用于在微容器特别是微通道中操纵小包的装置

摘要

本发明涉及用于对至少一个小包无污染地进行物理、化学或生物处理的微流控装置(1)和用于在微容器特别是微通道中操纵小包的装置，并提供一种使小包变形或将至少两个小包相向移动的微流控装置，其包括：微通道及小包操纵装置。小包操纵装置包括发生单元和电极组件与侧通道中的至少一个。电极组件连接于发生单元并在至少一部分微通道内产生与微通道的轴线共线的电场；发生单元产生电场，电场的振幅和频率引起小包变形或至少两个小包在微通道中相向移动；侧通道的第一端与微通道的一部分连接，第二端与输送系统连接，输送系统输送能改变至少两个小包之间或至少一个小包和其环境之间的界面张力的溶液、并可将溶液输送到部分的微通道中。

说明书

本申请是申请日为2005年9月9日、申请号为200580035988.4(国际申 请号为PCT/IB2005/052951)、发明名称为“用于在微容器特别是微通道中操 纵小包的装置”的专利申请的分案申请。

技术领域

本发明涉及一种用于在微容器特别是微通道中操纵小包的装置。

背景技术

这里所用的“小包”(packet)是指被分区(compartmentalized)的物质， 而且可以指流体包、密封(encapsulated)包和/或固体包。

流体包是指液体或气体的一个或多个小包。流体包可以指液体的微滴或气 体的气泡。流体包也可以指一滴水、一滴试剂或样品、一滴溶剂、一滴溶液、 一粒悬浮液或细胞悬浮液，一滴中间产物、一滴最终反应产物或一滴任何材料。 流体包的一实例是一滴悬浮在油中的水性溶液。在一优选实施方式中，流体包 指一滴水或一滴溶液。

密封包指由一层材料密封的包。密封包的表面可以涂以试剂、样品、颗粒 或细胞、中间产物、最终反应产物、或任何材料。密封包的一实例是悬浮在水 中的含有试剂水溶液的脂囊泡(lipid vesicle)。

密封包可以含有例如囊泡或其他液体或气体的微囊体(microcapsule)， 所述囊泡或微囊体可以含有试剂、样品、颗粒、死细胞或活细胞、中间产物、 最终反应产物、或任何材料。

固体包指固体材料，例如生物材料，所述固体材料可以含有或覆盖有试剂、 样品、颗粒或细胞、中间产物、最终反应产物、或任何材料。固体包的一实例 为悬浮在水性溶液中的、表面结合有试剂的胶乳微球(latex microsphere)。 固体包可以含有晶体、多晶材料或玻璃质(vitreous)材料。

所述小包可以在尺寸和形状上有很大变化，而且最大尺寸可以约在 100nm-1cm之间。

微滴系统可以存在于油或氟化溶剂中的水基微滴中，或者存在于水性溶剂 的“油性”(与水不混溶)微滴中。本发明微滴系统涉及的流体可以是任何水 性、有机、无机、亲水或疏水的流体，包括水基缓冲剂、生物流体、水-有机 溶剂(hydroorganic solvents)、由具有碳-碳主链(backbone)、Si-Si主链(硅 酮)、杂原子(heteroatom)主链(例如聚乙烯二醇)的分子形成的液体、或 离子液体。微滴系统在微流控技术中已经受到广泛重视，其作为生产精确乳液 (emulsion)的方法、作为聚合酶链反应(polymerase chain reaction，PCR)的离 散微反应器、用于测量快速动力学(fast kinetics)、和用于等分试样(sample aliquot)的无分散传输和操纵。因此近年开发了大量成果以制造和/或操作微 滴系统。一些装置在结合有一些亲水部分和一些疏水部分的微通道中使用疏水 力移动微滴。例如，美国专利613008公开了一种用于移动微滴的方法，其包 括：

-提供具有一个或多个疏水区且与气源连通的微滴输送通道，

-在例如所述液体在所述疏水区中的一个区处停止的条件下，将液体引入 到所述通道中，

-通过使气源供给的压力增加以分离微滴，以使微滴移动穿过所述疏水区。

这种方法强迫不同的微滴与相同的固体表面接触，并由此易于导致污染。

通过电润湿法操纵平面电极阵列上的微滴已经非常流行，因为其允许使微 滴寻址(address)到不同的位置而且是沿着复杂且可编程的路径。例如，美国 专利6294063公开了一种用于程序化操纵多个小包的设备，这些小包任选为 微滴，所述设备包括：反应表面，构造成提供小包相互作用的场所(site)； 进口；在所述小包上产生操纵力的装置，所述力能程序化地相对于(about) 反应面沿着任意选择地路径移动所述小包；以及位置传感器。

美国专利6565727也公开了一种用于操纵极性液体的微滴的装置，其包括 上表面和下表面，所述上表面和下表面限定了它们之间的缝隙，所述上表面包 括多个相互交叉(interdigitated)的电极，且所述下表面包括公共(common) 反电极。该装置还包括在所述电极和所述缝隙之间的绝缘层以及定位于所述缝 隙中的非极性液体。在该装置中，通过在第一电极和所述下表面上的该反电极 之间施加电势，使得所述上表面对于所述第一电极附近的微滴润湿，从而微滴 可保持在所述上表面上的所述第一电极的顶部。然后，通过抑制所述第一电极 和所述反电极间的电势差，并通过在所述第二电极和所述反电极之间施加电势 差以第二电极对于所述流体润湿，从而微滴能被移动至所述上表面上的、与所 述第一电极相互交叉的所述第二电极。

电润湿还可以用于混合两种不同的微滴，如M.Washizu在IEEE Trans.Ind. Appl.，34，732-737(1998)中所述。混合含有例如两种试剂或一种样品和一种试 剂的微滴是发展微流控集成系统或“lab-on-chips”的关键技术步骤。

然而电润湿所需的电极平面阵列的形式具有严重的缺陷。电极阵列的制造 是复杂的，且对于超过几平方厘米表面而言，技术要求很高且非常昂贵。因此， 长距离例如大于10cm传输微滴是不现实的。而且对于液体微滴，表面应该保 持水平且相对无震动，以避免液滴在重力或声波的作用下产生不必要的运动。 在平行形式中操纵微滴还会因微滴蒸发而受限，微滴蒸发严重阻碍了定量生化 的应用，因为反应产率对浓度非常敏感。电润湿可以进一步导致表面污染。另 一个限制是电润湿仅可以利用液体工作，因此不能用于传输固体对象。

介电泳是另一种传输和混合微滴或固体对象例如细胞或胶乳颗粒的方法。 例如Schwartz等人在Lab Chip，4，11-17(2004)中公开了一种可程序化的流体 处理器，在该流体处理器中，通过使阵列中的电极顺序通电，微滴可以在电极 阵列的顶部移动并混合。然而，该方法也需要在平面上的复杂电极阵列，因此 该方法共有电润湿的很多缺点。在另一个例子中，Velev等人在Nature，426， 515-516(2003)中公开了一种用于将浮在氟化油层上的微滴移动和混合的方 法，其中油与电极图案接触。这消除了电润湿中的内在污染问题，但是还需要 制造复杂的电极阵列。

在细长的微通道或已连接的微通道的网络中传输和混合微滴对上述问题 更有效。例如，避免了蒸发且通过围绕微滴的载流体的简单的水力流动作用使 得能长距离运输。从而可以在几米长的毛细管中运输微滴，并作为微反应器， 如Curcio和Roeraade在Anal.Chem.，75，1-7(2003)所描述的那样。当与壁的 相互作用被良好地控制时，所有微滴以相同速度移动，且可得到非常稳定的串 (trains)。然而，这种系统造成微滴之间的污染，这已归因于在流动中形成 小的伴生(satellite)微滴。Park等人在Anal.Chem.2003，75，6029-6033中提 出一种系统，其中大量水性样品虹吸(plug)通过空气虹吸(air plug)隔离。 然而，壁的处理不足以完全避免污染，因此有时需要包括“清洗”样品之间的 微滴。另外，流束中的气泡会引起微滴的热过程中的不均匀性，这使得该技术 对于定量应用没有吸引力。

