法律状态公告日
法律状态信息
法律状态
2019-01-01
授权
授权
2016-06-01
实质审查的生效 IPC(主分类):C12N1/20 申请日:20160114
实质审查的生效
2016-05-04
公开
公开
技术领域
本发明属于微生物技术领域,具体涉及一种菌制剂及其制备方法和应用。
背景技术
随着乳酸菌对人体健康有益作用机理的不断深入研究和揭示,乳酸菌产品越 来越受到消费者的重视。菌制剂以及经菌制剂发酵得到的发酵乳制品的关注度不 断得到提升,直投式菌制剂以及直投式酸奶发酵剂因其活力强、含菌量高、菌量 稳定,保存期长、耐储运,使用方便,发酵产品稳定等优点而成为了市场热点与 研发热点。作为提升发酵剂活力的关键工艺,冻干保护剂能有效防止细菌细胞死 亡,保证活菌量和延长菌种保藏期。
目前乳酸菌菌制剂可采用真空干燥、喷雾干燥、冷冻干燥等不同的方法进行 制备,而其中真空冷冻干燥比较常用且有优势,其基本原理是热力学相平衡理论: 即将欲保藏的微生物细胞悬浮液冻结后,在真空条件下使冰升华,最后达到干燥。 该方法主要是根据微生物生理、生化特点,使微生物的代谢不活泼,生长繁殖受 到抑制,达到休眠状态,以保特菌株原有特性。
真空冷冻干燥过程中影响乳酸菌发酵剂菌体存活率、发酵活力及贮藏稳定性 的主要因素有:培养基、培养条件、收获期、起始细胞浓度、冻干保护剂介质、 冷冻速度、干燥过程、水分活度、包装方式、保藏温度和复水条件等,其中冻干 保护剂是最为关键的因素。由于不同的保护剂对不同菌种的保护效果不同,如果 冻干工艺中保护剂选择不当,将导致菌体的存活率下降。
直投式发酵剂是指一系列高度浓缩和标准化的冷冻干燥发酵剂菌种,可直接 加入热处理的原料进行发酵,而无需对其进行活化、扩培等其他预处理工作。
发明内容
本发明提供了一种菌制剂,由植物乳杆菌(Lactobacillusplantarumsubsp. plantarum)CICCNO.6240和保护剂组成。
本发明所述植物乳杆菌CICCNO.6240,属于植物乳杆菌植物亚种,拉丁文 名称为Lactobacillusplantarumsubsp.Plantarum,在本发明申请日前就是已知的生 物材料。
本发明所述植物乳杆菌CICCNO.6240保藏于位于北京市朝阳区酒仙桥中 路24号院6号楼的中国工业微生物菌种保藏管理中心(ChinaCenterofIndustrial CultureCollection,CICC)。此外,本发明所述的植物乳杆菌CICCNO.6240同 时还保藏于其他的生物材料保藏中心,包括:保藏于中国科学院微生物研究所, 保藏编号AS1.2437;保藏于日本微生物菌种保藏中心,保藏编号JCM1149;保 藏于美国模式培养物集存库,保藏编号ATCC14917;德国微生物菌种保藏中心, 保藏编号DSM20174;日本发酵研究所,保藏编号IFO15981。
本发明所述植物乳杆菌CICCNO.6240在本发明申请日前可以通过国内外 商业渠道购买,如可向中国工业微生物菌种保藏管理中心(ChinaCenterof IndustrialCultureCollection,CICC)购买该菌株;向美国模式培养物集存库 (Americantypeculturecollection,ATCC)等机构购买。
具体的,本发明提供了一种菌制剂,该菌制剂由植物乳杆菌(Lactobacillus plantarumsubsp.plantarum)CICCNO.6240和保护剂组成;
所述菌制剂的保护剂为海藻糖、谷氨酸钠、蔗糖和脱脂乳粉,以重量百分比 计,每克菌制剂含有海藻糖4~4.1%、谷氨酸钠2.9~3%、蔗糖10~10.5%、脱脂 乳粉14.5~15%;
