获得视网膜祖细胞、视网膜色素上皮细胞和神经视网膜细胞的方法

摘要

本发明涉及一种用于在体外获得人类视网膜祖细胞的方法，该方法包括以下步骤：(i)将人类多能干细胞的贴壁培养物放置于促神经培养基中；以及，(ii)使所述培养物保持在所述促神经培养基中，直至出现色素细胞和/或神经上皮样结构。有利地，可进行额外的步骤，以获得RPE细胞和/或神经视网膜前体。

说明书

背景技术

感光细胞或支持视网膜色素上皮细胞(RPE)的功能受损或功能完全丧失，是导致视网膜疾病(诸如遗传性视网膜变性和年龄相关性黄斑变性(AMD))中的不可逆失明的主要原因。青光眼中的视网膜神经节细胞(RGC)死亡也导致视力的不可逆丧失。挽救退变性视网膜是主要挑战，而且细胞替换是最有希望的方式之一(Pearsonetal.,2012；Barberetal.,2013)。使用人类多能干细胞、胚胎干(ES)细胞和诱导多能干(iPS)细胞开启了用于人类视网膜变性疾病的新途径。人类ES(hES)和iPS(hiPS)细胞可用作进行组织移植的视网膜细胞(光感受器、RPE和RGC)的无限制来源，其中人类ES(hES)和iPS(hiPS)细胞具有在培养时无限扩增，同时保持它们的多能状态的能力(参见综述：Comynetal.,2010；Dahlmann-Nooretal.,2010,Boucherieetal.,2011)。但是，这一新技术仍然面临很多困难。尤其是，目前分化程序还不够完善，不足以确保效率和安全性。几篇公开文件指出，hES和hiPS细胞可通过细胞培养物中的集落进行自发分化(Buchholzetal.,2009；Vaajasaarietal.,2011；Zahabietal.,2012)，或通过不同的漂浮聚集方法(Idelsonetal.,2009；Luetal.,2009；Kokkinakietal.,2011)，相对容易地分化成RPE细胞。越来越多的汇聚数据证明，hES或hiPS具有在拟胚体形成之后转化成神经视网膜谱系，并且进一步分化成表达光感受器标记物的细胞的能力(Lambaetal.,2006,2009；Osakadaetal.,2008,2009；Meyeretal.,2009,Melloughetal.,2012)。之前开发的不同方法尽管有真正的进步，但是仍然存在通常与多能干细胞分化成高特化的细胞类型相关的缺点。用于hES或hiPS细胞向光感受器定向分化的这些方案需要几个步骤，添加几种分子，而且效率相当低。目前，其它组试图进一步从hES或hiPS细胞的拟胚体获得视泡样结构的3D结构(Meyeretal.,2011；Nakanoetal.,2012)。分化方法使用基质胶(matrigel)，来再创建围绕拟胚体的复杂的细胞外基质(ECM)，从而允许神经上皮的自形成，并且或快或慢地分化成感光细胞谱系(Meyeretal.,2011；Nakanoetal.,2012；Boucherieetal.,2013；Zhuetal.,2013)。

因此，现有技术中需要一种在体外准确模拟分化和发育的简单、有效且可靠的方法，来获得特定的人类神经上皮谱系细胞的基本纯的培养物，其中特定的人类神经上皮谱系细胞包括视网膜祖细胞、RPE细胞和神经视网膜细胞。

发明内容

如在下面的实验部分所公开的，发明人现在使iPS细胞进行一种组合了2D和3D培养系统的新的视网膜分化方案。该方案避免形成拟胚体或细胞团，并且可在没有基质胶或血清时进行。发明人证明，培养在促神经培养基中的融汇的hiPS细胞可在两周内生成具有眼域(eyefield)特征的神经上皮样结构，当转换成3D培养时，该神经上皮样结构可分化成主要的视网膜细胞类型。在这些条件下，hiPS细胞自组装成神经视网膜样组织，并且在发育的适当时间窗中具有视网膜标记物的快速表达；它们产生不同的视网膜细胞类型，诸如RGC和光感受器。

因此，本发明的第一目标是一种用于在体外获得人类视网膜祖细胞的方法，该方法包括以下步骤：

(i)将人类多能干细胞的贴壁培养物放置于促神经培养基中；并且

(ii)使所述培养物保持在所述促神经培养基中，直至出现色素细胞和/或神经上皮样结构。

在本文中，“视网膜祖细胞(progenitor)”，也被称为“视网膜先祖细胞(progenitorcell)”，涵盖有能力生成神经视网膜的全部细胞类型的细胞，包括光感受器的前体以及能分化成RPE的细胞。

“人类多能干细胞”包括人类胚胎干(hES)细胞和人类诱导多能干(hiPS)细胞。上述方法有利地使用人类诱导多能干细胞进行。

“促神经培养基”在本文中指有利于神经元细胞的维持和/或生长的任意培养基。这样的培养基的非限制性实例是由营养培养基构成的任意培养基，诸如杜氏改良伊格尔培养基(Dulbeco’sModifiedEagleMedium)：营养混合物F-12(DMEM/F12)或培养基()，上述营养培养基补充有培养基补充物，该培养基补充物包括以下成分的至少一部分：碳源、维生素、无机盐、氨基酸和蛋白消化物。适于获得促神经培养基的补充物的非限制性实例是N2、B27、G5和BIT9500补充物，以及衍生自这些补充物的任意补充物。存在于这些补充物中的组分总结于下面的表1中。

表1：促神经培养基的四种培养基补充物的组成。^a参见Breweretal.,1993；^b由制造商提供(GibcoBRL,德国)；^c由制造商提供(StemCellTechnologiesInc.,加拿大)；^d由制造商提供(LifeTechnologies,USA)。

在下文中，“神经上皮样结构”，在下面的实验部分中也被命名为“神经视网膜样结构”，指在促神经培养基中培养几天之后开始出现的相光(phase-bright)结构。这些结构基本上由不显著表达多能相关基因(诸如OCT4)，但表达与眼区特化(eye-fieldspecification)相关的转录因子(诸如LHX2、RAX、PAX6和SIX3)的细胞构成。如在实验部分中所公开的，当进行上述方法时，首先出现色素细胞，而神经上皮样结构最常出现在色素细胞斑块的附近。

当然，在进行根据本发明的方法时，技术人员可检测多种标记物的表达(以检验它们的表达或检验它们不再被表达的事实，和/或定量测量它们的表达水平)。为了实现这一目的，可使用本领域已知的任意技术，例如定量RT-PCR和免疫测定。多能性标记物的实例是OCT4、SOX2和NANOG；眼区标记物的实例是RAX、PAX6、OTX2、LHX2和SIX3，前两个是优选的。

有利地，可在不使用复杂且昂贵的培养基的情况下进行上述方法。实际上，可使用非常简单的培养基，从多能干细胞的贴壁培养物中获得人视网膜祖细胞。尤其不需要分化因子。根据上述方法的优选实施方式，在培养步骤中使用的促神经培养基缺乏以下分化因子中的至少一种：头蛋白(noggin)、Dkk-1和IGF-1。尤其是，促神经培养基可缺乏这三种因子。