还提出通过介电泳操纵微通道中的固体颗粒或细胞。介电泳利用了在电场 梯度中施加在颗粒上的力，所述颗粒的介电常数不同于周围介质的介电常数。 不同种类的配置用于注明介电泳应用在微通道中的日期。在第一个中，紧密间 隔的相互交叉的电极阵列局部地形成吸引颗粒的高场梯度线。任选地，这些线 可以通过交替地使不同系列电极通电而及时移动，这样的方法被成为“行波介 电泳”。例如，Schnelle等人在Electrophoresis，21，66-73(2000)中公开了一种 用于分选颗粒的方法，其中通过在相互交叉配置的多个电极之间的行波介电泳 来使所述颗粒偏转(deflect)，并用四相交替的电信号连续激发所述颗粒。通 过使用穿过微通道的、不同形状的相互面对的一对电极，并在所述电极之间施 加电势差，可以产生不同种类的介电泳陷阱、介电泳笼或介电泳偏转电极，如 Durr等人在Electrophoresis，24，722-731(2003)中所述。

这些介电泳装置与平面系统相比具有一些优点。尤其是，它们对于倾斜和 震动更有效(robust)。然而这些装置仍需复杂的微制造且造价昂贵。

在微通道微滴系统的发展中、尤其是在用于微反应器应用的发展中，另一 个关键障碍对来自不同源的样品或试剂的混合。为此，需要合并(coalesce) 两个微滴，但是拉普拉斯(Laplace)力和流体动力学的力使得所述合并变得 困难。当同时到达T型交叉处时，一微滴简单地跟着另一微滴进入T型交叉 处而没有进行合并。合并可以通过使所述微滴接触带电而强迫进行，但是这会 成为PCR系统和其他生物系统的主要污染源。一旦所述微滴引入到通道中， 尾随大微滴的小微滴最终与大微滴合并，因为小微滴具有更大的平均速度。然 而，这在微流控技术中不是合理的策略，因此微滴之间的膜排泄非常慢，这导 致合并距离在30-100倍管直径之间(Olbricht和Kung，J.Colloid Interface ScL， 120，229-244(1987))。此外，在一定条件下(相对微滴的大小、粘度等)，不 会发生合并，且合并时间和位置极其不可重复。

因此，强烈需要一种用于在微通道或封闭的微流系统中提供可重复的且无 污染的微滴操纵、尤其是合并的装置和方法。

发明内容

本发明的目的尤其是提供这样的装置和方法。

根据本发明的一个方面，本发明涉及一种微流控装置，其用于使至少一个 小包变形尤其是分裂，或者使至少两个小包相向移动特别是用于破坏小包时， 所述装置包括：

-具有轴线的微通道；

-小包操纵装置，包括以下中的至少一个：

·发生单元和电极组件，该电极组件连接于该发生单元并构造成用于在所 述微通道的至少一部分内产生与该微通道的所述轴线(X)基本共线的电场， 其中该发生单元能产生具有这样的振幅和频率的电场，即所述电场引起至少一 个小包变形或至少两个小包在所述微通道中相向移动，

·至少一个侧通道，该侧通道的第一端与所述微通道的一部分连接且该侧 通道的第二端与输送系统连接，所述输送系统适于输送溶液、尤其是具有表面 活性剂的溶液，所述溶液能改变所述至少两个小包之间或所述至少一个小包和 其环境之间的界面张力，所述输送系统构造成至少在所述小包经过所述微通道 的所述部分时将所述溶液输送到所述微通道中。

换句话说，采用根据本发明的所述装置操纵小包可以通过产生合适的电场 或者通过改变液体小包的表面张力或者通过将这两种技术结合来进行。

所述界面张力可以改变，优选降低至少20％，更优选降低50％。

当两小包被引入到施加有所述电场以使所述两小包破坏(collapse)的、 所述微通道的所述部分中时，通过所述电场在所述小包中生成偶极子，所述偶 极子基本沿着所述微通道的所述轴线被定向，以使得所述小包彼此吸引并破 坏。

“基本共线”的表述指的是所述电场方向的平均与所述微通道的所述轴线 的夹角小于45°，例如小于30°，优选小于20°，且最优选小于10°或5°。

本发明可以用于使两小包破坏和用于例如使两微滴在所述微通道中合并。

普通的物理现象“电合并(electrocoalescence)”在P.Atten，J.Electrostat. 30，259(1993)中公开。针对电泳力，且与介电泳相比时，电合并不需要场梯度。

当小包是细胞或含有一些细胞时，本发明可以用于对这个细胞或多个细胞 进行电穿孔。

本发明还可用于将一个小包分裂成几个尺寸更小的小包、和用于例如从一 微滴中提取一个或几个尺寸更小的微滴。

根据本发明的微容器可以具有任意尺寸。优选地，所述微容器的至少一个 尺寸小于1毫米。在一实施方式中，所述微容器是直径小于1mm的微毛细管。 例如，所述毛细管的横截面的至少一个尺寸优选处于100μm-1mm之间。在一 实施方式中，所述毛细管的至少一个尺寸优选处于10nm-100μm之间，优选处 于1μm-100μm之间。在另一实施方式中，所述微容器是厚度小于1mm的微制 造的微通道。在一些实施方式中，所述微通道的厚度优选处于100μm-lmm之 间。在一实施方式中，所述微通道的厚度优选处于10nm-100μm之间，优选处 于1μm-100μm之间。

在本发明中，“微容器”、尤其是“微通道”指的是至少部分由固体表面 封闭的体积，所述体积很小。优选地，本发明中的微容器尤其是微通道的表面 /体积比基本大于1mm^-1，优选大于4mm^-1，例如大于10mm^-1，可能大于1μm^-1。 所述微通道也包括纳米通道。

在一实施方式中，所述微通道优选是细长的，即，在所述微通道的所述轴 线方向上的尺寸比与所述轴线相垂直的其他方向上的尺寸大3倍，优选大10 倍，例如大100倍或大1000倍。

所述微通道的所述轴线可以是直线或非直线。

所述微通道的横截面可以是常量或不是常量。所述横截面可以例如是圆 形、椭圆形、矩形、方形或钵形。

在本发明中，“厚度”指的是所述微通道的两个相对边之间在横截面上的 最小内距离。例如，对于具有环形横截面的筒形微通道，所述厚度是直径。对 于具有矩形横截面的缝状微通道，所述厚度是所述矩形的短边长度。

所述微通道的所述厚度可以是在几纳米到几毫米之间的任何值。优选地， 所述厚度处于1μm至1mm之间。更优选地，所述微通道在其轴线方向上的长 度可以选择成至少为所述厚度的10倍。所述微通道可以具有10mm至几米间 的长度，例如1cm和50cm。

优选地，所述微通道的所述部分(在所述部分中，所述电场与所述微通道 的所述轴线基本共线)在所述轴线方向上的长度至少与所述微通道的所述厚度 一样，且小于所述微通道的总长。在本发明的一优选实施方式中，所述微通道 的所述部分的长度约处于所述部分的厚度的1倍至100倍之间，优选约处于所 述部分的厚度的1倍至10倍之间。

所述微通道可以是刚性或柔性的，且包括例如由柔性非导电材料制成的 管。

所述微容器尤其是所述微通道可以由选自下列材料中的至少一种材料制 成：熔融石英玻璃、PDMS(聚二甲基硅氧烷)、PMMA(聚甲基丙烯酸甲酯)， 任何弹性体或塑料，例如聚乙烯、聚酰亚胺、环氧树脂、聚苯乙烯、聚对苯二甲酸乙二醇酯、含氟聚合物、聚酯、环烯烃共聚物，不导 电氧化物，例如玻璃、二氧化硅、金刚石、不导电陶瓷、硅酮、弹性体、玻璃 状材料、矿物材料、陶瓷、聚合物、热塑性聚合物、热固性树脂、光致固化树 脂、共聚物。

在本发明的一示范性实施方式中，所述微通道具有至少一个进口和/或至 少一个出口。任选地，所述口的至少一个可以连接到一个或若干个贮存器、一 个或若干个泵、一个或若干个检测器或传感器、或连接于一个或若干个取样装 置。

所述微通道可以是已连接的多个微通道的网络的一部分。

在本发明的优选实施方式中，所述电极组件与所述微通道的内表面例如通 过绝缘材料电绝缘。所述绝缘材料的厚度至少是1nm，例如至少10nm，优选 至少100nm，最优选至少1μm，例如高达几十或几百微米。一般地，微通道 越大，所述绝缘材料的厚度也越大。所述绝缘材料可以由例如聚合物材料制成， 例如聚乙烯、聚酰亚胺、环氧树脂、PMMA、聚苯乙烯、 聚对苯二甲酸乙二醇酯、含氟聚合物、聚酯、环烯烃共聚物、PDMS，不导电 氧化物，例如玻璃、二氧化硅、金刚石、不导电陶瓷。