所述菌制剂每克含有植物乳杆菌(Lactobacillusplantarumsubsp.plantarum) CICC6240的活菌数为8×1012cfu/g~8.1×1012cfu/g。
优选的,以重量百分比计,本发明菌制剂每克含有海藻糖4.04%、谷氨酸钠 2.9%、蔗糖10.38%、脱脂乳粉14.84%;每克菌制剂含有植物乳杆菌(Lactobacillus plantarumsubsp.plantarum)CICCNO.6240的活菌数为8.08×1012cfu/g;
或者,优选的,以重量百分比计,本发明菌制剂每克含有海藻糖4.%、谷氨酸 钠3%、蔗糖10%、脱脂乳粉15%,其中每克菌制剂含有植物乳杆菌(Lactobacillus plantarumsubsp.plantarum)CICCNO.6240的活菌数为8.03×1012cfu/g。
本发明还提供落了上述优选菌制剂的制备方法,包括以下步骤:菌种活化, 扩大培养,离心收集菌体,加保护剂,分装,预冻,真空冷冻干燥,从而得到所 述发酵剂;其制备步骤还包括:对保护剂灭菌或除菌后,再加入菌体中。
具体的,上述优选菌制剂由以下步骤制备得到:
(1)取活化的植物乳杆菌(Lactobacillusplantarumsubsp.plantarum)CICC6240, 接种到10mL液体培养基中,37℃下静置培养18h,经两次扩大培养得种子培 养液;将种子培养液以4%的接种量接种增菌培养基中,37℃下静置培养18h;
(2)将菌液移入无菌离心管,以4000转/分钟的转速离心10min,弃上清液,用质 量体积浓度为0.9%的无菌生理盐水洗涤沉淀菌体后,以4000转/分钟的转速离 心10min,弃上清液,得乳酸菌菌泥;
(3)取海藻糖、蔗糖和谷氨酸钠,分别溶于蒸馏水,采用膜孔径为0.22μm的 滤菌器除菌,得海藻糖溶液、蔗糖溶液、谷氨酸钠溶液;取脱脂乳粉,溶于蒸馏 水,110℃下保温10分钟杀菌,得脱脂乳粉溶液;
(4)将步骤(2)制备得到的菌泥与步骤(3)制备的海藻糖溶液、蔗糖溶液、 谷氨酸钠溶液、脱脂乳粉溶液混合,混匀,得菌悬液;
(5)取步骤(4)制备的菌悬液分装入菌带塞的玻璃瓶中,-70℃下预冻2h,在 冻干条件为真空度5Pa、隔板加热温度20℃、冷阱温度-55℃的真空冻干机中 冻干,冻干时间30h,得冻干菌制剂。
本发明所述的菌制剂,优选为冻干剂,如冻干粉、冻干粉针等。
此外,本发明还提供了所述菌制剂作为直投式发酵剂的用途;可用途乳制品 等的发酵。
以及,本发明所述菌制剂用于制备降低胆固醇产品的用途;
同时,本发明还提供了使用所述菌制剂发酵得到的发酵产品,以及该发酵产 品制备降低胆固醇产品的用途;所述发酵产品包括发酵的乳制品。
本发明还提供了一种菌制剂的制备方法,该方法包括以下步骤:
(1)取活化的植物乳杆菌(Lactobacillusplantarumsubsp.plantarum)CICCNO. 6240接种到10mL液体培养基中,37℃下静置培养18h,经两次扩大培养得种 子培养液;将种子培养液以4%的接种量接种增菌培养基中,37℃下静置培养 18h;
(2)将菌液移入无菌离心管,以4000转/分钟的转速离心10min,弃上清液,用质 量体积浓度为0.9%的无菌生理盐水洗涤沉淀菌体后,以4000转/分钟的转速离 心10min,弃上清液,得乳酸菌菌泥;
