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蚕微孢子虫、核型多角体病毒和浓核病毒的三重荧光PCR检测方法及试剂盒和引物、探针

摘要

本发明属于生物检测技术领域,涉及家蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒的三重荧光PCR检测方法及试剂盒和引物、探针。本发明分别设计了各自的引物和探针,并在3个探针上标记了不同的荧光信号,在优化了PCR反应体系的条件下,实现三重荧光定量PCR同步检测蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒。不仅可实现DNA同步提取,也可以进行荧光PCR同步检测,大大简化了检测方法,并通过荧光补偿的程序,有效地消除了因荧光信号的交集而引起的假阳性。该方法能快速、特异和灵敏的一次性鉴别检测蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒,可提高早期检出率,有效防止疾病的传播,减少经济损失。

著录项

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2017-05-17

    未缴年费专利权终止 IPC(主分类):C12Q1/70 授权公告日:20130904 终止日期:20160329 申请日:20120329

    专利权的终止

  • 2015-06-17

    著录事项变更 IPC(主分类):C12Q1/70 变更前: 变更后: 申请日:20120329

    著录事项变更

  • 2013-09-04

    授权

    授权

  • 2012-09-26

    实质审查的生效 IPC(主分类):C12Q1/70 申请日:20120329

    实质审查的生效

  • 2012-07-25

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明属于生物检测技术领域,涉及家蚕微孢子虫(Nosema bombycis,Nb)、家蚕核型多角体病毒(Bombyx mori Nuclear Polyhedrosis Virus,BmNPV)和家蚕浓核病毒(Bombyx mori Densovirus,BmDNV)的三重荧光定量PCR检测方法及试剂盒和引物、探针。

背景技术

家蚕微孢子虫(Nosema bombycis,Nb)、家蚕核型多角体病毒(Bombyx mori Nuclear Polyhedrosis Virus,BmNPV)和家蚕浓核病毒(Bombyx mori Densovirus,BmDNV),分别是引起家蚕的微粒子病、核型多角体病和家蚕浓核病的病原体,均可造成世界蚕业巨大经济损失,甚至有可能同时混合感染。由于对上述蚕病缺少有效的控制手段,因此对病原微生物的早期检测鉴定非常重要,准确灵敏的检测方法能有效的防止疾病的传播,减少经济损失。

蚕微孢子虫属原生动物界微孢子虫门、微孢子虫纲、微孢子虫目、微孢子虫科、微孢子虫属。家蚕核型多角体病毒属杆状病毒科,真杆状病毒亚科,核型多角体病毒属,是双链DNA病毒。家蚕浓核病毒属细小病毒科,浓核病毒亚科,相同病毒属,是单链DNA病毒。

显微镜被广泛用于家蚕孢子虫的检测,但其特异性和灵敏度不高,检测速度和效率较低;而对家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒的检测,更加需要电子显微镜,检测速度和效率较低,也不能同时鉴别诊断。血清学鉴别法具有特异性强、灵敏度高的特点,但是存在比较高的交叉反应与非特异性反应,而且家蚕孢子虫是颗粒性抗原,血清学检测不稳定。随着分子生物技术的发展,上述3种病原体都可以通过在保守区域设计特异性引物,进行PCR检测。荧光实时定量PCR(Real-time PCR)是在PCR反应体系中加入荧光基团标记的探针,利用荧光信号积累实时监测整个PCR进程,最后通过扩增曲线对结果进行分析。TaqMan探针是常用的一种荧光标记方法,PCR扩增时在加入一对引物的同时加入一个特异性的TaqMan荧光探针,该探针为一寡核苷酸,两端分别标记一个报告荧光基团和一个淬灭荧光基团。探针完整时,报告基团发射的荧光信号被淬灭基团吸收;PCR扩增时,Taq酶的5'→3'外切酶活性将探针酶切降解,使报告荧光基团和淬灭荧光基团分离,从而荧光监测系统可接收到荧光信号,即每扩增一条DNA链,就有一个荧光分子形成,实现了荧光信号的累积与PCR产物形成完全同步。多重荧光定量PCR技术是指在同一个荧光定量PCR扩增试验中同时扩增多个目的基因,而每个目的基因采用不同波长的荧光探针进行检测,根据该原理设计特异性多重荧光探针,常用的荧光基团有FAM、TET、VIC、HEX、ROX等,可通过不同的荧光检测通道,同时检测多种荧光信号。 