优选地，所述电极组件包括沿所述微通道的所述轴线以一距离在所述轴线 方向上间隔开的至少两个电极，所述距离足够长以使所述电极之间的所述电场 与所述微通道的所述轴线基本共线。每个电极可以相对于所述微通道的所述轴 线对称。有利地，所述电极的至少一个包括至少两个对着所述微通道的彼此面 对的等势部分。所述电极的至少一个可以是具有例如将所述微通道环绕的筒形 表面的单片(monolithic)。在一变型中，所述电极的至少一个是复合的，即 由多片组成，包括例如将所述微通道夹在中间的、至少两个基本平行的等势板。 所述电极还可以具有除上述说明以外的其他形状。

这与如专利申请FR 2794039或Paik等人，Lab Chip，3，28-33(2003)所公开 的现有技术不同，在该现有技术中微滴的操纵是通过相反的布置来获得的，即 在穿过腔室的两彼此面对的平行电极之间施加电势差，待操纵的微滴容置于腔 室内。

优选地，所述电极以一间隙间隔开，所述间隙的长度大于所述微通道的所 述厚度，优选大于所述厚度的2倍。

所述发生单元有利地包括电流发生器和电压发生器中的至少一个，其设置 成在所述两个电极之间产生电势差，优选是交变电势。

有利地，所述电极组件构造成在所述微通道的至少一个横截面中，所述电 场的振幅变化小于10倍，优选小于5倍，更优选小于2倍，且优选基本均匀， 尤其是在所述电极之间的所述间隙中。

由所述发生单元通过所述电极组件产生的所述电场可以具有任何瞬间曲 线，例如连续的、变化的或交变的(AC)、或是上述瞬间曲线的结合。例如 所述电场可以是具有可变频率或均方根(RMS)振幅的交变电场，或者是连 续部分和AC部分的叠加。

交变电场(AC场)指的是任何随时间周期变化的且具有零时间平均值的 场。根据本发明的交变电场的实例不限于正弦、方形或锯齿交变电场。

所述发生单元优选能产生频率在约0.01Hz至约1GHz范围、优选在约1Hz 至约10MHz范围内的交变电场。

微滴的合并例如在100Hz和10kHz之间的频率下有效地实现。至少一个 微滴的等分优选在小于50Hz的频率下完成。

所述发生单元可以构造成根据小包的性质、围绕所述小包的流体的性质、 所述微通道的性质和所述装置的大小，输送范围在1V至30kV之间的、优选 范围在60V至2kV之间的RMS电压。所述电压可以随着所述装置的尺寸的 增加而增加。在所述微通道内位于所述电极之间的所述间隙中的RMS电场可 以是例如范围在100V/cm至100kV/cm之间，优选范围在500V/cm至20kV/cm 之间。

所述发生单元可以构造成输送这样的电压，即所述电压的振幅和频率中的 至少一个随时间变化。例如，所述电场的振幅和/或频率可以随着两个小包紧 密接触而改变。

有利地，所述电极组件设在支座中，所述支座具有通过固定元件组装在一 起的两个分离开的支撑元件，每个支撑元件承载所述电极组件的一个电极。所 述支座可以包括至少一个用于容置所述微通道的孔。

当所述微通道连接于一侧通道时，所述侧通道的横截面尺寸可以与所述微 通道的截面尺寸相当。优选地，所述侧通道的横截面小于所述微通道的截面。 在一变型中，所述侧通道的横截面大于所述微通道的横截面。

与所述侧通道相关的所述输送系统可以包括压力控制装置或流量控制装 置。

优选地，所述侧通道和所述输送系统构造成用于在所述微通道中输送含有 表面活性剂的溶液。

术语“表面活性剂”指的是能改变两流体之间的界面张力的任何物种、分 子或分子的组合。表面活性剂可以是例如表面活性(tensioactive)的物种或两 性分子(amphiphilic)的物种。

所述表面活性剂可以选择成有利于形成水包油乳液。

如果小包是悬浮在非水液体中的水性微滴，则所述表面活性剂一般是具有 高HLB(亲水/亲油平衡)的表面活性剂，例如HLB值大于15。这样的表面 活性剂的非限定实例是十二烷基硫酸钠(SDS)、油酸和CTAB。

如果小包是在水性环境流体中的油滴，则所述溶液优选含有至少一种低 HLB的表面活性剂，例如HLB小于15，且优选小于10。

很多可以降低油相和水相之间的界面张力或有利于微滴合并的表面活性 剂记录在Emulsions，a fundamental and practical approach，J.Ed， Kluwer，Dordrecht(1992)或P.Becher，Emulsions，Theory and Practice，2nd Ed， R.E.Krieger Pub.Co，Malabar，F1(1985)中。

在本发明的一示范性实施方式中，为了将两微滴合并或分裂，所述装置包 括连接于所述输送系统的第一侧通道，所述微通道可以连接于一第二侧通道、 优选连接于或接近所述第一侧通道、并构造成用于收集通过原始小包合并或分 裂形成的小包。

所述微通道可以由各种同类(homogeneous)的或复合材料制成。在 US6294063公开的现有技术中，小包被操纵到构造成提供小包相互作用场所 的反应表面上；与该现有技术相比，根据本发明的所述微通道壁可以由一种材 料制成或用一种材料进行处理，这在包埋(embedding)流体存在的情况下降 低小包与所述微通道壁相互作用的风险。在所述小包和所述微通道之间可以没 有任何化学相互作用。

在示范性实施方式中，所述小包是水基微滴，通过处理所述微通道壁和/ 或通过在微滴中和/或在流体包含添加剂，所述微滴与所述微通道壁之间的界 面张力大于所述微滴与周围流体间的界面张力。

水基液体和表面之间的表面张力可以通过很多方法来增加。例如，可以选 择本质上疏水的表面，例如氟碳或聚乙烯。还可以用诸如AF、硅烷或 氟硅烷之类的疏水材料处理所述表面。

水和氢化的油基流体之间的表面张力可以由于表面活性分子的存在而降 低。本领域已知很多这样的表面活性分子，这里仅列出一些作为例子： 和十二烷 基硫酸钠(SDS)、油酸、甲基纤维素、羟乙基纤维素和羟丙基纤维素、或 如果流体是氟化的，则诸如1H，1H，2H，2H-全氟正癸醇或 1H，1H，2H，2H-全氟正辛醇等氟化表面活性剂特别合适。

氟化的与水不混溶流体(液体)可以包括至少一种以下成分：部分或完全 氟化的烷烃、烯烃或炔烃，例如全氟萘烷等全氟烷烃。在一个实施方式中，所 述与水不混溶流体是氟化分子的混合物，诸如“氟利昂”族氟化溶剂，或者是 FC氟代表面活性剂，诸如FC40或FC75(3M有售)。优选在所述混合物中 没有既定的分子量的化合物大于混合物的75％w/w(重量比重量)。

在本发明的示范性实施方式中，所述微通道由包围至少一个小包的流体填 充，所述流体可以是任何液体或气态流体，条件是所述流体不与所述小包或所 述微通道壁混溶。

所述包围小包的流体可以是液体，例如不混溶于水的有机或无机液体。

所述流体可以是氟化液体或气体，且所述微滴可以是任选含有物种 (species)的有机或水-有机(hydroorganic)液体。

在本发明的示范性实施方式中，所述小包和所述周围流体具有不同的电导 率和/或不同的介电常数。例如所述小包的电导率可以大于所述周围流体的电 导率。

在本发明的示范性实施方式中，所述小包是悬浮在不混溶的第二液体中的 第一液体的微滴，所述第一液体的导电性比所述第一更大。

所述微滴可以是水基微滴，所述水基微滴可以含有任何天然的、人造的、 有机或无机种类，例如生物分子、蛋白质、蛋白质复合物、酶、半抗原、抗原、 抗体、核酸适体(aptamer)、表位、核酸、肽、多糖、糖肽、细胞、细胞团聚物、 药、化学品、胶乳、活的或死的生物、病毒、细胞器(organelles)、脂质体、泡 囊、微团、合成或天然聚合物、纳米颗粒、发光分子、量子点、化学试剂、缓 冲剂、表面活性剂和这些种类的组合。