(3)制备保护剂溶液:分别称取海藻糖4.04g、蔗糖10.38g、谷氨酸钠2.9g,分 别在40℃下溶于10ml蒸馏水中,吸入5ml注射器,采用膜孔径为0.22μm的 滤菌器除菌,将10ml过滤除菌的海藻糖溶液、蔗糖溶液、谷氨酸钠溶液,分别 注入90ml无菌水中,得到4.04%海藻糖溶液,2.9%谷氨酸钠溶液,10.38%蔗糖 溶液,备用;取脱脂乳粉14.84g,溶于100ml蒸馏水中,得14.84%脱脂乳粉溶 液,110℃灭菌,备用;
(4)取步骤(2)制备得到的菌泥与步骤(3)制备的海藻糖溶液、蔗糖溶液、 谷氨酸钠溶液、脱脂乳粉溶液,将1g菌泥与5ml海藻糖溶液、5ml蔗糖溶液、 5ml谷氨酸钠溶液和5ml脱脂乳粉溶液一起混合,搅拌均匀,得菌悬液;
(5)取步骤(4)制备的菌悬液分装入菌带塞的玻璃瓶中,-70℃下预冻2h,在 冻干条件为真空度5Pa、隔板加热温度20℃、冷阱温度-55℃的真空冻干机中 冻干,冻干时间30h,得冻干菌制剂。其中,步骤(1)所述的接种量是指是指菌 液体积与培养基培养液的体积比。
本发明菌制剂,优选为冻干菌制剂,由植物乳杆菌(Lactobacillusplantarum subsp.plantarum)CICCNO.6240和保护剂组成,所述保护剂组分包括海藻糖、 蔗糖、谷氨酸钠和脱脂乳粉。保护剂组成按照本发明特定比例配伍后,有效增强 了对植物乳杆菌CICCNO.6240的保护作用,较选用其他保护剂组方成分、或其 他配比比例,明显提高了植物乳杆菌CICCNO.6240的存活率和降低胆固醇的能 力。本发明保护剂组方对植物乳杆菌CICCNO.6240的保护作用,具有协同增效 的作用,有效提高了经冻干工艺所得冻干菌制剂的活菌存活率,并维持了冻干菌 制剂降胆固醇的活性,使植物乳杆菌CICCNO.6240冻干后降胆固醇的效果与植 物乳杆菌CICCNO.6240冻干前降低胆固醇的效果相当。
本发明提供了一种植物乳杆菌CICCNO.6240的专属冻干保护剂配方,该保 护剂配方各组分按本发明的特定比例配伍,协同增效的增强了对植物乳杆菌 CICCNO.6240存活率和活性的保护效力,有效避免了冻干过程对菌株存活率的 降低作用,使并维持了冻干菌制剂降胆固醇的活性,使植物乳杆菌冻干后降低胆 固醇的效果与冻干前降低胆固醇的效果相当,在提高冻干粉中菌株活性的同时大 大降低了发生产成本。
显然,根据本发明的上述内容,按照本领域的普通技术知识和惯用手段,在 不脱离本发明上述基本技术思想的前提下,还可以做出其他多种形式的修改、替 换或者变更。
以下以实施例形式的具体实施方法,对本发明的上述内容在做进一步的详细 说明,但不应理解为下述实施例用于限定本发明的保护范围。
具体实施方法
1、本发明实验仪器和实验材料。
1.1实验仪器
UV-2600A型紫外可见分光光度计(上海尤尼柯仪器有限公司);自动台式 灭菌锅(山东新华医疗器械股份有限公司);微孔过滤器及滤膜(0.22μm);Heto Lyolab3000冻干机(上海汇分电子科技有限公司)
1.2实验材料
蔗糖(成都市科龙化工试剂厂);海藻糖(河南豫兴生物科技有限公司); 脱脂乳粉(郑州市伟丰生物科技有限公司);谷氨酸钠(河南凯成化工产品有限 公司);甘露醇(上海陆安生物科技有限公司);菌种:植物乳杆菌CICCNO.6240, 保藏于位于北京市朝阳区酒仙桥中路24号院6号楼的中国工业微生物菌种保藏 管理中心(ChinaCenterofIndustrialCultureCollection,CICC)。
实施例一、植物乳杆菌CICCNO.6240菌泥的制备
(1)菌体的富集培养
取植物乳杆菌CICCNO.6240菌粉,接种到10ml本领域常规的液体培养基 中活化,37℃下静置培养18h,经两次活化培养得种子培养液。将种子液以4%的 接种量接种到100ml增菌培养基中,37℃下静置培养18h。接种量指种子培养液 与培养基的体积比。