发明内容

为了实现同步检测家蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒,本发明的第一个目的是提供蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒的三重荧光定量PCR检测用试剂盒;本发明的第二个目的是提供蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒的检测引物和探针;本发明的第三个目的是提供蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒的三重荧光定量PCR检测方法。本发明实现在家蚕中对上述3种病原微生物的快速早期鉴别诊断,由于引物和探针具有很高的特异性和灵敏度,提高了早期鉴别检测效率,并简化了检测方法。

为了实现上述的第一个目的,本发明采用了以下的技术方案:

蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒的三重荧光定量PCR检测试剂盒,该试剂盒包括Premix Ex Taq试剂、引物和探针,其中: 

1)家蚕微孢子虫的引物和探针

引物的序列如下:上游引物:AGTGCCATCGTTGCTGGTT,

下游引物:TGGGCCTTTCTTCTTTCCTAT;

探针的序列如下:FAM-ACCGCTAAGGAAACCCGCAAGGA-Eclipse;

2)家蚕核型多角体病毒的引物和探针

引物的序列如下:上游引物:ATCGCCATCGGACAACGCGG,

下游引物:GTGGCCGTCCGAATGCGTCT;

探针的序列如下:HEX-TTATGTCGGTGGATCGACAA-Eclipse;

3)家蚕浓核病毒的引物和探针

引物的序列如下:上游引物:GGTGGAAGTGGAAGTGGAAA,

下游引物:TTTCCACTCGATTGGCTTGT;

探针的序列如下:ROX-GGTGCAAGTAGAGGAGGTGC-Eclipse。

为了实现上述的第二个目的,本发明采用了以下的技术方案:

蚕微孢子虫荧光定量PCR检测用引物,该引物的序列如下:

上游引物:AGTGCCATCGTTGCTGGTT,

下游引物:TGGGCCTTTCTTCTTTCCTAT。

蚕微孢子虫荧光定量PCR检测用探针,该探针针对上述的引物扩增的基因片段,探针的序列如下:FAM-ACCGCTAAGGAAACCCGCAAGGA-Eclipse。

家蚕核型多角体病毒荧光定量PCR检测用引物,该引物的序列如下:

上游引物:ATCGCCATCGGACAACGCGG,

下游引物:GTGGCCGTCCGAATGCGTCT。

家蚕核型多角体病毒荧光定量PCR检测用探针,该探针针对上述的引物扩增的基因片段,探针的序列如下:HEX-TTATGTCGGTGGATCGACAA-Eclipse。

家蚕浓核病毒荧光定量PCR检测用引物,该引物的序列如下:

引物的序列如下:上游引物:GGTGGAAGTGGAAGTGGAAA,

下游引物:TTTCCACTCGATTGGCTTGT。

家蚕浓核病毒荧光定量PCR检测用探针,该探针针对上述的引物扩增的基因片段,探针的序列如下:探针的序列如下:ROX-GGTGCAAGTAGAGGAGGTGC-Eclipse。

为了实现上述的第三个目的,本发明采用了以下的技术方案:

蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒的三重荧光定量PCR检测方法,该方法包括以下的步骤:

1)样本DNA提取:选取感染上述病原体的家蚕材料0.2g,经玻璃珠破碎法破碎,6000 r/min,20 s×6次,使用DNA抽提试剂盒进行DNA抽提,抽提后的DNA溶解在20μl水中;

2)三重荧光PCR扩增法对3种样本的同步检测:

蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒的引物和探针的序列如上所述;

三重荧光PCR反应体系如下:10μl Premix Ex Taq,各引物10 pmol/μl均0.13 μl,各探针10 pmol/μl均0.27μl,取上述提取的DNA液4μl,蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒的DNA浓度分别为2.5 ng/μl,用水补足体积至20μl;

应用荧光定量PCR仪lightcycle 480进行反应,反应程序为(1) 95℃,10 sec;(2) 95℃,5 sec;60℃,23 sec;40 个循环;

