检测舌癌组织中长链非编码RNA LOC284454表达量的试剂的应用

摘要

本发明公开了检测舌癌组织中长链非编码RNA？LOC284454表达量的试剂的应用，主要是用于制备舌癌辅助诊断或者疗效预测的实时荧光定量检测试剂。通过研究证实LOC284454在舌癌组织中表达上调，高表达LOC284454的舌癌患者比低表达LOC284454的舌癌患者预后差，因此，将LOC284454的表达用于舌癌患者的预后预测，可以为舌癌患者的预后提供强有力的分子生物学依据，具有深远的临床意义和重要的推广应用前景。

说明书

技术领域

本发明属于肿瘤分子生物学领域，具体涉及检测舌癌组织中长链非编码RNALOC284454 表达量的试剂用于制备舌癌辅助诊断或者疗效预测制剂的用途。

背景技术

人类基因组计划及其后续的DNA元件百科全书计划(TheEncyclopediaofDNAElements Project,ENCODE)研究成果表明，蛋白编码基因序列仅占人类基因组序列的1-3％，而人基因 组中绝大部分可转录的序列为长链非编码RNA(Longnon-codingRNA,lncRNA)。LncRNA广 泛地存在于各种生物中，且随着生物复杂程度的升高，基因组中lncRNA序列的比例也相应地 增大，提示lncRNA在生物进化过程中有重要意义。随着lncRNA不断被发现，它们的功能逐 渐被诠释，科学家们发现lncRNA广泛而活跃地参与到生命活动不同层面的功能调控中，作为 一个崭新的领域，已经成为国际生命科学研究领域新的前沿与热点。

LncRNA可作为功能蛋白质的信号(signal)、诱导(guide)、诱饵(decoy)或支架(scaffold)分子 等多种方式，在染色质重构、基因转录、翻译及蛋白修饰等多重水平调控基因的表达，并在 包括发育、免疫、生殖等基本生理过程中扮演了不可替代的角色，更重要的是，lncRNA的表 达与功能失调已经与包括恶性肿瘤在内的人类多种疾病紧密联系在了一起。因此，深入研究 lncRNA的功能，揭示由lncRNA介导的遗传信息传递方式和表达调控网络，不仅可以从蛋白 编码基因以外的角度重新注释和阐明基因组的结构与功能，深入发现生命活动的本质和规律， 还有望从一个新的视角认识包括肿瘤在内的多种人类常见疾病的发病机理，并为这些疾病的 诊断与治疗提供新的分子标志物与治疗靶点。

舌癌是最常见的口腔癌，男性多于女性。舌癌多数为鳞癌，多发生于舌缘，其次为舌尖、 舌背及舌根等处，常为溃疡型或浸润型。一般恶性程度较高，生长快，浸润性较强，常波及 舌肌，致使舌运动受限，使说话、进食及吞咽均发生困难。肿瘤的发生发展是多基因参与、 多步骤、多阶段的复杂过程，LncRNA在舌癌的发生发展过程中可能也起到了重要的作用。 最近我们在舌癌中发现lncRNALOC284454(NCBIaccessionnumber:NR_036515)在舌癌中 表达显著上调，LOC284454表达高的患者更容易发生转移，其生存时间短于该lncRNA表达低 的患者，因此针对该lncRNA的检测制剂也可以用于舌癌的预后判断。

发明内容

本发明的目的是提供检测舌癌组织中长链非编码RNALOC284454表达量的试剂用于制备 舌癌辅助诊断或者疗效预测制剂的用途。

检测舌癌组织中长链非编码RNALOC284454表达量的试剂的应用，所述的试剂用于制备 舌癌辅助诊断或者疗效预测制剂；该长链非编码RNALOC284454的序列如SEQNO:1所示。

所述的舌癌辅助诊断或者疗效预测制剂为实时荧光定量检测试剂。

所述的实时荧光定量检测试剂中包含用于实时荧光定量检测LOC284454表达的引物序 列：

正向引物：5’-AGCCATCCTCCCACCTTAGT-3’，

反向引物：5’-TCCTCAGTCCCACCCAGAAA-3’。

所述的实时荧光定量检测试剂中包含内参基因GAPDH特异性PCR引物：

正向引物5’-ACCACAGTCCATGCCATCAC-3’

反向引物5’-TCCACCACCCTGTTGCTGTA-3’。

本发明通过实时荧光定量PCR技术检测lncRNALOC284454在舌癌患者(167例)和舌 癌癌旁组织(45例)中的表达情况；LOC284454在舌癌中的表达比癌旁组织中显著提高，还 通过原位杂交在舌癌和舌癌癌旁上皮存档石蜡组织标本中发现LOC284454在舌癌中表达显 著上调，且LOC284454的表达与预后密切相关，LOC284454表达高的患者生存时间更短， 提示LOC284454可作为舌癌预后预测的分子标志。本发明为舌癌的辅助诊断和预后预测提供 了强有力的分子生物学工具，具有深远的临床意义和重要的推广应用前景。