在步骤(i)中使用的人类多能干细胞可在任意类型的贴壁培养系统中培养。可用于这种培养的表面的非限制性实例是：玻璃、塑料(可能是经过处理的)、胶原、层粘连蛋白、纤连蛋白、Matrigel^TM、聚-L-赖氨酸、滋养细胞，或市场上可购买的任意合成表面，诸如CorningSynthemax^TM。在优选实施方式中，在上述方法的步骤(i)中使用的贴壁培养物是达到至少80％细胞覆盖的集落型单层的形式。技术人员熟知贴壁细胞的细胞覆盖的概念，并且能评价该细胞覆盖，其中对细胞覆盖可进行局部理解，即特别是如果细胞覆盖在整个培养表面是不均匀的，则细胞覆盖可仅是在容器的一个区域中的细胞覆盖。在集落型单层的情况中，如果需要，可将“80％细胞覆盖”定义为以下状态：当一些集落与其它集落点状接触，而同时在这些集落之间还保持有一些空闲空间(占表面的10％至30％)。

如在实验部分中所描述的，但这不是强制性的，可进行根据本发明的方法，以便在步骤(i)之前，进行以下步骤：在培养基中对所述多能干细胞进行贴壁培养，以维持多能干细胞1至4天，优选2天，其中该培养基经改良以缺乏基本的成纤维细胞生长因子(bFGF/FGF2)。用于该额外的步骤的适当培养基的非限制性实例是，来自ReproCELL的灵长类动物ES细胞培养基(PrimateESCellMedium)和ReproStem培养基。

在上述方法的特定实施方式中，步骤(ii)进行至少7天，优选进行10至14天，以便出现足够量的神经上皮样结构。当然，培养方法可进行演化，以便可缩短步骤(ii)。如上面已经提到的，神经上皮样结构基本由不显著表达多能性相关基因(诸如OCT4)，但表达与眼区特化相关的转录因子的细胞构成。因此，取决于培养系统，技术人员可选择将步骤(ii)的结束定义为，至少一些细胞停止表达OCT4和/或开始表达RAX和PAX6的时间。如已经提到的，该特征描述可通过任意已知的技术，诸如qRT-PCR或免疫染色进行。

根据另一方面，本发明涉及一种用于获得RPE细胞的方法，其中，所述方法包括以下步骤：

(i)将人类多能干细胞的贴壁培养物放置于促神经培养基中；

(ii)使所述培养物保持在所述促神经培养基中，直至出现色素细胞；

(iii_RPE)从在步骤(ii)中获得的培养物收集至少一种色素细胞；以及

(iv_RPE)培养在步骤(iii_RPE)中获得的色素细胞。

当进行该方法时，技术人员可检验在步骤(iii_RPE)中收集的细胞表达小眼畸形相关的转录因子(MITF)和/或ZO-1。如已经提到的，为了实现该目的可使用本领域已知的任意技术(诸如qRT-PCR和免疫染色)。

根据上述用于获得RPE细胞的优选实施方式，在贴壁培养系统中进行步骤(iv_RPE)中的培养。如上面已经提到的，可使用任意的贴壁培养系统。

当进行本发明的用于获得RPE细胞的方法时，在至少5天中，在步骤(iv_RPE)中扩增细胞。有利地，步骤(iv_RPE)的培养物可维持和扩增数周，以获得大量的RPE细胞：例如，当在步骤(iii_RPE)中收集约10个斑块的色素细胞，并且将这10个斑块的色素细胞一起铺在新的3cm²平皿中时，在3周至4周之后，或如果在培养基中添加FGF2(每隔2至3天，10ng/ml)，则在10天至14天之后，获得RPE细胞的基本纯(99％)的融汇的贴壁培养物。

本发明的另一方面是一种用于获得神经视网膜细胞的方法，其中，所述方法包括以下步骤：

(i)将人类多能干细胞的贴壁培养物放置于促神经培养基中；

(ii)使所述培养物保持在所述促神经培养基中，直至出现神经上皮样结构；

(iii_NR)从在步骤(ii)中获得的培养物，收集来自至少一种神经上皮样结构的细胞；以及

(iv_NR)培养在步骤(iii_NR)中获得的细胞。

在此，“视网膜神经细胞”包括RGC、双极细胞、水平细胞、无长突细胞、感光细胞(视杆细胞和视锥细胞)、穆勒(Müller)胶质细胞，以及这些细胞类型中的任意类型的前体。

重要的是，在步骤(iv_NR)的过程中，多种视网膜神经细胞不同时出现，其中培养的细胞在步骤(iv_NR)过程中发生分化。因此，取决于步骤(iv_NR)的持续时间，将形成不同的细胞类型。出现顺序如下：首先出现神经节细胞，接着是无长突细胞和水平细胞，光感受器出现较晚。取决于所需要的细胞类型，技术人员应将培养步骤(iv_NR)进行21天至42天。

如在下面的实验部分所例示的，根据本发明的这一方面的方法可通过在步骤(iii_NR)中收集至少一种神经上皮样结构来进行。这可以例如通过从贴壁细胞层机械分离该结构来进行。然后，将该结构单独或与其它神经上皮样结构一起放置于另一培养容器，诸如多孔板的孔、皮氏培养皿、培养瓶(flask)等中。

当进行本方法时，技术人员可有利地检验，在步骤(iii_NR)中收集的细胞共表达眼区细胞特有的PAX6和RAX。或者，可测量在步骤(iii_NR)中收集的细胞对细胞增殖标记物Ki67的表达。

根据特别有利的方面，本发明涉及一种用于获得光感受器前体的方法，该方法包括上述步骤(i)至(iv_NR)，其中步骤(iv_NR)进行至少21天，优选进行至少28天。当然，取决于培养条件的未来发展，可进一步缩短该步骤。

在步骤(iv_NR)中的任意时间，技术人员可例如通过qRT-PCR，测量培养出的细胞中的NRL和/或CRX的表达，以检验向光感受器谱系的分化。或者，如下面的实验部分所公开的，可使用恢复蛋白(RECOVERIN)免疫染色来鉴定光感受器前体。发明人已经证明，CD73与RECOVERIN共表达，其中CD73可用作对光感受器前体进行细胞分选的细胞表面标记物。这可通过以下步骤进行有利地利用：在步骤(iv_NR)之后，例如通过使用抗CD73抗体，对光感受器前体进行额外的细胞分选步骤。得到的富集光感受器前体的细胞群可用于例如细胞移植或筛选途径。

可选地，可在步骤(iv_NR)中，持续至少1天，优选持续5天或更长时间段，向培养基中添加缺口(Notch)抑制剂，诸如DAPT。DAPT是γ-分泌酶抑制剂，并且间接地是Notch的抑制剂。另外，发明人已经示出，在步骤(iv_NR)中持续几天添加DAPT，有利于生成光感受器前体(参见下面的实施例2和图5)。