3)调用相应荧光补偿程序,进行荧光补偿,对结果进行判定;一般认为Ct值小于等于35时,结果为阳性,Ct值大于等于40时,结果为阴性,Ct值介于35-40时,需要进行重复检测,若仍介于35-40,则判断为阳性,若大于等于40则判断为阴性。

上述的荧光补偿反应程序参照Roche说明书,即(1) 95℃,10 sec;(2) 95℃,5 sec;60℃,23 sec;40 个循环;(3)95℃,10 sec;40℃,30 sec;95℃,continous;40℃,1 sec。补偿反应时进行单重荧光反应,单重荧光反应体系如下:10μl Premix Ex Taq,上述的上游、下游引物10 pmol/μl各0.4μl,上述的探针10 pmol/μl,0.8μl,取DNA 1μl,蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒的的DNA含量分别为2.5 ng/μl,用水补足体积至20μl。 

本发明基于具有高度物种特异性的家蚕微孢子虫小亚单位核糖体RNA基因序列(Nosema bombycis small subunit ribosomal RNA,FJ854545(基因序列号))、家蚕核型多角体病毒DNA聚合酶基因序列(Bombyx mori nucleopolyhedrovirus gene for DNA polymerase,D16231)和家蚕浓核病毒镇江株假设结构蛋白基因序列(Bombyx mori densovirus isolate Zhenjiang putative structural protein gene,AY236978),分别设计了各自的引物和探针,并在3个探针上标记了不同的荧光信号,在优化了PCR反应体系的条件下,实现三重荧光定量PCR同步检测蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒。由于该3种病原体的核酸均为DNA,因此,不仅可实现DNA同步提取,也可以进行荧光PCR同步检测,大大简化了检测方法,并通过荧光补偿的程序,有效地消除了因荧光信号的交集而引起的假阳性。由于该方法引入了高特异性扩增引物和不同荧光标记的探针,确保了本方法能快速、特异和灵敏的一次性鉴别检测蚕微孢子虫、家蚕核型多角体病毒和家蚕浓核病毒,可提高早期检出率,有效防止疾病的传播,减少经济损失。

具体实施方式

实施例 1 引物和探针的设计

基于具有高度物种特异性的家蚕微孢子虫小亚单位核糖体RNA基因序列(Nosema bombycis small subunit ribosomal RNA,FJ854545(基因序列号))、家蚕核型多角体病毒DNA聚合酶基因序列(Bombyx mori nucleopolyhedrovirus gene for DNA polymerase,D16231)和家蚕浓核病毒镇江株假设结构蛋白基因序列(Bombyx mori densovirus isolate Zhenjiang putative structural protein gene,AY236978),用生物信息学方法根据引物设计原则,并利用Primer Express设计软件,设计出扩增上述基因片段的特异性引物和荧光探针若干组。将设计得到的引物和探针一一进行BLAST验证(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/),以保证引物的高特异性。并进一步利用DNAStar软件,验证各引物探针间是否会产生引物二聚体等。经过上述验证,最后选择了如表1所示的引物和探针,并在探针上分别标记不同的荧光信号,以实现3通道同步检测。

表1 家蚕微孢子虫、核型多角体病毒和浓核病毒检测的引物和探针

F:正向引物;R:反向引物;P:探针。

实施例 2:样本DNA提取

选取感染上述3种病原体的家蚕材料 0.2g,经玻璃珠破碎法破碎,6000 r/min,20 s×6次后,使用DNA抽提试剂盒(Promega FF3750),按照说明书进行DNA抽提,抽提后的DNA溶解在20μl水中。

实施例 3:三重荧光PCR扩增反应及荧光补偿反应

三重荧光PCR扩增法对3种样本的同步检测。引物探针序列如表1所示,三重荧光PCR反应体系如下:10μl Premix Ex Taq(Takara),各引物(10 pmol/μl)均0.13μl,各探针(10 pmol/μl)均0.27μl,取上述提取的DNA液4μl(Nb,BmNPV和BmDNV的DNA含量分别为2.5 ng/μl),不足的体积用水补足至20μl。应用荧光定量PCR仪lightcycle 480(Roche)进行反应,反应程序为(1) 95℃,10 sec;(2) 95℃,5 sec;60℃,23 sec;40 个循环。调用相应荧光补偿程序,进行荧光补偿,对结果进行判定。一般认为Ct值小于等于35时,结果为阳性,Ct值大于等于40时,结果为阴性,Ct值介于35-40时,需要进行重复检测,若仍介于35-40,则判断为阳性,若大于等于40则判断为阴性。