附图说明

图1为实时荧光定量PCR技术检测lncRNALOC284454在舌癌患者(167例)和舌癌 癌旁组织(45例)中的表达情况；LOC284454在舌癌中的表达比癌旁组织中显著提高，p< 0.001；

图2为原位杂交检测LOC284454在舌癌及舌癌癌旁上皮中的表达情况；

舌癌癌旁组织中表达水平较低(30.2％，13/43)，而在52.7％的舌癌(148例舌癌组织中 的78例)中检测到有LOC284454的表达，P<0.001。

图3为舌癌中LOC284454的表达与舌患者预后的关系，

舌癌中LOC284454的高表达与舌癌患者的不良预后相关，即LOC284454高表达的患者 总的生存时间(Over-allsurvival)要明显低于LOC284454低表达或不表达的患者。

具体实施方式

以下结合具体实施方式进一步说明本发明，而非限制本发明。

实施例1，实时荧光定量PCR法检测证实LOC284454在舌癌中表达上调

1.材料与方法：

收集45例舌癌癌旁和167例舌癌组织，抽提总RNA，1μgRNA经逆转录成cDNA后， 进行实时荧光定量PCR。LOC284454正向引物为5’-AGCCATCCTCCCACCTTAGT-3’，如 SEQNO:2所示，和反向引物5’-TCCTCAGTCCCACCCAGAAA-3’。如SEQNO:3所示。

用于对照的GAPDH正向引物为5’-ACCACAGTCCATGCCATCAC-3’如SEQNO:4所示， 和反向引物5’-TCCACCACCCTGTTGCTGTA-3’，如SEQNO:5所示。

实时荧光定量PCR反应体系

实时荧光定量PCR反应步骤

反应结束后确认实时荧光定量PCR的扩增曲线和熔解曲线，各基因的表达强度根据CT 值(thresholdcyclevalues)、内参基因(GAPDH)标化后，采用groupt-test检验计算P值。

2.结果

LOC284454在舌癌癌旁对照组织中不表达或者表达很低，而在舌癌组织中高表达 P<0.001(图1)

实施例2，原位杂交检测发现LOC284454在舌癌中的表达与患者预后相关

1.材料方法

1.1设计并合成杂交探针

为了采用原位杂交方法检测LOC284454的表达情况，我们设计了针对原位杂交检测 LOC284454表达的寡核苷酸探针及阳性对照两组原位杂交寡核苷酸探针各3条。

用于原位杂交检测LOC284454表达的寡核苷酸探针：

LOC284454探针1：5’-CCAACATGGCGAAACTCGGTCTCTACTAAAAATAC-3’如 SEQNO:6所示，

LOC284454探针2：5’-ACCCCGTCTCTACTAAAAATACAAAGATTAGCCGG-3’如 SEQNO:7所示，

LOC284454探针3：5’-TTATTTACTTGAACAACAGACATGACACACAGCAC-3’如 SEQNO:8所示。

阳性对照探针(检测看家基因GAPDH)：

GAPDH探针1：5'-CCACTTTACCAGAGTTAAAAGCAGCCCTGG-3'，如SEQNO:9所 示，

GAPDH探针2：5'-CAGTAGAGGCAGGGATGATGTTCTGGAGAG-3'，如SEQNO:10所 示，

GAPDH探针3：5'-GTCAGAGGAGACCACCTGGTGCTCAGTGTA-3'，如SEQNO:11所 示。

采用化学合成方法合成上述设计的各基因特异性寡核苷酸探针序列。

1.2寡核苷酸探针标记试剂盒和原位杂交检测试剂

地高辛寡核苷酸加尾试剂(DigOligonucleitideTailingKit2^ndGeneration，Roche公司)， 抗地高辛-辣根过氧化物酶复合物检测试剂盒(Anti-Digoxigenin-POD，Fabfragments，Roche 公司)，增强原位表达检测信号的TSA信号放大系统(TSA^TMBiotinSystem，NEL700试剂盒， PerkinElmer公司)，DAB染色试剂盒(北京中山公司)，20x柠檬酸钠缓冲溶液(salinesodium citrate,SSC)，硫酸葡聚糖(Dextransulphate)，去离子甲酰胺(DeionizedFormamide)，多聚 腺苷酸(polyadenylicacid，PolyA)，多聚脱氧腺苷酸(polydeoxyadenylicacid，PolydA)， 变性剪切的蛙精DNA(denaturedandshearedsalmonspermDNA，ssDNA)，酵母转运RNA(yeast t-RNA，tRNA)，二硫苏糖醇(DTT)，50x邓罕氏缓冲液(Denhardts’ssolution)，磷酸缓冲液 (PBSbuffer)，胃蛋白酶K，牛血清白蛋白(BSA)，三乙醇胺(TEA)，TNBBuffer(0.1MTris-HCl， pH7.5，0.15MNaCL，0.5％BlockingReagent)，TNTBuffer(0.1MTris-HCl，pH7.5，0.15M NaCL，0.05％Tween20)，醋酸酐，阻断试剂(Blockingreagentagent，Roche公司)。

