法律状态公告日
法律状态信息
法律状态
2018-10-09
授权
授权
2016-01-06
实质审查的生效 IPC(主分类):C12N15/29 申请日:20150712
实质审查的生效
2015-12-09
公开
公开
技术领域
本发明属于植物分子生物技术领域,具体涉及红花香雪兰花瓣分离得到的两个具有功能的,与花朵花色苷合成相关的MYB转录因子(FhPAP1L1和FhPAP1L2)的cDNA序列及其氨基酸序列。
背景技术
影响植物颜色的主要有三大类色素:花色苷、类胡萝卜素和甜菜素。人们对于花色苷的研究抱有极大的兴趣,这源于其对植物生理和人类健康起着非常重要的作用。花色苷是由一系列酶催化合成,这些酶则由相对应的结构基因控制,研究表明:这些结构基因的表达由一个复杂转录调控网络调控,其中MYB转录因子是MBW(MYB-bHLH-WDR)转录因子复合物的重要成员,它发挥着特异性调节的作用。植物MYB转录因子家族是一个具有不同调控功能的大家族,它们对于激活特定的下游基因的表达发挥重要作用。根据MYB蛋白保守结构域的不同,MYB可以分为R2R3MYB和R3MYB等。
到目前为止,人们已经在很多植物中克隆得到正调控花色苷合成的R2R3MYB,如金鱼草,拟南芥,甘蓝,辣椒,甜橙,淫羊藿,山竹,龙胆,非洲菊,甘薯,牵牛,苹果,苜蓿,杨梅,烟草,矮牵牛,西洋梨,沙梨,碧桃,番茄,马铃薯和葡萄等,但是这些都属于双子叶植物,在单子叶中只有从百合,蝴蝶兰和玉米中克隆得到了花色苷合成相关的MYB转录因子。本发明中涉及到的FhPAP1L1和FhPAP1L2基因是从单子叶植物香雪兰中克隆得到的,编码与植物花色苷合成相关的MYB转录因子,具体说该基因是正调控植物花色形成的转录因子,能促进花色苷的合成,与花色行成密切相关。
发明内容
本发明首次从红花香雪兰花瓣中克隆得到两条正调控花色苷合成的MYB转录因子(FhPAP1L1和FhPAP1L2)的cDNA序列,并推测得到了其编码的氨基序列。在拟南芥和烟草中过量表达FhPAP1L1和FhPAP1L2可以明显地增强植物组织的着色,从而确定其参与正调控植物花色苷合成的功能。
本发明的主要目的是提供已经得到功能验证的编码FhPAP1L1和FhPAP1L1的cDNA序列和由此推断的氨基酸序列。
本发明的技术方案:
为了从首次从香雪兰中克隆得到FhPAP1L1和FhPAP1L2基因,本发明人首先利用拟南芥中PAP1序列作为诱饵,对实验室已建立的红花香雪兰花朵盛开时期转录组文库进行本地Blast,筛选与拟南芥中同源性较高的序列。分离得到了长度为212bp的FhPAP1L1片段,分析该序列显示:此片段与Toreniafournieri的R2R3MYB同源性最高,达到67%,并且该片段包含ATG起始密码子,随后利用RACE法克隆该基因的3'端序列,得到包含TAA终止密码子的长度为717bp的片段,此片段与Elaeisguineensis的MYB75-like同源性最高,达到47%。将上述两条序列拼接,得到全长cDNA序列,接着利用红花香雪兰花瓣总RNA作为模板,设计引物进行RT-PCR,克隆得到929bp的全长FhPAP1L1基因,该基因开放阅读框架长702bp,编码233个氨基酸,蛋白质的分子量推测是27,023Da,等电点为6.23。序列分析表明:此基因与Elaeisguineensis的MYB75-lke同源性最高,达到52%。另外,我们还分离到了长度为755bp的FhPAP1L2片段,序列分析显示:该片段包含ATG起始密码子和TAA终止密码子。提取红花香雪兰花瓣总RNA作为模板,进行RT-PCR,克隆得到755bp的全长FhPAP1L2基因,开放阅读框架长729bp,编码242个氨基酸,蛋白质的分子量推测是28,076Da,等电点为5.09。序列分析表明:此基因也与Elaeisguineensis的MYB75-like同源性最高,达到53%。
利用Gal4-GUS拟南芥原生质体瞬时转染体系检测了FhPAP1L1和FhPAP1L2的转录活性,结果表明:FhPAP1L1和FhPAP1L2均是转录激活子。
在pZP211双元表达载体中插入克隆得到的的FhPAP1L1和FhPAP1L2基因,并且转入到农杆菌GV3101细胞中,转染拟南芥和烟草。
分别运用蘸花法和叶盘法转染拟南芥和烟草,观察转基因植株表型变化。结果显示:转基因植株花色苷的合成显著增强,说明香雪兰中的FhPAP1L1和FhPAP1L2基因促进了花色苷的合成,初步证明我们克隆得到的基因是香雪兰中正向调控花色苷合成的MYB转录因子。
香雪兰FhPAP1L1和FhPAP1L2基因的cDNA序列及其编码的氨基酸序列信息如下:
其中1:FhPAP1L1基因的全长核苷酸序列(SEQIDNO.1)