在本发明的另一示范性实施方式中，所述小包是不混溶于水的液体的微 滴，且所述周围流体是水基溶液。

本发明可以允许操纵尺寸与所述微通道的横截面相当的小包。

作为示范性实施方式，所述小包的最小横截面积为至少是所述微通道的在 第一电极位置处或在第二电极位置处的横截面积(无论哪个更小)的一半。

所述小包可以是直径与所述微通道的直径相当的球形微滴，或者是跨在所 述微通道的整个横截面上的细长微滴。

根据本发明的所述装置可以用于例如融合胶体(colloids)以形成链。

所述装置还可以用于筛选工序。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种用于使至少两个小包在微通道 中相向移动的方法，尤其是为了将所述至少两个小包破坏，所述微通道具有纵 轴线，所述方法包括下列步骤：

-将至少两个小包引入到所述微通道中，

-在所述微通道的至少一个部分中、至少当所述小包位于所述微通道的所 述部分内时产生电场，所述电场优选与所述微通道在所述部分处的轴线基本共 线、且所述电场的振幅和频率选择成使所述两个小包相向移动。

当所述电场是通过沿所述微通道的所述轴线在轴线方向上间隔开的至少 两个电极产生时，所述电极以一间隙间隔开，所述方法包括下列步骤：

-在产生所述电场前，将两个小包定位在所述电极之间的所述间隙内，所 述小包处于静态平衡，

-产生所述电场。

在一变型中，用于破坏(collapsing)的所述小包可以在一开始放在流动 的流束(flowing stream)中以进行破坏的飞行操作(in-flight operation)。

由此，所述方法可以包括下列步骤：

-将两个小包定位在所述微通道中，所述两个小包中的至少一个处于所述 电极之间的所述间隙之外，

-例如通过在所述微通道中的流动的流束，使所述两个小包朝着所述间隙 移动，

-至少在所述小包位于所述间隙中时产生所述电场。

在本发明的示范性实施方式中，所述小包中的至少一个含有生物材料，例 如细胞或细胞质核(cytoplasm nucleus)。所述用于破坏至少两个小包的方法 在所述小包含有生物膜时尤显优势。

所述方法可以被实施，以形成杂交瘤或操纵胚胎形成细胞(embryonic founder cells)。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种用于使至少两个小包在微通道 中相向移动的方法，尤其是为了将所述至少两个小包破坏或为了分裂至少一个 小包，所述微通道具有轴线，所述方法包括下列步骤：

-将所述至少两个小包或所述至少一个小包定位在所述微通道的一部分 中，

-将表面活性剂溶液输送到所述微通道的所述部分中，所述表面活性剂能 改变所述至少两个小包之间或所述至少一个小包与其环境之间的界面张力。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种用于在具有纵轴线的微通道中 将至少一个小包分裂的方法，所述方法包括下列步骤：

-将所述至少一个小包引入到所述微通道中，

-在所述微通道的至少一部分内、至少当所述至少一个小包位于所述至少 一部分内时产生电场，所述电场优选在所述部分处与所述微通道的所述轴线基 本共线、且具有选择成使所述小包分裂的振幅和频率。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种监控破坏至少两个小包或分裂 至少一个小包的方法，所述方法包括下列步骤：

-使用上述定义的微流控装置在微通道中进行破坏或分裂，

-检测所述破坏或分裂，例如通过视频装置或通过测量诸如与例如容置在 所述微通道中的至少一个物质相关的电阻等电参数。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种用于在有轴线的微通道中使至 少一个小包移动的方法，所述方法包括下列步骤：

-将至少一个小包引入到所述微通道中；

-在所述微通道的至少一个部分中、至少当所述至少一个小包位于所述微 通道的所述部分内时产生电场，所述电场优选与所述微通道的所述轴线基本共 线，以沿着所述微通道移动所述小包。

所述电场可以是连续的。

在所述微通道中移动至少一个小包的操作可以独立于破坏或分裂的操作。

在一变型中，上述在所述微通道中移动至少一个小包的操作可以被实施， 以便在进行所述破坏或分裂操作前将所述至少一个小包恰当地定位在所述微 通道中。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种用于在微容器中尤其是在微通 道中对至少一个小包进行至少一种操作的方法，其中所述微容器具有至少一个 限定了所述微容器的内部空间的管状部分，其中：

-所述管状部分由无内部涂覆的成块氟化材料制成，或

-所述管状部分由成块非氟化材料制成，且在所述管状部分的所有内周表 面上都涂有耐久层(permanent layer)，或

其中所述微容器包括一连串的至少两个管状部分，第一管状部分由成块氟 化材料制成，第二管状部分由成块非氟化材料制成且该第二管状部分的所有内 周面涂覆耐久层，其中所述耐久层优选是疏水的，以及

其中所述微容器至少部分填充有与所述小包不混溶的、且含有至少一种表 面活性剂的载液，所述表面活性剂的浓度足够高以降低所述小包和所述载液之 间的表面张力。

措辞“成块材料”指的是单片(monolithic)材料。

例如，根据本发明的成块材料与由相同材料例如PDMS(聚二甲基硅氧烷) 制成的两部分的组合不同。

成块材料也与由不同材料制成的两部分的组合(例如由PDMS制成的部 分与由玻璃制成的部分结合而成的组合、或者由硼硅酸盐制成的部分与由硅酮 制成的部分结合而成的组合)不同。

在已知的系统中，微容器或微通道的圆周的不同部分之间的化学性质的差 异趋于使得小包或载液与所述不同部分的相互作用不同，从而对所述小包的操 作的控制较差。

“耐久层”指的是没有通过载流体加载到所述微容器的内表面上或从所述 微容器的内表面上除去的层，一般如同用于加入到流体中的表面活性组分、特 别是诸如SPAN、SDS、等表面活性剂的情形。耐久层的使用是有利 的，因为它更坚固，且为所述载流体的组成提供更多的自由度。

在根据本发明的方法中，针对一些应用，可以将这样的表面活性剂加入所 述载液。

管状部分可以具有圆形或非圆形横截面。例如横截面可以是矩形。

管状部分的横截面可以沿着所述微容器的长度方向改变或不改变。

所述耐久层可以包括选自下列的材料：熔融石英玻璃、PDMS(聚二甲基 硅氧烷)、PMMA(聚甲基丙烯酸甲酯)，任何弹性体或塑料，例如聚乙烯、 聚酰亚胺、环氧树脂、聚苯乙烯、聚对苯二甲酸乙二醇 酯、聚酯、环烯烃共聚物，不导电氧化物，例如玻璃、二氧化硅、金刚石、不 导电陶瓷、硅酮、弹性体、玻璃状材料、矿物材料、陶瓷、聚合物、热塑性聚 合物、热固性树脂、光致固化树脂、共聚物、硅烷、氟代硅烷、氟代聚合物。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种用于对埋在载液中的至少一个 小包进行至少一化学、物理或生物操作的装置，所述载液与所述小包不混溶， 所述装置包括至少一个将含有所述小包的所述载液包围的微容器，其中所述微 容器的内表面是氟化的，且所述载液含有比值浓度至少为0.1cmc(临界胶束 浓度)的表面活性剂。

根据本发明的所述微容器可以是任何形状。例如所述微容器可以是矩形横 截面的微通道、圆柱形的微毛细管、薄板状体(volume)，或者是圆柱状、锥 形或矩形微瓶(microvial)。

针对一些应用，根据本发明的所述装置可以将多于一个、优选多于10个 或多于100个、且高达几十万个这样的微容器集聚在一起。

在一实施方式中，所述微容器具有至少一个进口。所述微容器可以具有至 少一个出口。任选地，所述口可以连接到一个或若干个贮存器、一个或若干个 泵、或一个或若干个取样装置。

任选地，所述微容器也可以是已连接的多个微通道和多个贮存器的网络的 一部分。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种在微容器中特别是在微通道中 对至少一个小包进行至少一种操作的方法，其中所述微容器具有内部管状疏水 表面，其中所述微容器至少部分地被这样一种载液填充，即所述载液与所述小 包不混溶且含有至少一种浓度足够高以使所述小包和所述载液之间的表面张 力降低的表面活性剂。