(2)菌体的收集
当发酵进行至对数期后期,将菌液移入无菌离心管中,,4000r/min离心10min, 弃上清液,用无菌0.9%生理盐水洗涤沉淀菌体,再以同样的条件离心10min, 弃上清液即得植物乳杆菌CICCNO.6240菌泥。
将菌泥/菌泥混悬液平均分为10份。
实施例二、冻干菌制剂的制备
(1)首先,配制保护剂各组分的溶液。按照表一记载的保护剂配方和比例, 分别取海藻糖、谷氨酸钠、蔗糖,甘露醇,以蒸馏水为溶剂制备溶液,采用膜孔 径为0.22μm的滤菌器除菌,分装在灭菌的带塞玻璃瓶中,经培养检验确认无 菌后冷藏备用,可根据需要进一步稀释;按照表一记载的保护剂配方和比例,取 脱脂乳粉,溶解于蒸馏水中,110℃下保温10min杀菌,备用。
例如,配制表一中保护剂配方编号6的各保护剂成分的特定浓度的溶液:分 别称取海藻糖4.04g、蔗糖10.38g、谷氨酸钠2.9g,分别在40℃下溶于10ml蒸 馏水中,吸入5ml注射器,采用膜孔径为0.22μm的滤菌器除菌,将10ml过滤 除菌的海藻糖溶液、蔗糖溶液、谷氨酸钠溶液,分别注入90ml无菌水中,得到 4.04%海藻糖溶液,2.9%谷氨酸钠溶液,10.38%蔗糖溶液,备用;取脱脂乳粉 14.84g,溶于蒸馏水中,得14.84%脱脂乳粉溶液100ml,110℃灭菌,备用。其 他编号的保护剂配方,在替换相应的投料量后,可参照类似方法配制溶液。
(2)配制菌悬液,制备冻干制剂。分别按照下表一保护剂配方中的组别编 号和保护剂具体组分及其浓度配制保护剂溶液,备用;分别取实施例一制备的菌 泥9份,按照菌泥质量与配方中各种保护剂溶液体积之比为1:5的比例,将菌泥 与各保护剂溶液混合,得菌悬液9份。例如,以表一中保护剂配方编号6制备菌 悬液,即按照保护剂配方6规定的保护剂浓度,按1g菌泥:(5ml海藻糖溶液 +5ml蔗糖溶液+5ml谷氨酸钠溶液+5ml脱脂乳粉溶液)的比例,将保护剂溶液 添加至菌泥中,混合混匀,配制需要的菌悬液。
分别从9份菌悬液中取5mL菌悬液分装入10mL无菌带塞的玻璃瓶中,放 在-70℃下预冻,2h后取出在真空冻干机中冻干,冻干条件为真空度5Pa、隔板 加热温度20℃、冷阱温度-55℃,冻干时间约30h,分别得冻干菌制剂9份。
添加保护剂配方1、保护剂配方2、保护剂配方3、保护剂配方4、保护剂配 方5、保护剂配方6、复方保护剂配方7、保护剂配方8、保护剂配方9后制备得 到的冻干剂,分别对应冻干菌制剂1、冻干菌制剂2、冻干菌制剂3、冻干菌制 剂4、冻干菌制剂5、冻干菌制剂6、冻干菌制剂7、冻干菌制剂8、冻干菌制剂 9。
表一:保护剂配方(浓度单位:w/v即质量体积浓度:g/ml)
以下为实验例:
实验例一菌泥活菌测定
取实施例一制备的菌泥1份,测定活菌含量。采用梯度稀释平板计数法,即 在无菌操作条件下,吸取充分混匀的样液0.5mL,加入灭菌生理盐水中,制成1∶10 的均匀稀释液,再依次进行10倍递增稀释,至1:1012。吸取0.5mL置于灭菌培养皿 中,再倒入45℃左右的MRS琼脂计数培养基约15mL,混匀。待其凝固后,于37℃ 恒温培养箱中倒置培养36h,用菌落计数器计数,得菌泥的活菌含量为9.7× 1012cfu/g。
实验例二
(1)冻干制剂活菌测定
取实施例二制备的冻干菌制剂1-9,分别用5mL灭菌的PBS缓冲液复水,然 后采用梯度稀释平板计数法,即在无菌操作条件下,吸取充分混匀的样液0.5mL,加 入灭菌生理盐水中,制成1∶10的均匀稀释液,再依次进行10倍递增稀释,至 1:1012。吸取0.5mL置于灭菌培养皿中,再倒入45℃左右的MRS琼脂计数培养基 约15mL,混匀。待其凝固后,于37℃恒温培养箱中倒置培养36h,用菌落计数器 计数。