ATCCAATATTCCTCCCCCTAATGTCTTATCTTGCATGATTCACAATTATGAAACATCAGTACTGCTCCGAGCTCCGACCTTCGGGCGTTCAGAATCGGAAAGGGGCATGGAACAAAGATGAAGATGAGCTGCTGAGGAAGTGCATTGAAAAGTATGGAATAGGGAAGTGGAGTACAGTTCCCATGAGGGCAGGACTAAGAAGGTGTCGCAAGAGCTGTCGTCTTCGCTGGCTGAACTATCTATCCCCTGACATCAACCGAGGAACCTTTAACGACGACGAAGACGACCTCATCCTTCGGCTTCACAAGCTCTTGGGCAATAGGTGGTCCCTAATTGCAGGCAGAATCCCCGGCAGGACGGCGAACGACATCAAGAACTACTGGAACTCTCACTTGGGCAAGAAAGCAGACACCGAGAGAAGGGTACCAGAGAAGACTGACAAGGCTGAGATTGTAAGGCCACAACCTCAAAGACCGACTTCGACGTGGATTTGGCCGAAGATTAATATTAATCCTCATCAAGAAACTGATCAATTAGGAACATCTGCCGTGGAGCCAAAACTGCCAACAGTCTTAGAGGAGGAAGAAGCATGGCTGAATGCTTTGATCACCGATGATTACAATGAGAATGTGGATGCCGCCTTTTCGGACTTCCATGGCTACGAGATAGGGGGAGGAATATTGGATGACACGCCTTTTTTCGAAGGAGTTACAGGATGGGAGGAACTATACCAGAGAACTGAAAATTAAGTTTAATTTTTCATTGTTCTAACAATACTGATATCTATATATATATTTTTTTTTTCCTTCGAAGATCAAAGATAGAAAGAAATGAGACCAGTTCCCCATTGTTGAAAAATAAAGGAATAAGGTTTATGTTTTAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAAATCGATGTCGACTCGAGTC
其中2:由FhPAP1L1基因核苷酸序列推测得到的蛋白质序列(SEQIDNO.2)
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其中3:FhPAP1L2基因的全长核苷酸序列(SEQIDNO.3)
AATGGATCTCAAAGCTTCAGCCCTTCGAAAAGGCGCATGGAGCAAAGAGGAAGACGACCTGCTAAGGAATTGTATCGATAAGTATGGAGAAGGGAAGTGGAGTTCCGTACCCGAACGTGCAGGGCTTAAAAGGTGTCGAAAGAGCTGTCGACTTAGATGGCTGAACTATCTTTCGCCGAAGATCAACCGAGGCAAGTTTTCGGATGACGAGATCGACCTCCTTATCAGGCTTCACAAGCTTCTAGGGAACAGGTGGTCGCTGATCGCGGGCAGAATCCCCGGTAGGACAGCGAACGACATCAAGAATTATTGGAACTCTCACCTGAGCAAGAGAGTGGAAGCAACAAAATGTAGGAGCAAAACTATAGATGCTCAAGTCGCGAGGCCAAATCCTGAGAGAGATTCCGCCAACTGGAGTTGGCCAACAAATATAGGAACAAATTATGGGAACAACTTGGAAGCAGAAGAAACCGAAATGCCGAAACTACGAACAAGTCAAGAGAATCAGGGAGAACGGTCAAATGATTTGATCATGGAGAATGGTTGGGAAGAGTTGATGCTGCATACTTCTGACGTGAGCTTACAGAATTTTCAGATAGACTTCAAGACACCGGAAATGGAGGAACTAACTGAGATGGAGGAACTAACTGAGGAACCAATCTCTCTGGGAGATGAAGGGAATGATTGGACTGCCATGGAAAACTATTTTTTTGATGAGCTCATTAGTTAAGAAAAAAATATATACTAAAATGCGG
其中4:由FhPAP1L2基因核苷酸序列推测得到的蛋白质序列(SEQIDNO.4)
MDLKASALRKGAWSKEEDDLLRNCIDKYGEGKWSSVPERAGLKRCRKSCRLRWLNYLSPKINRGKFSDDEIDLLIRLHKLLGNRWSLIAGRIPGRTANDIKNYWNSHLSKRVEATKCRSKTIDAQVARPNPERDSANWSWPTNIGTNYGNNLEAEETEMPKLRTSQENQGERSNDLIMENGWEELMLHTSDVSLQNFQIDFKTPEMEELTEMEELTEEPISLGDEGNDWTAMENYFFDELIS.