根据上述用于获得神经视网膜细胞的方法的优选实施方式，在非贴壁的培养系统中进行步骤(iv_NR)中的培养。例如，将在步骤(iii_NR)中收集的神经上皮样结构作为漂浮结构来培养。根据特定实施方式，在单个容器/孔中将在步骤(iii_NR)中收集的每一个神经上皮样结构都作为漂浮结构培养。

非贴壁系统的非限制性实例包括：磁性旋转的转瓶，或者摇动的培养瓶或培养皿，在这些非贴壁系统中，细胞被保持活动地悬浮在培养基中；以及，静止的培养容器，或者T-瓶和瓶子，在这些非贴壁系统中，尽管不对细胞进行持续搅拌，但细胞仍不能牢固地附着于基底上。

如实验部分所述，通过在摇动条件下进行步骤(iv_NR)，可使细胞或神经上皮样结构有利地保持活动地悬浮于培养基中。为了此目的，可使用任意的振动器，例如三维搅拌培养物的旋转器。

根据本发明的用于获得视网膜神经细胞的方法的另一优选实施方式，持续至少5天，向步骤(iv_NR)中使用的培养基补充FGF2。该培养基优选是如上定义的促神经元培养基。

本发明的一个优点在于，从第一贴壁培养物，可平行进行两种不同的培养，以获得RPE细胞(第一培养物，优选是贴壁的)和神经视网膜前体(第二培养物，优选是非贴壁的)。因此，本发明涉及一种用于获得神经视网膜前体和RPE细胞的方法，该方法包括如上定义的步骤(i)和步骤(ii)，接着是如上定义的步骤(iii_RPE)和步骤(iv_RPE)，其中步骤(iii_RPE)和步骤(iv_RPE)与如上定义的步骤(iii_NR)和步骤(iv_NR)平行进行。

最重要的是，本发明提供了可靠的方法，以容易且快速地获得主要类型(RPE、RGC、无长突细胞、水平细胞、Müller胶质细胞和光感受器)中任意类型的具有高纯度的大量视网膜细胞。例如，可在小于一个月的时间中，获得包括高于75％的光感受器前体的培养物。

设想这些方法和通过这些方法获得的基本纯的细胞培养物，在以下领域中是有用的：

·移植/细胞疗法：非限制性实例包括，RPE和/或视网膜祖细胞或由其分化的细胞在丢失细胞(lostcell)的替换疗法中的应用，以帮助恢复之前丧失的视力。上述方法和培养物还可用于发育组织，以用于全组织替换疗法中。

·药物筛选，用于鉴定出能保护或提高包括RGC、视杆细胞、视锥细胞和RPE细胞的所有细胞的功能的药剂。在此，“药剂”指任意种类的分子或组合物，以及非化学药剂，诸如任意的电磁辐射或微粒辐射(UV、可见光、电离辐射等)。

·从多能细胞，尤其从hiPS细胞，产生人类视网膜疾病模型，该人视网膜疾病模型还可用于研究病理生理学，和用于药物筛选或使用干细胞或其衍生物的定制疗法。

·作为人类神经发育的独特模型，将是研究多种过程的有用来源，该多种过程在没有限制的情况下包括发育、组织形成和突触形成。

通过下面的附图和实施例，将对本发明作进一步解释。

附图说明

图1：无整合(integration-free)hiPS细胞的来源和表征。(A)描绘在AHDF的重编程中所涉及的步骤的示意图。(B)异质hiPS集落在成纤维细胞上的出现。(C)很好建立的hiPS细胞的阳性碱性磷酸酶的染色。(D、E)通过hiPS细胞(亚克隆2)中的免疫组织化学显示多能性标记物的表达。(F)在hiPS细胞、AHDF和hES细胞中，对多能性和自我更新的标记物进行的qRT-PCR分析(n＝3次实验)。数据对hES细胞进行标准化。(G)在两周之后，对来源于hiPS细胞的拟胚体中的几种胚层标记物进行的qRT-PCR分析(n＝3次实验)。数据对未分化的hiPS细胞进行标准化。(H-J)两周后，对来源于hiPS细胞(亚克隆2)的拟胚体的内胚层(SOX17)、中胚层(SMA)和外胚层(PAX6、TUJI-1)的标记物进行的免疫染色。(K)hiPS亚克隆2的染色体组型的分析。(L)使用靶向oriP的引物进行PCR筛选，用于在5次传代(AHDFc2p5)或15次传代(AHDFc2p15)之后，检测在hiPS亚克隆2的基因组DNA(gDNA)部分和游离体部分(Epi提取物)中的oriP/EBNA1载体，其中天然AHDF作为对照。比例尺＝100μm。

图2：由无整合hiPS细胞有效生成视网膜祖细胞。(A)示出分化方案的不同阶段的示意图。(B、C)在7天和14天之后，在促神经培养基中分化的hiPS细胞的形态。(D)在第14天，对神经上皮样结构中的眼区转录因子(SIX3、LHX2、RAX、PAX6、MITF和VSX2)、NRL、CRX和多能性标记物POU5F1进行的qRT-PCR分析(n＝3次实验)。数据对在第0天(D0)的hiPS细胞进行标准化。(E～O)对第14天的神经上皮样结构的PAX6和RAX(E～G)，Ki67和LHX2(H～J)，或MITF和VSX2(K～O)进行的免疫荧光染色。比例尺＝100μm(B、C、E、H和K)；50μm(F、G、I、J、L～O)。(P)对第0天、第7天和第14天的hiPSC-2中的NOGGIN和DKK1进行的qRT-PCR分析。数据对hiPSC-2单个集落进行标准化。

图3：由漂浮的神经视网膜(NR)样结构分化成多种视网膜细胞类型。(A)概述生成视网膜细胞的分化方案的示意图(搅拌)。(B～D)在分离之后的不同时间，漂浮的NR样结构的形态。(E、F)对不同时间的、NR样结构中的眼区和光感受器的特异性转录因子进行的qRT-PCR分析(n＝3次实验)。数据对第14天的hiPS细胞进行标准化。(G～I)对第21天的NR样结构的MITF(G)、VSX2(G、H)、PAX6(H)、OTX2(I)和BRN3A(I)进行的免疫染色。(J～L)对第14天(J)、第21天(K)和第28天(L)的NR样结构的CRX的免疫染色。(M-N)对第21天的NR样结构的CALRETININ(M)和LIM1(N)的免疫染色。(O)对第28天的NR样结构的RECOVERIN的免疫染色。比例尺＝100μm(B-D、G-L)，50μm(M-O)。

图4：RPE细胞从无整合的hiPS细胞的生成和扩增。(A)实验的示意图。(B、C)30天之后，hips细胞来源的RPE细胞单层的相差纤维术。(D)30天之后，hips细胞来源的RPE细胞单层的ZO-1和MITF的免疫染色。比例尺＝100μm。(E)对第0(P0)、P1和P2代的hiRPE细胞中的成熟RPE标记物的qRT-PCR分析。数据对分离自人类成熟RPE细胞的对照RNA进行标准化。(F)对RPE细胞的吞噬活性的评价；在与FITC标记的POS孵育3小时之后，P1的hiRPE细胞培养物和对照RPE-J细胞系中的FITC/DAPI荧光的比率。如在材料和方法中所述的，测定POS的结合和摄取(实施例1)。