1.3其他主要试剂和材料

无水乙醇、90％酒精、70％酒精、50％酒精、松节油、双蒸水、PBS缓冲液(pH7.2～7.4， NaCl137mmol/L，KCl2.7mmol/L，Na₂HPO₄4.3mmol/L，KH₂PO₄1.4mmol/L)；3％甲醇-双氧 水溶液(80％甲醇和30％双氧水配置)；0.01mol/L柠檬酸盐缓冲液(citratebuffer,CB， pH6.0±0.1，9ml0.1M柠檬酸溶液和41ml0.1M柠檬酸钠溶液加入450ml蒸馏水中临时配置 后再校正工作液pH值)；0.1％胰蛋白酶；苏木素；1％盐酸酒精(1ml浓盐酸+99ml70％酒 精配置)；封片胶(PTSCureMountⅡ)；专用盖玻片(480×240mm²)定制于郑州玻璃仪器 厂。Leica低熔点(58℃)石蜡，国产蜂蜡，无水酒精，二甲苯，10％中性多聚甲醛(0.01mol/L, pH7.4，DEPC双蒸水和PBS缓冲液配制)，苏木素，伊红，中性封片树胶，盖玻片，载玻片。

1.4标记探针

利用3-tailingDIGOlignucleutideKit进行寡核苷酸探针标记，反应体系如下。

混匀，稍离心。37℃水浴反应30min，加2μlEDTA(0.2M，PH8.0)中止反应。

1.5寡核苷酸探针标记后纯化

为了增加标记探针的纯度，需对已标记的探针进行纯化，具体操作如下：

1)探针反应混合物(22μl)+2.5μl4MLiCL+75μl100％冷乙醇(-20℃).

2)-70℃沉淀60min，or-20℃2h。

3)13.000×g4℃离心15min。

4)弃上清，用50μl冰冷的70％(V/V)乙醇洗涤。

5)13.000xg4℃，离心5min。

6)弃上清，真空4℃干燥。

7)用无菌双蒸水重溶探针。

1.6原位杂交检测存档石蜡切片中LOC284454的表达

石蜡切片杂交前处理

1)4℃保存的石蜡切片置于58℃烤片30min，熔化表面石蜡。

2)二甲苯依次脱蜡3×5min。

3)梯级酒精洗涤，100％酒精2×2min→95％酒精1×5min→70％酒精1× 5min→50％酒精1×5min→DEPC水洗涤2×3min→DEPC-PBS洗涤2×5min。

4)滴加300μl胃蛋白酶K(10μg/ml)于切片上，37℃消化20min。

5)切片入PBS(0.1MPBS+2mg/ml谷氨酸)洗涤1min，中止反应。

6)切片入0.2NHCL，于37℃反应20-30min，增加组织的通透性。

7)切片用4％多聚甲醛(0.1MPBS溶解)后固定10min，室温。

8)为了增加组织阳性杂交强度，对切片进行乙酰处理。切片入0.25％乙酸酐BufferⅠ (0.1M三乙醇胺)，室温10min。

9)1MPBS洗涤2×5min。

预杂交和杂交

预杂交：-20℃保存的预杂交液，先置于37℃孵育60min，预杂交液的用量为50μl，石 蜡膜履盖切片，37℃湿盒中预杂交2小时。(预杂交液成份包括：2XSSC，10％Dextransulphate， 1XDenhardt’ssolution，50mMPhosphateBuffer(PH7.0)，50mMDTT，250μl，100μg/mlpolyA， 5μg/mlpolydA，250μg/mlyeastt-RNA，500μg/mlssDNA，47％Deionizedformamide)。