附图说明]
图1FhPAP1L1和FhPAP1L2保守结构域分析;
图2FhPAP1L1和FhPAP1L2系统进化分析;
图3FhPAP1L1和FhPAP1L2的转录激活活性分析;
图4FhPAP1L1转基因拟南芥表型变化;
图5FhPAP1L1转基因烟草表型变化;
图6FhPAP1L2转基因拟南芥表型变化;
图7FhPAP1L2转基因烟草表型变化。
具体实施方式
在下面的具体实施例子中进一步说明了本发明,这并不限制本发明的范围。
实施例1FhPAP1L1基因全长的克隆
[实施例1-1]目的片段的获得:根据拟南芥PAP1序列,进行本地Blast。筛选与拟南芥PAP1同源性较高的序列,并进行生物信息学分析,获得长度为212bp的片段,并包含起始密码子ATG。
[实施例1-2]FhPAP1L1基因3'序列的获得:根据转录组测序序列,设计特异性上游引物,即5'-GGCAGGACTAAGAAGGTGTCG-3';根据mRNA保守的polyA结构设计特异的下游引物:5'-AAAAAAAAAAAAAAAAATCGATGTCGACTCGAGTC-3'。用Trizol试剂盒提取红花香雪兰花朵盛开时期的总RNA,反转录生成cDNA的第一条链,以此作为模板进行RACE,得到的717bp的PCR产物。
[实施例1-3]FhPAP1L1基因全长序列的获得:根据上述测序得到的结果,设计特异的上游引物,即5'-CCTCCCCCTAATGTCTTATCTTG-3'和5'-ATATATAGATATCAGTATTGTTA-3'的下游引物。用Trizol试剂盒提取红花香雪兰花瓣的总RNA,反转录生成cDNA的第一条链,以此作为模板进行RT-PCR,得到FhPAP1L1基因全长序列。
实施例2FhPAP1L2基因全长的克隆
[实施例2-1]目的片段的获得:根据拟南芥PAP1序列,进行本地Blast。筛选与拟南芥PAP1同源性较高的序列,并进行生物信息学分析,获得755bp的FhPAP1L2片段,序列分析显示该片段包含ATG起始密码子和TAA终止密码子。
[实施例2-2]FhPAP1L2基因全长序列的获得:根据转录组测序序列,设计特异性上游引物,即5'-AATGGATCTCAAAGCTTCAG-3'和5'-CCGCATTTTAGTATATATTTTTTT-3'的下游引物。用Trizol试剂盒提取红花香雪兰花朵盛开时期的总RNA,反转录生成cDNA的第一条链,以此作为模板进行RT-PCR,得到的FhPAP1L2的基因全长序列。
实施例3FhPAP1L1和FhPAP1L2的转录活性检测
为了验证FhPAP1L1和FhPAP1L2的转录活性,利用Gal4-GUS为报告基因进行拟南芥原生质体瞬时转染,以GD-VP为阳性对照。分别将FhPAP1L1和FhPAP1L2的开放阅读框与GD(Gal4DNA结合区)融合,35S启动子驱动,克隆到pUC19载体上,构建成带有GD标签的蛋白序列。利用除内毒素质粒大提试剂盒提取质粒DNA,生长约四周的拟南芥叶游离出原生质体,效应基因GD-FhPAP1L1或者GD-FhPAP1L2分别和报告基因Gal4-GUS共转染拟南芥原生质体,室温黑暗孵育20-22h,检测GUS活性。结果表明:FhPAP1L1和FhPAP1L2均是转录激活子。
实施例4FhPAP1L1和FhPAP1L2基因在拟南芥和烟草中的表达
为了验证FhPAP1L1和FhPAP1L2蛋白功能,利用克隆得到的全长FhPAP1L1和FhPAP1L2基因作为模板,分别利用带有NdeI和ClaI酶切位点的引物进行PCR扩增。然后利用NdeI和ClaI两种限制性内切酶消化上述扩增得到的DNA片段,并将其克隆进到改良过的质粒pUC19上,再经EcoRⅠ单酶切后构建到质粒pZP211上。这样构建的重组质粒分别命名为pZP211-FhPAP1L1和pZP211-FhPAP1L2,并导入农杆菌GV3101细胞中。
培养所述的转化体,分别用蘸花法和叶盘法转化拟南芥Col和烟草K326。经Kan筛选转基因植株,并观察表型变化。
SEQUENCELISTING
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东北师范大学,高翔
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机译: Myb转录因子,异戊二烯编码的转基因编码Myb转录因子的羟甲基-CoA还原酶的表达调控方法和异戊二烯生产的多异戊二烯的生产方法
机译: MYB60基因,用于抑制花色苷生物合成转导MYB60基因的转基因生菜及其制备方法
机译: MYB转录因子调控植物基因表达