图5：通过Notch抑制，从漂浮的NR样结构生成光感受器前体加速。(A)从第21天至第28天，或从第28天至第35天，使用添加DAPT的实验的示意图(搅拌)。(B)在DAPT存在或不存在(对照)的情况下，第28天或第35天的NR样结构的CRX和RECOVERIN的免疫染色。比例尺＝100μm。(C和D)在有DAPT或没有(对照)DAPT的情况下，第28天和第35天的光感受器前体(CRX、RECOVERIN)和有丝分裂祖细胞(Ki67)的量化。各值代表阳性细胞的平均百分比±SEM(n＝4,*P<0.05)。(E)在经DAPT处理的第35天的NR样结构中，对成熟的光感受器标记物和GLAST(Müller胶质细胞的标记物)的qRT-PCR分析。数据对未经DAPT处理的第35天的NR样结构进行标准化。比例尺＝100μm。

图6：光感受器前体在NR样结构中的早期分化。(A)对分化的NR样结构中的NRL和CRX转录因子的qRT-PCR分析。数据表示为，与第0天的hiPSC-2相比，PCR表达水平的循环变化。(B)对第14天的冷冻切片的NR样结构的CRX的免疫荧光染色。(C～H)对第21天和第35天的冷冻切片的NR样结构的CRX和OTX2的免疫荧光染色。激光共聚焦(Confocal)图像证明OTX2和CRX在第21天(C～E)和第35天(F～H)的NR样结构的切片中共定位。(M～N)对第28天的冷冻切片的NR样结构的Ki67(M)、PAX6(N)、OTX2(N)、CRX(M)的免疫组织化学分析。比例尺＝100μm(B)、50μm(C-H和M-N)。

图7：hiPSC-2来源的NR样结构的厚度分析。(A～C)从第17天至第24天的一个代表性NR样结构的厚度演变(黑线)。(D)13个独立的NR样结构的厚度演变的图示。每条线都对应一个NR样结构。(E)代表13个分离的NR样结构的厚度(平均值±SEM；**P<0.01；****P<0.0001)的柱状图，示出在第17天至第24天之间增加80.6±10.2％。比例尺＝100μm。

图8：使用不同hiPSC克隆的视网膜分化方案的重复性。(A～C)来源于第17天、第21天和第24天的hiPSC-1的漂浮的NR样结构的形态。(D～F)来源于第17天、第21天和第24天的hiPSC-2的漂浮的NR样结构的形态。(G和H)在来源于hiPSC-1或hiPSC-2的NR样结构中，对第17天和第35天的眼区转录因子的qRT-PCR分析。(I和J)在来源于hiPSC-1或hiPSC-2的NR样结构中，对第17天和第35天的光感受器特异性转录因子的qRT-PCR分析。以上数据与第14天的每一基因相比较。比例尺＝100μm。

图9：来自漂浮的NR样结构的所有视网膜细胞类型的分化。(A～E)在不同时间的NR样结构中，对选定的神经视网膜细胞类型的qRT-PCR分析。对于R/G和蓝视蛋白(BLUEOPSIN)，数据都对第14天和第35天的NR样结构进行标准化。(F～Q)使用RGC(BRN3A、PAX6、钙网膜蛋白(CALRETININ))、无长突细胞(PAX6、AP2、CALRETININ)、水平细胞(LIM、PAX6、CALRETININ)、光感受器(OTX2、RECOVERIN、CRX、CD73、视锥细胞抑制蛋白(CONEARRESTIN)、视紫红质(RHODOPSIN)、BLUEOPSIN和R/G视蛋白(OPSIN))、双极细胞(PKCα)、Müller胶质细胞(GS、SOX9)和有丝分裂祖细胞(Ki67)的标记物，对分化不同阶段的冷冻切片的NR样结构的免疫组织化学分析。比例尺＝50μm((F～N)、25μm(O～Q)。

图10：在长期培养之后，NR样结构中的成熟光感受器的存在。对第112天的冷冻切片的NR样结构的RECOVERIN(A～D)、RHODOPSIN(A～B)和乙酰化微观蛋白(AcetylTUBULIN)(C～D)的免疫荧光染色。免疫组织化学分析证明，在内部玫瑰结(rosette)中显著存在光感受器，同时在玫瑰结的内腔区(D中的箭头)中出现乙酰化微管蛋白的阳性结构。比例尺＝25μm(A～C)和10μm(D)。

具体实施方式

实施例

实施例1：人类无整合的诱导多能性干细胞向视网膜神经元和视网膜色素上皮细胞的可靠且有效的分化

1.1实验程序

人类成纤维细胞和iPS细胞的培养

在37℃、标准5％CO₂/95％空气的培养箱中，将来自8岁男孩的成熟人类真皮成纤维细胞(AHDF)(由Rustin博士赠送，INSERMU676，法国巴黎)培养在高葡萄糖GlutamaxII的杜氏改良的伊格尔培养基(DMEM)(LifeTechnologies)中，该DMEM补充有10％FBS(LifeTechnologies)、1mM丙酮酸钠(LifeTechnologies)、1XMEM非必需氨基酸(LifeTechnologies)。该培养基被称为“成纤维细胞培养基”。在具有10ng/ml人类重组成纤维细胞生长因子2(FGF2)(Preprotech)的ReproStem(ReproCell)培养基中，将建立的人类iPS细胞维持在经丝裂霉素-C失活的小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)滋养层(Zenith)上。细胞常规孵育在37℃，标准5％CO₂/95％空气的培养箱中。该培养基被称为“iPS培养基”。在立体显微镜(VisionEngineeringLtd)下，一星期对细胞进行人工传代一次。

人类成纤维细胞的重编程

使用如上述的游离体方法(Yuetal.,2009)，进行重编程。简单来讲，经由核转染(Nucleofector4D,V4XP,使用DT-130程序,Lonza)，将基于oriP/EBNA1的游离体载体pEP4EO2SEN2K(质粒20925，Addgene)、pEP4EO2SET2K(质粒20927，Addgene)和pCEP4-M2L(质粒20926、Addgene)共转染到AHDF中。将转染的成纤维细胞(10⁶个细胞/核转染)直接铺在3×10-cm接种了MEF的平皿(5×10⁶个细胞/cm2)的“成纤维细胞培养基”中。在转染后第4天，将“成纤维细胞培养基”替换成“iPS培养基”，该“iPS培养基”补充有被描述为增加重编程效率的分子(Zhangetal.2013)：500μM丙戊酸(Sigma,法国)，0.5μMPD-0325901(Selleck,Euromedex,法国)和2μMSB431542(Selleck)。在14天之后，将细胞单独培养在“iPS培养基”中。在30天至40天，切割致密的细胞团，并且转移到60mm器官型细胞培养皿(Dutscher,法国)中。在立体显微镜下，按照它们的人类ES细胞样集落形态拾取显现的hiPS集落。将它们展开在如上所述的经丝裂霉素C失活的MEF滋养层上，用于后续的特化。通过如下所述的PCR，实现游离体载体的完全丢失和重编程基因的非整合。