1)移去石蜡膜，甩掉预杂交液，切片置于2×SSC中5min。

2)杂交反应：37℃杂交过夜(18-20h)。每一切片加入250μl杂交液并用石蜡膜履盖。预 杂交液中加入相应的探针就成为杂交液。杂交液在预杂交时配制，放置37℃孵育， 使探针充分溶解于杂交液中，本实验用多条寡核苷酸探针混合，按每一探针500ng/ml 浓度配制成探针杂交液。地高辛加尾标记试剂盒标记探针浓度计算依据：每一探针 的浓度按其与阳性定量探针时检测反应时显色进行比对和100pmol30个碱基的裸探 针标记反应理论探针产量为900ng两种标准进行综合计算出标记探针的浓度。

3)杂交后洗涤，切片浸入2×SSC，10min，揭去石蜡膜。依次于摇床上摇动洗涤，2 ×SSC(0.5％SDS)，2×15min→0.25×SSC(0.5％SDS)，2×15min。

杂交后显色检测反应

1)采用Anti-Digoxigenin-POD检测地高辛探针与mRNA结合复合物；TSA放大系统增 强原位杂交反应显色反应的阳性信号，DAB显色。

2)切片转至TNT缓冲液中，3×5min。

3)滴加TNB阻断缓冲液，300μl/TMAs，室温，30min。

4)吸去多余阻断剂，1:100稀释的Anti-Digoxigenin-POD(TBS+0.1％TritonX-100+1％阻 断剂)，室温4小时。

5)TNTBuffer(0.1MTris-CL，pH7.5，0.15MNaCL，0.05％Tween20)洗涤，3x5min。

6)切片上滴加信号放大试剂BiotinylTyamid，300μl/TMAs，(BiotinylTyramid贮存液： BiotinylTyramid溶解于0.2mlDMSO，BiotinylTyramid工作液：1×稀释液，1:50稀 释BiotinylTyramid贮存液)，室温10分钟。

7)TNT洗，3×5min。

8)切片滴加SA-HRP(链霉卵白素-辣根过氧化物酶)，300μl/TMAs，室温30min。

9)TNT洗，3×5min。

10)蒸溜水洗涤，1×1min。

11)DAB显色，显微镜下控制显色反应。

12)苏木素复染，

13)酒精梯级脱水，切片干燥。

14)滴加封片胶，相应规格的盖玻片盖片，紫外灯下交联切片1min。

1.7结果判断及标准

应用光学显微镜分别在低倍和高倍镜下进行观察，首先观察目标RNA的阳性表达信号在 观察目标细胞内的定位：位于细胞核、细胞浆或细胞膜。

再分别以该检测RNA表达部位阳性信号的强度和阳性表达的细胞数两种标准进行综合评 分，判断标准为：(1)依据阳性细胞染色强度判断：a.细胞无染色，记0分；b.细胞染成浅棕 色为弱阳性，记1分；c.细胞染成棕色且无背景着色，或细胞染成深棕色并有浅棕色背景为中 等阳性，记2分；d.细胞染成深棕色且无背景着色为强阳性，记3分。(2)依据阳性细胞表达 数计分：a.无阳性细胞表达，记0分；b.阳性表达细胞数≤25％，记1分；c.25％＜阳性细胞数＜ 50％，记2分；d.阳性表达细胞数≥50％，记3分。

为了尽量降低评分结果的主观因素，由两位病理学专家分别按上述标准之一各自进行判 断和评分，再将两者评分相乘，结果为：①0分者最终计为0分，认为阴性表达；②1分和2 分者最终计为1分，认为弱阳性表达；③3分和4分者最终计为2分，认为中等阳性表达；④6 分到9分者最终计为3分，认为强阳性表达。

1.8分析和统计软件

应用SPSS13.0统计软件对实验结果进行统计学分析，两两比较用χ²test或Fisherexacttest， 相关性分析采用Spearmencorrelation方法；P＜0.05即差异有统计学意义。生存曲线分析采用 Kaplan-Meiermethod及log-ranktest；多变量分析采用Cox’sproportionalhazardsmodel；P＜0.05 即差异有统计学意义。

2结果

2.1LOC284454在舌癌中的表达比舌癌癌旁组织中的表达显著升高

LOC284454在52.7％的舌癌组织(78/148例)中高表达，而仅在30.2％的舌癌癌旁组织 中(43例中的13例)有表达(图2)，两者之间具有明显的统计学差异(P<0.001)。

2.2LOC284454高表达的舌癌患者预后较差

对148例舌癌患者进行了电话随访，详细询问了他们的首发时间、治疗情况、有无复发、 有无再患其他疾病、复发及死亡时间等，并登记了生存时间和状态，并对舌癌组织中 LOC284454的表达与病人的生存时间和状态进行的生存分析，发现LOC284454高表达患者 平均生存时间明显短于LOC284454低表达或不表达的患者(图3)。说明LOC284454是一个 与舌癌预后相关的分子标记，该lncRNA表达高，病人预后差。