所述操作可以是移动至少一个小包、分裂至少一个小包、将至少一个小包 与至少另一个小包合并、使至少一个小包反应的操作中的至少一种操作。

所述移动可以包括在所述微容器中循环所述载液。

所述操作可以在无任何电场的情况下进行。

所述操作可以包括将所述至少一个小包从所述微容器的进口朝向所述微 容器的出口移动。

所述操作可以包括将所述至少一个小包依次暴露在至少两个不同的物理 和/或化学条件下，尤其依次暴露在至少两个不同的温度条件下。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种微流控装置，其包括具有内部 管状表面的微容器、特别是微通道，所述装置还包括形成所述微容器的内空间 的管状成块疏水部分，其中所述成块部分涂覆有疏水层。

在一实施方式中，所述成块部分由氟化材料制成。在一变型中，所述成块 部分由非氟化材料制成且涂覆有氟化层。

所述微流控装置可以包括一连串的至少第一成块部分和第二成块部分，所 述第一成块部分由氟化材料制成但没有涂层，所述第二成块部分由非氟化材料 制成且涂有氟化层。

在一变型中，所述微流控装置可以包括两个由制造并组装在一起 的部分，以用于形成所述微通道的周面。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种用于在微容器、特别是微通道 中对至少一个小包进行至少一种操作的方法，所述微容器具有内表面，其中所 述微容器由与所述小包不混溶的且含有至少一种表面活性剂的载液填充，其中 所述小包与所述微容器的内壁之间的界面张力和所述小包与所述载液之间的 界面张力的差至少为26mN/m，优选至少为35mN/m。所述差可以约在35mN/m 至45mN/m之间。

在Tice等人在Langmuir 2003，19，9127-9133中已提出，如果微滴与载液 之间的界面张力小于微滴与微通道之间的界面张力，则在没有与微通道壁的相 互作用下可以在微通道中利用载液进行微滴的运输。特别是，作者在PDMS 微通道(界面张力38mN/m)中采用溶解在含有含氟表面活性剂的氟碳(界 面张力12-14mN/m)中的水微滴。

在这种情况下，微滴/微通道和微滴/载液间的差是24-26mN/m。令人惊讶 地，已发现在相似的条件下(在硅酮毛细管(水与毛细管之间的界面张力为 38mN/m)中在FC40加H，1H，2H，2H-全氟正癸醇中的水微滴(载液与水微滴 之间的界面张力为12-20mN/m，见实施例11和图14))，这种条件(表面张 力差为正且在18mN/m至26mN/m之间)可以被满足，然而仍然可以观察到 微滴的不良表现和在微滴之间的污染(见实施例14)。

相反，用氟硅烷进一步处理硅酮(和水之间的界面张力为55mN/m)，即， 如果小包与微通道表面之间的界面张力和小包与载液之间的界面张力的差增 加到35mN/m至45mN/m之间的值，则不会观察到污染。

此外，当在毛细管(界面张力：55mN/m)内在纯FC40(水/FC40 界面张力：51.8mN/m)中运输水微滴时，Tice等人所述的条件得到满足，然 而观测到的微滴运输不令人满意，且微滴破裂。相反，当微滴/流体界面张力 降低到处于10mN/m至20mN/m之间的值时，通过加入0.5％-3％的 1H，1H，2H，2H-全氟正癸醇(小包与微通道表面之间的界面张力和小包与流体之 间的界面张力的差处于35mN/m至45mN/m之间的值)，微滴的不规则运动 和污染可以受到抑制。

在一优选实施方式中，所述表面活性剂在所述载液中的比值浓度至少为 0.1cmc(临界胶束浓度)，优选至少为0.5cmc，且更优选为1cmc。

有利地，所述表面活性剂在所述载液中的浓度在约0.01％至约10％w/w(重 量比重量)之间，优选在约0.1％至约3％之间。

在一优选实施方式中，所述表面活性剂为含氟表面活性剂，特别是氟代醇。 在一特别的实施方式中，所述含氟表面活性剂是1H，1H，2H，2H-全氟正癸醇。

在一特别的实施方式中，所述成块部分由硅酮制成。例如，所述微通道由 硅酮毛细管形成。

在一特别的实施方式中，所述成块部分是硅烷化的。例如，所述成块部分 的所述内表面用硅烷处理。

在一实施方式中，所述硅烷选自单甲基硅烷、二甲基硅烷、三甲基硅烷、 单氯硅烷、二氯硅烷、三氯硅烷等。在一优选实施方式中，所述硅烷选自单甲 基氟硅烷、二甲基氟硅烷、三甲基氟硅烷、单氯氟硅烷、二氯氟硅烷、三氯氟 硅烷等。在又一优选实施方式中，所述氟硅烷是全氟硅烷。在一个实施方式中， 所述硅烷的末端具有包括至少2个碳原子、优选4个碳原子、更优选8个碳原 子、更优选12、16或更多碳原子的骨架。在一实施方式中，所述氟硅烷选自 1H，1H，2H，2H-全氟辛基三甲基硅烷和1H，1H，2H，2H-全氟癸基三乙氧基硅烷 (Fluorochem出品)。所述硅烷优选溶解诸如乙醇、甲醇、辛烷、DMF等无 水溶剂中。在另一实施方式中，通过向所述硅烷表面吹送无水载气，所述硅烷 直接从气相沉积到表面、然后进到所述微通道中。

在一实施方式中，所述硅烷化在氩气气氛下进行。在另一实施方式中，所 述硅烷化在空气气氛下进行。优选地，所述气氛是无水的，因为水会引起硅烷 水解且阻碍硅烷接枝(graft)。

在另一实施方式中，所述微通道的所述内表面可以在硅烷化之前通过本领 域技术人员已知的若干方法中的一种方式进行活化。在一实施方式中，所述活 化是等离子体活化。在一优选实施方式中，所述活化是通过在所述微通道中流 经酸性溶液来进行的。在一实施方式中，所述溶液溶液选自盐酸、硫酸、硝酸、 磷酸和氢氟酸(florhydric acid)。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种连接器，其使得至少一个小包 无污染地从至少一个微通道向另一微通道运输，所述连接器由所有内表面上具 有疏水层的成块材料构成，所述疏水层包括氟化材料和硅烷化材料之一。

在一优选实施方式中，所述成块材料是弹性体。

在又一优选实施方式中，所述连接器涉及其进口或出口中的至少一个，涉 及由不同材料、优选是非弹性体材料制成的微通道。

在另一实施方式中，所述连接器具有与微通道相关的至少三个孔口。还令 人感兴趣的是，为了控制流体在所述连接器中的流动，所述连接器包括可以插 入到位于所述连接器的不同孔口之间的夹紧阀(pinch valve)或蠕动泵 (perisaltic pump)中的部分。

所述连接器可以任选通过首先制备模制件，然后将弹性管连接到所述连接 器的所述孔口中的至少一个孔口上而制成，所述弹性管的内表面也承载有疏水 层。

优选地，且与现有技术采用的用于在微流控系统中操纵小包的大多数微通 道不同，在本发明中，所述微通道部分是圆柱形的：这将避免尖角(sharp angle) 以及针式接触角，以使液体或固体材料保留从而使小包间污染增加的风险。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种微容器，其选自：

-由成块氟化材料制成的微容器，

-由成块非氟化材料制成的微容器，所述微容器的整个周面上都覆盖有耐 久绝缘层，

-和微通道，其包括至少一由成块氟化材料制成的部分和至少一由成块非 氟化材料制成的部分，所述由成块非氟化材料制成的部分的整个周面上都覆盖 有耐久绝缘层，

-所述微容器至少部分填充有与所述小包不混溶的、且含有至少一种表面 活性剂的载液，所述表面活性剂的浓度足够高以降低所述小包和所述载液之间 的表面张力。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种微流控装置，其包括至少一个 微容器特别是至少一个微通道、以及与所述微容器相通的连接器，所述连接器 构造成用于将所述微容器连接于另一微容器特别是微通道和所述装置的进口 或出口中的至少一个上，其中所述连接器的内表面包括至少一个疏水层。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种用于安装在形成微通道的毛细 管的一端的连接器，其中所述连接器的内表面包括至少一个疏水层。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种试剂盒(kit)，其包括：