游离体载体的PCR分析

使用Nucleospin质粒快速纯化试剂盒(Macherey-Nagel,法国)，按照制造商的方案从hiPS细胞纯化游离体DNA。使用苯酚/氯仿提取方法，提取基因组DNA。如Yuetal.(2009)所清楚报道的，由于纯化方法的性质，基因组纯化DNA很可能被来自同一细胞的残留量的游离体DNA污染，而且，纯化的游离体DNA同样也被少量的基因组DNA污染。PCR反应使用GoTaqflexi聚合酶(Promega,法国)进行。对于每一个PCR反应，都添加从10⁴个细胞中提取的10μl基因组DNA或游离体DNA(相当于含有100ng)作为模板。PCR混合物含有1XGoTaqFlexi缓冲液、2mMMgCl₂、0.2mMdNTPs、0.5μM每一种引物和1.25U聚合酶，PCR以以下程序进行：94℃初始变性1min；94℃保持45sec，60℃保持30sec，72℃保持1min，进行35个循环；接着72℃保持5min。来自天然成纤维细胞的游离体DNA和基因组DNA用作阴性对照，而基于oriP/EBNA1的游离体载体(参见上述Yuetal.2009)用作阳性对照。

染色体组型分析

活跃生长的hiPS细胞集落(80％细胞覆盖)在37℃，经秋水仙素(20mg/ml，Eurobio,法国)处理90min。使用0.05％胰蛋白酶-EDTA离解细胞，然后在37℃，在75mMKCl(SigmaAldrich)中孵育10～14min，接着用3:1的甲醇/冰醋酸固定。为了进行mFISH染色体组型分析，经固定的细胞在37℃，与变性的“鸡尾酒绘画(cocktailpainting)mFISH”探针(MetaSystems，Altussheim，德国)杂交过夜。在1XSSC和0.4XSSC的连续浴中清洗载玻片，并且使用250ng/ml二脒基苯基吲哚(DAPI)对核进行染色。使用Cy5MetaSystemsB-tect检测试剂盒(MetaSystems)，使生物素化的探针显现出来。使用蔡司(Zeiss)Z1荧光显微镜捕获十至二十个细胞分裂中期，该ZeissZ1荧光显微镜配备有UVHBO100-W灯，联接至AxioCam相机(CarlZeiss,法国)。使用MetaSystemsIsis软件(MetaSystems)，对所有分析的细胞分裂中期进行染色体组型分析。

碱性磷酸酶(AP)染色

在室温，使用95％的乙醇对培养在MEF上的人类iPS细胞固定10min。然后，使用PBS冲洗细胞，并且在室温，与在具有5mMMgCl₂和0.05％吐温(Tween)-20的pH9.5的Tris缓冲液中的5-溴-4-氯-3-吲哚基磷酸盐(BCIP)和氮蓝四唑(NBT)(Roche,法国)的混合物孵育5min至10min。染色之后，使用PBS冲洗细胞，之后在明视野显微镜下观察。

拟胚体的形成和分析。

在立体显微镜(VisionEngineeringLtd.)下，从MEF层机械分离人类iPS细胞集落，然后以悬浮液形式培养在超低吸附培养皿(Nunc,Dutscher,法国)内的ReproStem培养基中。每隔两天换一次培养基，并且将EB培养2周，之后提取RNA或进行免疫组织化学分析。

视网膜分化

使人类iPS细胞展开覆盖在iPS培养基中的经丝裂霉素-C失活的小鼠MEF滋养层上。此时，限定为第0天，将融汇的hiPS细胞培养在没有FGF2的iPS培养基中。2天之后，将培养基换成“促神经培养基”，该促神经培养基由杜氏改良伊格尔培养基:营养物混合物F-12(DMEM/F12,1:1,L-谷氨酰胺)、1％MEM非必需氨基酸和1％N2补充物(Lifetechnologies)构成。每隔2～3天，更换一次培养基。在第14天，分离鉴定出的被色素细胞围绕的神经上皮样结构，并且在开始两天中，将上述神经上皮样结构置于3DNutator振动器(VWR,法国)的24孔板中，使用补充有10ng/mlFGF2的“促神经培养基”，作为漂浮结构(3D)单独培养，并且每隔2～3天更换一次培养基。当在振动器平台上培养时，分离的结构维持悬浮在培养基中，并且通常不能附着至培养板的底部。在第19、20或21天，去除FGF2，并且每隔2～3天更换一半的“促神经培养基”，持续接下来的几周。

对于RPE细胞培养物，在第7至14天之间，切割已鉴定出的没有非色素出芽结构(buddingstructure)的色素斑块(pigmentedpatch)，并且转移至经0.1％明胶包被的板上(标作P0)。RPE细胞在“促神经”培养基(参见上文)中展开，并且每隔2～3天更换一次培养基，直至细胞融汇。细胞在0.05％胰蛋白酶-EDTA中解离，并且接种在新的经明胶包被的板上(被认为是第P1代)。

RNA提取和Taqman测定

使用NucleospinRNAII试剂盒(Macherey-nagel,法国)，按照制造商的方案提取总RNA，并且仅用NanoDrop分光光度计(ThermoScientific,法国)检验RNA的产量和质量。使用QuantiTect逆转录试剂盒(Qiagen)，遵循制造商的建议，由500ng总RNA合成cDNA。然后，将合成的cDNA以1/20稀释在无脱氧核糖核酸酶(Dnase)的水中，然后进行定量PCR。使用定制的Array96-WellFast(阵列96孔快)板和GeneexpressionMasterMix(基因表达主混合物)(AppliedBiosystems)，遵循制造商的说明书，在AppliedBiosystems的实时PCR系统(7500FastSystem)上进行qPCR分析。用于扩增的所有引物和标记有FAM的MGB探针都购自AppliedBiosystems(LifeTechnologies,法国)。结果针对18S进行标准化，并且在三次独立实验中，基因表达的量化基于ΔCt法进行。来自人类成体RPE细胞的对照RNA对应于在小窝水平，分离自解剖的视杯的RPE细胞。

冷冻切片、免疫染色和图像的获取

对于冷冻切片，视网膜样结构在4℃，4％多聚甲醛(PFA)中固定15min，并且在PBS中进行清洗。结构在4℃，在PBS/30％蔗糖(Sigma)溶液中孵育至少2小时。将结构包埋在PBS、7.5％明胶(Sigma)、10％蔗糖溶液中，并且在-50℃在异戊烷中冷冻，并收集10μm厚的冷冻切片。