(2)计算方法
其中,“冻干前1ml菌悬液的活菌数×菌悬液体积”,即1份菌悬液中的活 菌数,相当于添加保护剂之前的1份菌泥中的活菌数,与实验例一测定的1份菌 泥的活菌数相当。
(3)计算结果
实验数据显示,冻干菌制剂5、冻干菌制剂6具有最高的植物乳杆菌CICCNO. 6240存活率,较其他保护剂配方的冻干菌制剂,显著提高了植物乳杆菌CICCNO. 6240的存活率。
实验例二、菌制剂降胆固醇能力测试
(1)冻干后菌制剂降胆固醇能力的测定
分别将实施例二制备的冻干菌制剂菌粉,以0.5%的接种量(w:v)接种于胆固 醇培养基中,37℃静置培养48h,以未接种的培养基为空白对照。将培养液漩涡 振荡摇匀,吸取0.5ml菌悬液和4.5ml无水乙醇加入离心管中。静置提取10min 后,3000r离心15min。取上清液0.5ml加入洁净试管中,再加入1mg/ml邻苯二 甲醛液0.2ml、混合酸(1:1浓硫酸、冰乙酸)4.3ml,制成实验组,对照组用无 水乙醇代替离心后的上清液,振荡摇匀。静置反应30min后,在波长550nm处 测定吸光度,计算其胆固醇降解率。
胆固醇降解率(%)=(C-A)/C*100
式中:A为实验菌株培养后的培养液550nm处OD值对应的胆固醇浓度;C 为空白对照的OD值对应的胆固醇浓度;重复试验3次求平均值。
(2)菌泥降胆固醇能力的测定
将实施例一制备的菌泥(即未经冻干的菌泥)以0.5%的接种量接种于胆固 醇培养基中,37℃静置培养48h,以未接种的培养基为空白对照。将培养液漩涡 振荡摇匀,吸取0.5ml菌悬液和4.5ml无水乙醇加入离心管中。静置提取10min 后,3000r离心15min。取上清液0.5ml加入洁净试管中,再加入1mg/ml邻苯二 甲醛液0.2ml、混合酸(1:1浓硫酸、冰乙酸)4.3ml,制成实验组,对照组用无 水乙醇代替离心后的上清液,振荡摇匀。静置反应30min后,在波长550nm处 测定吸光度,计算其胆固醇降解率。
胆固醇降解率(%)=(C-A)/C*100
式中:A为实验菌株培养后的培养液550nm处OD值对应的胆固醇浓度;C 为空白对照的OD值对应的胆固醇浓度;重复试验3次求平均值。
(3)实验结果
经本发明优选的保护剂配方得到的冻干菌制剂5、冻干菌制剂6,其胆固醇 降解率分别为35.8±1.32、36.2±1.75(%,n=3),与未冻干的菌泥37.3±1.50(%, n=3)的胆固醇降解率相当,没有显著差异,表明本发明优选的保护剂配方得到的 冻干菌制剂胆固醇降解率没有明显变化,冻干对植物乳杆菌I4的降胆固醇能力 没有明显影响。
而其他冻干菌制剂与未冻干的菌泥的降胆固醇能力相比,降胆固醇的能力具 有显著差异,即降低胆固醇的能力显著降低。
以下为显著性检验分析数据:
单一样本统计资料
单一样本检定
使用spss软件,对上述降低胆固醇的实验效果进行单样本T检验。数据分 析显示,仅冻干菌制剂第5号和冻干菌制剂第6号的p值>0.05,表明冻干菌制 剂第5号和冻干菌制剂第6号与未冻干菌泥降胆固醇效果的差异不显著。其余各 组冻干菌制剂的p值均<0.05,表明与未冻干菌泥降胆固醇效果的差异显著。
机译: 乳酸菌制剂及其在生产降胆固醇产品中的用途
机译: 一种来自放线菌属的新的6-磷酸葡萄糖转位酶抑制剂l 970871及其化学衍生物,制备方法及其在药物中的用途
机译: 一种来自放线菌属SP的新的6-磷酸葡萄糖转位酶抑制剂L 970885及其化学衍生物,制备方法及其作为药物的用途