-微流控装置，包括微通道，

-如上所述的连接器，待安装于所述微流控装置上。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种对小包进行至少一种操作的试 剂盒，包括：

-微容器，特别是微通道，其内表面具有至少一种疏水材料，

-载液，与所述小包不混溶且含有至少一种表面活性剂，所述表面活性剂 的浓度足够高以降低所述小包和与水不混溶的所述液之间的表面张力。

本发明还涉及一种组件，其包括：

-如上所述的连接器，

-至少一个连接于所述连接器的毛细管。

所述连接器可以是T型连接器。

优选地，所述毛细管具有氟化或硅烷化的内表面。

根据本发明的另一方面，本发明还涉及一种用于进行PCR的装置，包括：

-微通道，包括由毛细管制成的盘管，所述盘管至少部分填充有含表面活 性剂的含氟溶剂，所述盘管包括暴露在不同温度条件下的变性区、退火区和延 长区。

附图说明

本发明可以通过阅读以下非限定的实施方式的详细说明和附图的解释来 更好地理解，在附图中：

图1是根据本发明的微流控装置的部分示意图，

图2是图1的装置的横截面示意图，

图3是图2的装置的支撑部件的透视示意图，

图4A至图4C和图5A至图5C分别示意地示出根据本发明的两个微滴合 并的三步骤，

图6A至图6C部分示意地示出根据本发明的微滴等分的三步骤，

图7是电场在微通道的一部分中分布的示意图，

图8是根据本发明变型的装置的部分示意图，

图9至图13部分示意地示出本发明其他变型，

图14是如实例11所测量的、含氟表面活性剂1H，1H，2H，2H-全氟正癸醇 与氟化油FC-40之间的界面张力的曲线图，

图15示意并部分示出根据本发明的在实例12和实例13中使用的用于在 分段流中扩增DNA的循环PCR系统，

图16是如实例12所述的在一连串微滴中的扩增产物的凝胶电泳，

图17是如实例13所述的相邻微滴之间无污染的验证，

图18是在未处理未清洗的硅酮毛细管中的微滴形状，以FC40为载液(a) 原始微滴，(b)稍后微滴(在微滴串中的第60个之后的微滴)；使用不同浓度的 含氟表面活性剂，(c)0.15wt％含氟表面活性剂，(d)0.5wt％含氟表面活性剂， (e)3.0wt％含氟表面活性剂(实例14A和实例14B)，

图19是微滴在氩气气氛下硅烷化管中的形状，(a)7.5vol％硅烷，(b)5vol％ 硅烷，原始微滴，(c)5vol％硅烷，稍后的微滴(第100个之后的微滴)(d)1vol％ 硅烷，(e)0.25vol％硅烷(实例14C)，

图20是微滴在空气下硅烷化管中的形状，(a)10vol％硅烷，5分钟反应(b) 7.5vol％硅烷，5分钟反应，稍后微滴的形状(微滴串中第110个之后的微滴)， (c)5vol％硅烷，30分钟反应，HCl活化，(d)5vol％硅烷，30分钟反应，等离 子体活化，(e)2.5vol％硅烷，30分钟反应(实例14D)，

图21是微滴在具有0.5wt％含氟表面活性剂的硅烷化硅酮管中的形状，(a) 2.5vol％硅烷，30分钟反应，第200个微滴，(b)5vol％硅烷，30分钟反应，第 200个微滴(实例14E)，和

图22至图24部分示意地给出本发明的无污染连接器。

本发明的最佳实施方式

1：本发明第一个示范性实施方式

图1示出根据本发明的微流控装置，所述装置包括微通道2和电极组件3。 所述微通道2具有纵轴线X且内横截面为圆形。

所述电极组件3包括一对电极4，每个电极4包括金属例如铝圆柱。每个 电极4的长度为例如4mm，且内径为1.5mm、外径为1.9mm。

电极4围绕微通道2放置，且沿着X轴线以间距6间隔开。所述电极4 通过包括电线的连接部件8连接到发生单元9。

所述电极4设置在包括两个支撑部件11的支座10中，每个支撑部件是由 制造的基本长方体，例如宽24mm、高20mm且深20mm。

每个支撑部件11在其中央位置处沿X轴线钻有例如直径1.9mm的第一圆 柱孔12，用于保持电极4。第一孔12从该支撑部件11的正面13朝与该正面 13相对的该支撑部件11的背面14延伸。

钻取与第一孔12垂直的第二孔17，用于容置将对应的电极4连接于发生 单元9的连接部件8。

每个支撑部件11还包括两个孔20和21，所述两个孔的轴线与孔12的轴 线平行，且所述两个孔构造成分别用于容置螺杆22和金属杆23，以 使利用孔12组装的所述支撑部件11保持共线。

每个电极4安装在相应的支撑部件11中，以使电极4与正面13平齐，如 图2所示。

所述两个支撑部件11的正面13以例如2mm的长度间隔开，所述长度限 定了所述对电极4之间的2mm的间距6。

发生单元9包括例如与放大器连接的函数发生器，以传输频率高达1kHz 的高达2kV的正弦电压。所述发生单元9还可以包括诸如计算机之类的中央 处理单元，以程序化控制提供给所述电极4的电压。

图7示意地示出了通过箭头和等势线一起给定的电场取向。

可以看到，电场与微通道2的轴线X基本共线，因此有利于电合并并将 所有介电泳效应最小化。

如图1所示，所述装置1可以装在连接有CCD照相机31和视频记录器 32的双筒显微镜30的观察台上，因而可以监测在微通道中两个小包的破坏或 一个小包的分裂。

所述装置可以构造成在所述破坏或分裂之后将所述小包排出。

2：本发明第二个示范性实施方式

图8给出了包括两个复合电极35的电极组件3’，每个复合电极35具有 一对彼此面对的基本平行的、且夹着矩形截面的微通道2’的等势板36。每对 板36连接于发生单元9的相应极。

3：振荡方法的实例

在一实施方式中，微滴流体是TBE 5x缓冲液(0.45M0.45M硼 酸和0.01M EDTA；)，所述微滴用0.25wt％溴酚蓝染色，以便在含有 0.5wt％1H，1H，2H，2H-全氟正癸醇的氟化油(FC-40，3M)载液中 观察，加入的所述1H，1H，2H，2H-全氟正癸醇用于避免与微通道2 的壁的相互作用。所述微滴的导电性为3mS/cm，且所述载液的导电性为 2.5×10^-13mS/cm。为了形成微滴，两流体在1.5mL管中分层，使得 底层由近似0.6mL载液(FC-40/1H，1H，2H，2H-全氟正癸醇)组成，上层由近似 0.6mL微滴流体(TBE 5x/溴酚蓝)组成。

微通道2由注射泵注入(由KD Scientific提供)，所述注射泵使用例如 填充有所述载液的Gas-Tight 250μL注射器。泵入到微通道中的过量 流体可以收集到废液贮存器中。完全填满毛细管后，将微通道2放进成层的 管的载液相中。然后泵以1ml/hr的速度吸取。通过人工或将微通道 装到机械振荡器上使微通道在载液相和微滴相之间以例如接近2Hz的频率振 荡，形成微滴。通过这种方法形成的微滴的直径与微通道的直径近似相同。

4：在微通道中移动小包的示范性方法

所述方法可以采用上述定义的任何装置来进行。

通过上述描述的振荡方法形成单个微滴。使用所述注射泵，将微滴吸取到 所述电极4之间的间距6中。当微滴已到达所述间距部分时，正好在上游电极 前，流动停止且使所述系统稳定在平衡位置。然后施加连续电压，对与微滴最 近的电极4施加正电压且使与微滴最远的电极接地。在视频中可以记录微滴向 接地的电极运动，且测量用于给定移动的时间。微滴仅在位于所述电极4之间 时移动，而在位于接地电极时停止。

5：静态合并的实例

所述静态合并可以由上述定义的任何装置来进行。

由上述振荡方法形成微滴，以使两个微滴之间的间距大于所述电极4之间 的间距6。一开始利用注射泵将第一微滴引入所述电极4之间的间隙6中。当 微滴到达上游电极时，流动停止。利用上述电场作用将微滴向与先前施加的流 动的方向相反的方向移动，直到微滴到达下游电极。所述流动直到第一微滴返 回到上游电极才重新开始。重复这个过程，直到第二微滴出现在所述电极4 之间。然后调整微通道在所述电极中的位置，以使第二微滴在所述电极之间的 间隙6之外。第一微滴向与先前施加的流动的方向相反的方向移动，直到两微 滴之间的间距为例如0.5mm。然后重新定位微通道，以使所述微滴的两个最 近的边缘之间的中点位于所述两电极的中间，且使所述系统稳定到平衡。