如之前所述(Rogeretal.2006)，对切片进行免疫荧光染色。简单来讲，载玻片在室温与封闭溶液(PBS,0.2％明胶和0.25％TritonX-100)孵育1hr，然后在4℃与一抗(参见表2)孵育过夜。载玻片在具有Tween0.1％的PBS(PBT)中清洗三次，然后与适当的二抗孵育1小时，该适当的二抗缀合有AlexaFluor488或AlexaFluor594(LifeTechnologies)，并且以1:600稀释在具有1:10000DAPI的封闭缓冲液中。使用配备有CCDCoolSNAP-HQ相机(RoperScientific)的DM6000显微镜(Leica)，或使用配备有405、488和543nm激光器的OlympusFV1000激光共聚焦显微镜，来捕获荧光染色信号。使用1.55或0.46μm步长来获取激光共聚焦图像，并且每次获取是2～4个叠层或4～8个光学切面的投影。

表2、用于免疫组织化学分析的抗体的列表

畸胎瘤形成的测定

如之前所述的(Griscellietal.,2012)，使用略微改变进行畸胎瘤形成测定。简单来讲，将1×10⁶至2×10⁶个细胞注射到6周龄NODScidγ(NSG)小鼠(CharlesRiver)的后腿肌肉中。在9周至10周之后，对畸胎瘤进行解剖，并且在4％多聚甲醛中进行固定。然后，将样品包埋在石蜡中，使用苏木精和曙红对切片进行染色。

吞噬测定

从猪眼中提纯光感受器外节(POS)，并且按照建立好的程序(2)，通过与0.1mg/mlFITC(同分异构体-1)孵育而用荧光染料进行共价标记。将第3代的RPE-J(永生化的大鼠RPE细胞系)和第1代的hiRPE细胞放置于96孔组织培养板的各个孔中。每一孔都分层堆积有100μL含有1×10⁶个POS颗粒，并且在32℃(RPE-J)或37℃(hiRPE)孵育3小时，之后使用含1mMMgCl₂和0.2mMCaCl₂的PBS(PBS-CM)冲洗孔三次。对于内在化颗粒独有的检测，通过在PBS-CM的0.2％台盼蓝中孵育10min，对表面结合的FITC-POS的荧光进行选择性淬火，然后进行细胞固定。通过在冰冷的甲醇中孵育5min，使细胞固定，然后再水合，并且在室温与DAPI孵育10min。使用InfiniteM1000Pro(Tecan)酶标仪(platereader)，对荧光信号进行量化。RPE-J细胞系用作吞噬活性的阳性对照，而hiRPE细胞在不存在POS的情况下用作阴性对照。

统计分析

使用非参数弗里德曼检验(nonparametricFriedmantest)，然后进行多恩多重比较检验，或对所有的成对分析都使用曼-惠特尼检验(Mann-Whitneytest)(Prism6，GraphPad软件)，来进行方差分析。P<0.05的值被认为在统计学上是显著的。

1.2结果

人类无整合iPS细胞的生成和特化。

使用编码OCT4、NANOG、SOX2、LIN28、KLF4和cMYC的三种质粒对成体人类真皮成纤维细胞(AHDF)进行共转染，其中这三种质粒对应于之前Yuetal.(2009)所述的质粒载体。在之前被描述为加速重编程过程且降低游离体载体的丢失(Zhangetal.2012)的小分子的存在下(图1A)，将转染的成纤维细胞培养在“iPS培养基”中。在转染后第30至40天之间，ES样集落首先变得近似可见，具有紧凑排列的穹状结构(图1B)。当拾取和展开时，这些hiPS细胞集落示出典型的人类ES细胞的形态。这些hiPS细胞的分析证明，克隆发展出碱性磷酸酶(AP)活性，同时表达多能性标记物Nanog、TRA-1-81、OCT4和SSEA4(图1C～E)。基于qRT-PCR的TaqMan探针显示，表达多能性基因在各成纤维细胞群上都显著增加，并且与在人类ES细胞中所看到的相当(图1I)。如基于qRT-PCR(图1J)的TaqMan探针和在培养两周之后对拟胚体进行免疫组织化学(图1F～H)所观察到的，iPS集落可在体外分化成所有三个胚层的衍生物。此外，人类iPS细胞系显示出正常的染色体组型(图1K)。如对游离体中的OriP位点进行的RT-PCR分析(图1L)所证明的，hiPS细胞没有示出转基因的基因组整合，并且在15次传代之后，已经完全丢失了游离体载体。通过畸胎瘤形成测定，证实了人类iPSC细胞系具有多能性。

hiPS细胞向具有眼区特性的神经上皮样结构的分化

因为iPS细胞分化的必要条件是关闭自我更新机制，所以从培养基中去除FGF2，以刺激融汇的iPS细胞的自发分化。如Greberetal.(2011)在人类ES细胞中所精确证明的，FGF2从培养基中的收回还可能促使神经外胚层的诱导。为了有利于hiPS细胞向神经外胚层谱系的这种分化，将集落培养在包含DMEM/F12培养基的促神经培养基中，该DMEM/F12培养基具有1％MEM非必需氨基酸和1％N2补充物(图2A)。这导致在4天内出现色素集落。在7天之后，开始出现相光结构，近似超过色素细胞斑块的一半(图2B)。在两周内，所以这些结构都组织成被色素细胞斑块部分环绕的神经上皮样结构(图2C)，对应于1～2个结构/cm²。其它色素集落不发育成神经上皮样结构，并且在无色素区域中很少观察到这些结构的形成。在第14天，基于qRT-PCR的TaqMan探针显示，所有形成的神经上皮样结构都丢失了多能性相关基因OCT4(POU5F1)的表达，而获取了与眼区特化相关的转录因子(诸如LHX2、RAX、PAX6、SIX3)的表达(图2D)。神经上皮样结构的免疫染色证明，所有细胞都共表达PAX6和RAX(图2E～G)，具有眼区细胞的特征((MathersandJamrich2000)。几乎所有的细胞都是LHX2阳性的(图2H、2J)，并且使用细胞增殖标记物Ki67证实了它们的祖细胞状态(图2H～J)。qRT-PCR进一步证明，MITF和VSX2的表达在第14天分别增加了10倍和100倍(图2D)，其中MITF和VSX2是在视泡/视杯形成过程中参与视网膜特化的两个转录因子(Horsfordetal.2005)。免疫组织化学显示出VSX2和MITF表达的相反梯度，在神经上皮样结构中具有VSX2的最强染色，同时在该结构的外周色素部分中发现最强的MITF表达(图1K～O)。总起来讲，这些发现证明，神经上皮样结构具有神经视网膜祖细胞典型的标记物表达谱，并且可被重命名为神经视网膜(NR)样结构。有趣的是，qRT-PCR显示出早在培养14天之后，光感受器前体的转录因子(诸如NRL和CRX)的表达就在NR样结构中增加了5倍(图2D)，这暗示一些视网膜祖细胞可能已经参与了光感受器谱系。

