379号00.9000.910号000.8900.89

应用“量效色卡”软件可以得到10批气滞胃痛颗粒促胃肠动力药效的评分，与药效实验综合评分结果相对比，经软件所得评分结果与药效评分结果基本一致，说明此软件可在一定程度上反应气滞胃痛颗粒的药效，能够用于气滞胃痛颗粒质量控制当中。