实施例 4:质粒的制备

应用表1中的引物,对实施例2得到的DNA样本进行普通单重PCR扩增,普通单重PCR反应体系如下:2.5 μl PCR ExBuff(Takara),2 μl dNTP(2.5 pmol/μl),2 μl MgCl2 (25 pmol/μl),引物各(10 pmol/μl) 0.5μl,0.125 μl ExTaq (5 U/μl),DNA 4 μl,加水补足25 μl。普通PCR(PTC-200,MJ Co.)程序如下 (1) 94°C,5min;(2) 94°C,30 sec;60°C,60 sec;72°C,45 sec,40 个循环;(3) 72°C,10 min。将PCR扩增产物进行凝胶电泳,并割胶回收,将PCR产物纯化后,将其克隆至PMD18-T载体上,如此获得各含有一种目的片段的质粒3种。

实施例 5:单重荧光PCR灵敏度验证

分别对上述3种病原体进行荧光PCR的灵敏度验证。单重荧光PCR反应体系如下:10ul Premix Ex Taq(Takara),引物(10 pmol/μl)均0.4μl,探针(10 pmol/μl)均0.8ul,上述实例4中的质粒取1 ul(各个浓度梯度的质粒含量如表2所示),不足的体积用水补足至20ul。应用荧光定量PCR仪lightcycle 480(Roche)进行反应,反应程序为(1) 95°C,10 sec;(2) 95°C,5 sec;60°C,23 sec;40 个循环。 各个单重PCR的结果如表2所示。一般认为Ct值小于等于35时,得到的阳性结果比较可靠。由此判断,BmNPV引物、探针的检测灵敏度为0.00025 ng/μl ;Nb 的为0.0025 ng/μl; BmDNV的为0.025 ng/μl。

表 2 单重荧光PCR灵敏度验证的检测结果

所有实验取重复3次的平均值;Undet.: Ct值低于检测限。

实施例 6:多重荧光PCR灵敏度验证

比较了三重荧光反应时,各引物探针的检测灵敏度。反应体系和反应程序如实例3所示,即各引物浓度相同,各探针浓度也相同。在三种质粒(实例4中获得)浓度为1:1:1时,三重荧光PCR反应对三种物质检测灵敏度如表3所示,即对Nb和BmNPV的灵敏度较高,达到0.0025 ng/μl;而对BmDNV的灵敏度稍低,达到0.025 ng/μl。 

表 3 三重荧光PCR灵敏度验证的检测结果

所有实验取重复3次的平均值;Undet: Ct值低于检测限。

序列表

<110>浙江省检验检疫科学技术研究院

<120>蚕微孢子虫、核型多角体病毒和浓核病毒的三重荧光PCR检测方法及试剂盒和引物、探针

 

<160>9

 

<210>1

<211>19

<212>DNA

<213>人工序列

<400>1

AGTGCCATCG TTGCTGGTT 19

 

<210>2

<211>21

<212>DNA

<213>人工序列

<400>2

TGGGCCTTTC TTCTTTCCTA T 21

 

<210>3

<211>23

<212>DNA

<213>人工序列

<400>3

ACCGCTAAGG AAACCCGCAA GGA 23

 

<210>4

<211>20

<212>DNA

<213>人工序列

<400>4

ATCGCCATCG GACAACGCGG 20

 

<210>5

<211>20

<212>DNA

<213>人工序列

<400>5

GTGGCCGTCC GAATGCGTCT 20

 

<210>6

<211>20

<212>DNA

<213>人工序列

<400>6

TTATGTCGGT GGATCGACAA 20

 

<210>7

<211>20

<212>DNA

<213>人工序列

<400>7

GGTGGAAGTG GAAGTGGAAA 20

 

<210>8

<211>20

<212>DNA

<213>人工序列

<400>8

TTTCCACTCG ATTGGCTTGT 20

 

<210>9

<211>20

<212>DNA

<213>人工序列

<400>9

GGTGCAAGTA GAGGAGGTGC 20

 

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