基因表达分析显示出，在融汇的hiPSC培养物中，Wnt和BMP拮抗物、DKK1和NOGGIN的外源表达，并且这两个基因在神经上皮样结构的形成过程中都被上调(图2P)。

来源于hiPS细胞的视网膜祖细胞有效分化成视网膜神经元

在第14天，机械分离整个结构(图2C)，并且在3D搅拌下作为漂浮结构进行进一步培养(图3A)，其中该整个结构对应于具有围绕的细胞色素斑块的NR样结构。在FGF2存在下，培养漂浮的结构，以有利于神经视网膜的分化，而不是分化成RPE谱系(Fuhrmann2010；Martínez-Moralesetal.2004)。在分离之后一天(第15天)，NR样结构已经形成了空心球体，该空心球体的尺寸在培养中继续增大(图3B～D)。定量分析示出神经上皮的厚度在D17至D24之间，从139±19μm增加到251±41μm(图7)。发明人使用免疫组织化学和对从生长的球体分离的RNA进行qRT-PCR，分析了特异性视网膜表型的时间过程和获取。从第14至42天的分化过程中，仍然表达参与视网膜特化和分化的转录因子，诸如LHX2、RAX、SIX3、PAX6、VSX2和MITF(图3E)。在第21天，表达VSX2的细胞位于NR样结构的正在发育的神经上皮中，而MITF阳性细胞仅在该结构外周的RPE细胞中发现(图3G)。通过减少其mRNA在NR样结构中的表达(图1E)，证明RPE细胞中的MITF表达受到限制。VSX2阳性细胞主要沿神经上皮的外部定位，并且还表达PAX6(图3H)。PAX6阳性/VSX2阴性细胞聚集在神经上皮的内部，这可能对应于首先分化的视网膜神经元并且不携带增殖标记物Ki67。实际上，早在第21天，使用针对BRN3A(图3I)或钙网膜蛋白(CALRETININ)(图3M)的抗体在相同的内部位置中，通过免疫组织化学鉴定出神经节细胞和无长突细胞。在正在发育的神经上皮中，还发现对应于分化的水平细胞的LIM1阳性细胞(图3N)。OTX2和神经源性分化蛋白(NEUROD)1的表达在漂浮培养期间大大增加(图3E)，其中OTX2和NEUROD1是编码参与诸如光感受器的视网膜细胞分化的转录因子的两个基因(BassetandWallace2012)。免疫组织化学分析示出，OTX2在结构外周的RPE细胞中表达，并且OTX2阳性细胞出现在神经上皮中(图3I)，对应于光感受器的定向前体(Nishidaetal.,2003)。通过qRT-PCR证实，NRL和CRX表达从第14天至第42天大幅增加，从而证明分化成光感受器谱系(图3F和图6A)。CRX阳性细胞早在第14天就可在神经上皮中鉴定出来(图3J)，并且数量在第21天和第28天逐渐增加(图3K、图3L)。在这一阶段，通过恢复蛋白(RECOVERIN)免疫染色鉴定出光感受器前体(图3O)。

在第21天，在神经上皮中出现共表达OTX2的CRX⁺细胞(图6C～H)。在第28天，CRX基本表达在有丝分裂后的Ki67细胞中(图6M)。如预期的那样(Nishidaetal.,2003)，OTX2⁺定向的光感受器前体不表达PAX6(图6N)。所有这些数据证明，这些培养条件允许hiPS细胞在3周内分化成主要类型的视网膜细胞(神经节细胞、无长突细胞/水平细胞和光感受器)。此外，当对比两个不同的非整合hiPSC细胞系(hiPSC-1和hiPSC-2)时，这里开发的方案示出良好的重复性(图8)。

由hiPS细胞生成RPE细胞

假定从在促神经培养基中培养的融汇hiPS细胞快速出现细胞色素斑块，发明人试图分离它们并且使它们分化成RPE细胞。在第7天至第14天之间，细胞的色素斑块经机械选定，并且重新铺在经明胶包被的平板上进行扩增(图4A)。在三周至一个月之后，它们形成融汇的细胞单层，该融汇的细胞单层示出RPE细胞典型的鹅卵石形态(图4B～4C)。大部分细胞对于关键的RPE特异性转录因子MITF是具有免疫活性的，并且细胞与细胞的界面通过ZO-1排列，其中ZO-1是视网膜色素上皮细胞紧密连接的标记物(图4D)。qRT-PCR分析(对成体人类RPE细胞进行标准化)证明，在几次传代之后，hiRPE细胞保持与成熟RPE相关的标记物(诸如MERTK、RPE65、BEST1和PEDF)的表达(图4E)。为了确定hiRPE细胞是否有功能，测试了它们进行FITC标记的光感受器外节(POS)的吞噬作用的能力。检测到显著的吞噬活性，像对照的RPE-J细胞系一样有效，其中对照的RPE-J细胞系在3小时内具有平均30％的内在化的POS(图4F)。

实施例2：视网膜祖细胞向晚生(late-born)的视网膜细胞类型的分化

如由qRT-PCR所证明的，在漂浮的培养物中持续维持分离的NR样结构，允许RPC进一步分化成晚生的视网膜细胞类型(图9A～9E)。实际上，在首先表达了成熟的RGC细胞(BRN3A和BRN3B)、无长突细胞(钙网膜蛋白和GAD2)和水平细胞(LIM)的早生视网膜标记物(图9A和图9B)之后，观察到晚生的视网膜细胞类型的标记物的出现，对应于视锥细胞(R/GOPSIN、BLUEOPSIN和CONEARRESTIN)和视杆细胞光感受器(RHODOPSIN和RECOVERIN)(图9C和图9D)、双极细胞(PKCα)和Müller胶质细胞(GLAST1)(图9E)。在第21天(图9F)至第42天(图9G)之间，大部分NR样结构丢失了它们的片状外观，并且发育出含有OTX2⁺、CRX⁺和RECOVERIN⁺细胞的内部玫瑰结，对应于分化的光感受器(图9G，图9J～9L和图6F～6H)，被表达RGC细胞(BRN3A和CALRETININ)、无长突细胞(CALRETININ和AP2)和水平细胞(LIM)的不同标记物的细胞包围(图9G～J)。有趣的是，在第42天，RECOVERIN⁺细胞表达细胞表面标记物CD73(图9L)，其中细胞表面标记物CD73是对用于移植的光感受器前体进行细胞分选的标记物(Eberleetal.,2011)。在第77天，PAX6仅存在于有丝分裂后的细胞(KI67^-)中的玫瑰结外部，这与它在RGC、无长突细胞和水平细胞中的表达一致(图9M)。到第112天之前，RHODOPSIN和R/G视蛋白(OPSIN)出现在NR样结构中，这反映出视杆细胞和视锥细胞的成熟(图9N)。在第112天，RECOVERIN⁺和RHODOPSIN⁺细胞通常位于剩余的玫瑰结的最内部(图10A和图10B)。有趣的是，使用连接纤毛标记物微管蛋白(TUBULIN)进行免疫组织化学显示出，在与RECOVERIN⁺细胞并列的玫瑰结的内腔区域中存在很薄的结构，这暗示形成了潜在的纤毛和光感受器外节(图10C和图10D)。两种其它晚生的视网膜细胞类型，双极细胞和Müller胶质细胞的分化也需要较长时间的培养(112天)，要分别通过PKCα染色(图9P)和通过谷氨酰氨合成酶(GS)和SOX9的共表达(图9Q)进行检测。因此，这些细胞培养条件允许从NR样结构中存在的RPC，以顺序的方式生成所有的视网膜细胞类型。