在图4A至图4C描述的实例中，第一微滴40的直径约540μm，第二微滴 41的直径约560μm。对所述电极4施加2kV、1kHz的正弦电压，微滴的初始 移动是稳定的，较小的微滴40以稍大的速度移动(图4A和图4B)。当微滴 40和41开始紧密接触时，它们迅速加速且将居间的膜排出(图4C)，这表 明所述装置1应当提供一开始靠拢的微滴的基本瞬间合并，例如发生在两微滴 同时到达T型连接处时。

6：飞行合并(in-flight coalescence)的实例

所述飞行合并可以由上述定义的任何装置来进行。

第一微滴43的直径可以约为580μm，第二微滴的直径可以约为560μm。

在将所述微滴定位以后，将所述微通道设置成使得两个微滴均位于电极4 之间的间隙6之外。然后将2kV、1kHz的正弦电压施加给2mm间隔的所述电 极且继续保持于整个实验过程。施加电场后，通过注射泵以50μL/hr吸取使得 流动开始。

微滴42进入所述电极4之间的间隙6中，且在没有微滴43(见图5A) 的情况下以恒定速度移动。在13秒后露出微滴43的前界面(leading interface)， 但是该前界面对微滴42没有产生影响。仅当后面的微滴(trailing droplet)完 全处于所述电极之间的间隙6中时，偶极力本身才显现出来。然后，对于这些 分隔开得很大的微滴，合并时间与静态情况下基本相同(约8秒)，但是由于 流动，动力学上有点不同。所述偶极力强得足以使微滴42停止(图5B)，同 时微滴43以恒定速度向微滴42移动，这使得以与在静态情况下基本相同的速 度缩短距离。一旦微滴靠拢，所述强大的偶极力将迅速排出居间的流体并完成 合并(图5C)。

7：微滴分裂的实例

单个大微滴46通过上述的但以较低频率振荡界面来形成。通过注射泵吸 取，将微滴46引入到所述电极之间的间隙6中(图6A)。本实施方式中的微 滴是具有2.5mm长轴的椭圆形回转体。施加2kV、0.1Hz的矩形张力(square tension)，微滴46分裂成两个较小且稳定的微滴47(图6B和图6C)，所述 微滴47从间隙6中排出。

获得干净的微滴分裂的一般操作条件，也就是一个大微滴分裂成两个较小 的且稳定的微滴而不形成任何伴生微滴(satellite drop)的条件可在于频率在 0.1Hz至1Hz之间且振幅在1kV至2kV之间的矩形电压。在这样的条件下， 微滴可以在小于一分钟内破碎。所施加的最低电压可以得到“最干净的”分裂， 但是所需的时间更长。微滴的长度可以约为间隙6的长度。

8：本发明的其他示范性实施方式

如图9和图10所示，在所述电极4之间的微通道部分50和横向通道51 形成T型交叉。在所述电极4之间的电场引起的微滴合并后，所得到的微滴 52例如通过采用连接于横向通道51的注射泵而在横向通道51中被驱动。

如图11和图12所示，微滴分裂可以通过在两电极4之间施加电场以从质 量较大的流体54中提取微滴53来进行。

因此，在需要时微滴53可以例如通过程序化控制所述电极4来形成。

9：本发明另一示范性实施方式

图13表示本发明的装置60，所述装置60包括微通道61，微通道61的一 部分62连接于第一侧通道63和第二侧通道64。

所述部分62可以例如基本位于所述微通道的中间。

在本实施方式中，微通道61的厚度约为100μm、宽度约为300μm，侧通 道63的厚度约为100μm、宽度约为50μm。

侧通道63连接于输送系统66，所述输送系统66包括具有贮存器67的注 射泵，贮存器67容纳有浓度大于临界胶束浓度的十六烷油酸和SDS的表面活 性剂溶液。

微通道61填充有浓度调整为避免水性微滴与微通道壁之间的相互作用 的、含有十六烷的溶液，所述十六烷含有

侧通道64连接于注射泵68，注射泵68构造成在吸取模式下从微通道61 中吸取所述溶液。

从微通道61的两端将5X TBE缓冲液的两个微滴70引入并在微通道61 中移动。将所述两个微滴70从两端的吸入是同步的，以使所述两个微滴70 从两端同时到达所述部分62。当所述两个微滴70处于所述部分62中时，由 输送系统66将容纳在贮存器67内的表面活性剂溶液以预定流速输送到所述 微通道的所述部分62中，以使所述两个微滴70合并。最佳流速可以通过逐渐 增加流量直到所述微滴在每次碰撞都合并来确定，这便设定了最佳流速。

在另一实施方式中，表面活性剂溶液可以以脉冲方式输送，且与所述一对 微滴到达所述连接的部分62同步。

得到的微滴71收集在注射泵68中以用于进一步的使用或例如传输到另一 微通道以用于检测。

10：在容置于含氟聚合物毛细管内的氟化油中的、规则阵列的水微滴的形成和运输的实例

采用连接有电夹紧阀(electro-pinch valve，NResearch，Caldwell NJ出品) 的Y型连接器(Upchurch Scientific出品)生成微滴串。所述Y型连接器的一 个进口用由0.25wt％溴酚蓝染色以便观察的TBE 5x缓冲液(0.45M Trisbase， 0.45M硼酸，和0.01M EDTA，Sigma出品)填充。所述Y型连接器的另一侧和 测试毛细管(PFA，内径(i.d.)800μm，Upchurch Scientific出品)用成块氟化油 FC-40(3M)或含有不同量的氟代醇表面活性剂(1H，1H，2H，2H-全氟正癸醇， Fluorochem出品)的FC-40填充。利用LabView程序循环所述电夹紧阀同时 利用计算机控制的哈佛毫升模式注射泵(Harvard milliliter module syringe pump)吸取，以生成微滴串。一般的循环由6秒的从TBE线吸取和8秒的从 FC-40线吸取组成。利用双筒显微镜(Olympus)观察微滴并采用CCD照相机 (Hitachi)和WinTV记录微滴。

首先测试微滴串在微流控系统中的稳定性。以前在分段流PCR(segmented flow PCR)中，微滴间的交叉污染归因于微滴的不稳定型和小的伴生微滴的形 成。我们不仅要寻找单个微滴的破碎还要观察所有含有几百个微滴的微滴串的 整体稳定性。这样的串的稳定性主要是为了我们技术的高产出应用。

当微滴在纯FC-40中被拖拽(entrain)时，观察到微滴偶尔粘到壁上。这 是未预料到的，因为壁和载液都是氟化的，且已预料到壁将会被Fc-40强有力 地润湿。这种粘结归因于毛细管壁的缺陷(粗糙或化学不均匀性)，这在通过 挤压工艺制造的成块毛细管中应该预见到。微滴和毛细管壁之间的FC-40层 非常薄，且对壁面的小的扰动将会破坏顺畅的流动。如论如何，一旦一个微滴 拖拽在壁上，即使是暂时的，则整个串都会失去稳定性。后面的微滴与所述受 拖拽的微滴碰撞并交换流体，所述受托拽的微滴被从壁上释放出，然后所述后 面的微滴被拖拽。这个过程是无限进行的，且对于任何PCR应用将是灾难性 的。

然后在FC-40中加入0.5-3.0wt％的氟代醇表面活性剂。通过使一串含有大 于200个微滴，则不会观察到瞬间牵制在壁上、伴生微滴的形成或微滴串不稳 定。

11：水微滴和含有含氟表面活性剂的溶剂之间的界面张力测量

采用家用液滴体积张力计测量界面张力。FC-40/表面活性剂液滴从8mm 内径(ID)毛细管分配到TBE5x缓冲液的贮存器中。使用最大分辨率 的50μL Hamilton气密注射器(Hamilton gastight syringe)和Hamilton PSD/2注 射泵(Hamilton PSD/2 syringe pump)，液滴体积可以在步骤之间的任意等待 时间内以25nL的增量增加。为了考虑到表面活性剂的平衡，我们一般在步骤 之间等待30秒。张力测量是至少15个液滴的平均，并修正以用于针 头(tip)的浸润。