实施例3：通过Notch抑制来加速光感受器前体的生成

使用抗CRX和RECOVERIN的抗体进行的免疫组织化学分析证明，光感受器前体的数量在第14天(图3J)至第28天(图3L、图5B)之间逐渐增加。在第21天至第35天之间，NR样结构丢失了它们的层状结构，并且发育出含有CRX和RECOVRIN阳性细胞的内部玫瑰结(图5B)。有趣的是，在第21天，持续添加7天Notch抑制剂DAPT，足以显著增加CRX阳性细胞和RECOVRIN阳性细胞的数量(图5B)。从第28天至第35天，使用DAPT进行的后续处理也导致表达CRX和RECOVERIN的细胞数量大大增加(图5B)。在第21天至第28天之间，使用DAPT处理一周能提高光感受器前体的生成，因为与对照相比，第28天的CRX⁺和RECOVRIN⁺细胞的数量分别增加2.2倍和2.6倍(图5C)。同时，第28天的处理之后，在第28天通过Ki67染色评估的有丝分裂的祖细胞群体大大减少(3倍)(图5C)。在第28天至第35天之间，也评价了Notch抑制的效果，而不是持续暴露于DAPT，因为在DAPT处理之后，在第28天仍然维持少量的RPC。在这些条件下，Notch抑制还导致NR样结构内的光感受器前体数量增加，即在第35天，CRX⁺和RECOVRIN⁺细胞的数量分别增加了1.7倍和4.1倍(图5D)。有趣的是，在DAPT处理之后的该时间，可清楚地鉴定出视锥细胞(CONE)-ARRESTIN⁺细胞(正常在第35天检测不到)(未示出)。此外，qRT-PCR分析证实，在DAPT处理之后，在第35天，CONE-ARRESTIN表达增加，同时没有观察到RHODOPSIN、BLUEOPSIN(蓝视蛋白)或G/ROPSIN基因表达的显著变化(图5E)。在DAPT处理之后，降低了GLAST1的表达(图5E)。

这些发现证明，Notch信号传导减缓了从hiPS细胞的光感受器分化，如最近对于hES细胞所提出的(Nakanoetal.2012)，因此它的抑制有利于光感受器分化并且加速了从多能性RPC生成光感受器前体。

实施例4：讨论

本研究示出，在无血清的促神经培养基中进行融汇hiPSC的简单培养的新发现足以在2周内生成NR样结构和RPE细胞。本文中描述的过程避免了以下步骤：EB的形成和选择；添加诱导分子，诸如DKK1、NOGGIN和WNT和/或基质胶；以及EB涂敷在附着基质上。早期生成的结构存在通过PAX6和RAX的共表达显示的OV表型，以及VSX2和MITF在神经上皮和RPE之间的相对梯度。这种效率可能部分是由于：融汇的hiPSC内源性产生的DKK1和NOGGIN增加，其中DKK1和NOGGIN是神经和视网膜特化的两种诱导因子，通常添加它们用于hESCS或hiPSC的视网膜分化(Meyeretal.,2011；Boucherieetal.,2013)。然而，之前的研究报道了添加至培养基或存在于基质胶中的IGF-I可将hESC导向视网膜祖细胞(Lambaetal.,2006；Zhuetal.,2013)，这暗示已经存在于N2补充物中的胰岛素足以在上述条件下起到类似作用。

分离的hiPSC来源的NR样结构的漂浮培养物，允许RPC以与脊椎动物体内的视网膜发生(retinogenesis)一致的顺序方式，分化成所有的视网膜细胞类型，这证明了hiPSC来源的RPC的多能性。有趣的是，发明人还报道了，当RPC用于光感受器谱系时，抑制Notch的途径明显提高了NR样结构中的光感受器前体的比例，其中CRX⁺细胞增加了两倍。使用Notch抑制剂DAPT处理一周，确实足以诱导大部分RPC退出细胞周期，这允许在35天之后，生成约40％的表达视锥前体标记物的CRX+光感受器前体。这种策略对于有效生成具有治疗应用的细胞是有利的。NR样结构不内陷形成双层杯，如Nakanoetal.(2012)使用hESC在EBs/基质胶-依赖的方案中所完美报道的那样。hiPSC来源的结构直至第21天还维持层状构造，并且随后在中央区域中发育出含有光感受器样细胞的玫瑰结，被具有视网膜内核层-特异性特征的细胞和RGC细胞围绕。但是，生成成熟且分层的NR组织并不是未来基于纯化的光感受器前体或其他视网膜来源的细胞的细胞疗法策略所必需的。在本上下文中，本方案允许在42天内生成用于移植的有前途的候选物，即CD73⁺光感受器前体。这样的前体之前已经进行了纯化，并且被成功移植在小鼠的视网膜中(Eberleetal.,2011)。组合NOTCH抑制和CD73选择的可能性，使得能够分离大量可移植的细胞，从而有希望替代视网膜营养不良中的退化的光感受器。从NR样结构产生RGC的能力在治疗青光眼中具有重要的意义。除了生成视网膜神经元之外，本方案同时允许生成RPE细胞(hiRPE)，该RPE细胞(hiRPE)可容易地进行传代和扩增，同时保持它们的表型，接近它们的体内状态。本方案由此具有快速生成hiRPE细胞库的很大的可能性，用于未来治疗AMD和其它RPE相关的疾病。

以维持临床等级为目标，发明人通过游离体重编程生成了hiPSC，因为使用慢病毒载体具有基因毒性的风险。自体滋养层可用于维持hiPSC；无异源体系和无滋养层体系对于再生治疗将是优选的。从药理学角度看，hiPSC提供了有价值的潜力，以在药物发现的第一过程中描绘出新的化合物。hiPS来源的RPC和RPE细胞的增殖能力能确保新的细胞工具的发育，用于以鉴定出为了视网膜营养不良的未来治疗的特异性活性化合物为目标，进行基于表型和靶标的高通量筛选。

该新的方案提供了可容易改变规模的途径，以生成大量的RPE细胞和多能性RPC，而且该新的方案消除了通常使hiPSC分化成特定的视网膜谱系对耗时和劳动密集型手动步骤的需要。因此，在相对短的时段中，本文描述的方法产生了光感受器前体或RGC的来源，有希望产生了一种再生药剂和药品测试/药物筛选的新途径。这种使用hiPSC的策略还提供了研究构成人类视网膜发育的基础的分子和细胞机制的时机，并且推进了人类视网膜退行性疾病的体外模型的发展。

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