12：在根据本发明的装置中进行DNA的PCR扩增的实例，涉及由成块含氟聚合物制成的通道

图15给出了PCR装置80，所述装置80包括直径4cm的铜柱体81，且 铜柱体81机械加工成与变性区82、退火区83和延长区84对应的三块。延长 区84是其他两个区大小的两倍，因此占柱体81的一半。所述三个区由固定在 铜柱体的所述三块之间的聚碳酸酯板85彼此分隔开。加热器的两端覆盖有聚 碳酸酯柱以提供结构稳定性，同时保持在两个区之间的隔离。每1/4的柱体上 钻三个穿过整个装置的小孔88以提供空气冷却的通气口。在每个区中钻出部 分贯设所述柱体的两个小孔89(用于热电偶)和一个较大的中央孔90(用于 加热器)。用于加热的孔和用于热电偶的孔不对所述加热器的空气冷却侧敞开。 每个区覆盖有与铜柱的相对区接触的薄铝箔层，以提供上述的加热。所述箔层 可以用聚碳酸酯壳和棉花层覆盖，因而所述柱体绝缘并提供横跨(across)毛 细管的均匀温度。小涡轮将周围的空气吹过每1/4柱体中的三个通风孔，以便 于更好的温度控制和均匀性。

每个区包括一个电阻加热器和两个Pt-100热电偶。电阻加热器位于各自 区的中央，而热电偶位于所述区之间的界面附近。所述加热器和所述热电偶连 接于客户端电子器件。所述热电偶通过Keithley 2701万用表与写在LabView 中的客户端PID程序控制连接。每个区的温度可以任意设置。对于在此讨论 的实验，使用的变性温度为94℃，退火温度为55.5℃，延长温度为72℃。在 我们的设计中，每个区中的温差为±0.2℃。

一个4.5米长的透明PFA毛细管92(内径(i.d.)800μm，Upchurch Scientific 出品)通过变性区中的槽进入所述柱体，以提供约1分钟的初始变性步骤。然 后绕铜柱缠绕毛细管35圈，对应35个PCR循环。所述毛细管通过在延长区 中的孔从加热器中引出，以对第35次循环提供约30秒的附加延长。

PCR扩增：模板是Litmus 28i(New England Biolabs)的有2823个碱基对 的DNA片段。这个片段在从碱基2008至碱基2580的572个碱基对上用 Eurogentec引物(primer)(下游引物5’-CGC-ATT-GCG-GTA-TCT-AGA- ACC-GGT-GAC-GTC-3’，上游引物5’-AGC-TTG-GAG-CGA-ACG-ACC-3’， Eurogentech Oligold出品)进行扩增。用Ready Mix Taq反应混合物(Sigma出 品)根据生产者的说明书使用最大浓度的模板和引物来制备50μL的PCR混合 物。

载液是含有0.5-1.0wt％氟代醇表面活性剂(1H，1H，2H，2H-全氟正癸醇， Fluorochem出品)的成块氟化油FC-40(3M)。所述表面活性剂避免微滴瞬间 吸附到毛细管壁上。利用Hamilton PSD/2泵和100μL Hamilton气密注射器， 通过从毛细管出口抽吸而将2μL水性微滴注入到进口中。用5μL FC-40隔离 物(spacer)将所述微滴彼此分离。在注入需要数量的微滴后，所述出口与 Hamilton泵断开，然后所述进口连接到计算机控制的具有5mL Hamilton气密 注射器的哈佛毫升模式泵上。所述微滴以0.1cm/s被循环。

在所述出口处收集所述微滴，并通过在0.5xTAE缓冲液中的1wt％气溶胶 上的凝胶电泳来分析所述微滴。利用在94℃下1分钟的循环、随后在94℃下 30秒、55℃下30秒和72℃下1分钟的35次循环，通过在经典PCR热循环器 (Perkin Elmer出品)中扩增50μL的PCR混合物的剩余体积来制备对照扩 增样品。这是模仿在我们连续流动式PCR中的循环，尽管用于加热和冷却所 述经典循环器的滞后时间(lag time)意味着整个扩增约是我们流动装置的2 倍。被扩增的控制系统的2μL等分试样用于凝胶电泳。

已获得5个微滴的串，每个微滴含有PCR混合物和模板。图16示出了 这个在所有微滴中成功扩增的结果。过道(lane)1：1 kbp DNA阶梯(ladder) (New England Biolabs出品)，过道2：2μL具有DNA的混合物对照样品，过道 3：微滴1，过道4：微滴2，过道5：微滴3，过道6：微滴4，过道7：微滴5。

在根据本发明的所述装置中的扩增程度(过道3-7)与常规热循环器得到 的扩增程度(过道2)相当。

实施例13：在成块含氟聚合物制成的通道中微滴之间的污染研究。

[215]所述系统已经针对微滴之间的交叉污染进行测试。所有条件与实例 12中的条件相同，除了制成两个单独的PCR混合物外；第一混合物含有模板、 引物和Ready Mix反应混合物，第二混合物除了没有任何模板外均与第一混 合物相同。五个微滴被吸取，但是只有第三个微滴含有模板。为了避免来自所 述针尖自身的污染，所述针尖在每次微滴注射之间均用蒸馏水清洗。图17示 出了本实验的凝胶电泳结果。过道1：1kbp DNA阶梯(New England Biolabs 出品)，过道2：5μL无DNA的混合物对照样品，过道3：2μL具有DNA的混合 物对照样品，过道4：微滴1(无模板)，过道5：微滴2(无模板)，过道6：微滴 3(有模板)，过道7：微滴4(无模板)，过道8：微滴5(无模板)。在不同微滴之 间没有可以观察到的污染，呈现任何DNA扩增的唯一微滴是具有DNA的第 三个微滴。

实例14：在由非氟化材料制成的具有或不具有氟化材料涂层的通道中传输微滴的实例。

在这一系列实例中，微通道是由Cole Parmer出品的硅酮管制成(内径 0.8mm)。载液是FC-40(3M)，且微滴由水性缓冲液TBE 5x制成。在所有情 况下，按照实例13所述的相同规程形成微滴串，且利用双筒显微镜和CCD 照相机直接观察和拍摄微滴在该管中的形状和移动。

14A：在未处理的硅酮管内在纯FC40中的TBE微滴。

在一些例子中，微滴呈现为球形(图18a)，这表明壁是不润湿的。然而， 在通过几百个微滴形成微滴串后，壁在所述串的某些位置处被润湿(图18b)。 在一些例子中，第一微滴看起来像图18b所示的情形。已经推测在一些例子中 观察到的无润湿的表现归因于制造过程中的残余产物。由于很多微滴移动穿过 该系统，所以这种未知的产物将被从壁上除去。为了验证这个假设，用5体积 的蒸馏纯化水清洗所述管。然后，第一微滴的表现始终如图18b所示。对于所 有后来的实验，总是用5体积的蒸馏纯化水清洗所述管，以除去初始条件中的 任何变化。

14B：在未处理的硅酮管内在添加有含氟表面活性剂的FC-40中的TBE微滴。

通过添加Fluorochem出品的不同wt％的含氟表面活性剂1H，1H，2H，2H-全 氟正癸醇，来验证微滴的表现。所述表面活性剂降低了微滴与FC-40之间的 界面张力，但是对固-液张力没有影响。因此，微滴失稳且破碎成很多小微滴 (图18c，图18d，图18e)。破碎的性质取决于表面活性剂浓度，但是甚至 在非常低的含氟表面活性剂水平下，微滴依旧不稳定。

14C：在氩气气氛下硅烷化处理的硅酮管内在没有添加含氟表面活性剂的FC-40中的TBE微滴。

所述管在氩气气氛下被隔离的同时被硅烷化处理。在电炉(hotplate)上 将少量1N HCl(Sigma出品)加热到约60℃。清洁过的硅酮管的一端连接于体 积至少为所述管两倍的注射器，另一端放在温的HCl溶液中。HCl被吸取到 所述管中，直到所述注射器被部分填充。HCl留在所述管中5分钟，在此期间 我们偶尔振荡注射泵以使局部混合。然后从所述管中排空HCl，并用氩气流干 燥所述管。然后我们将新的注射器连接于所述管的一端，并将所述管的另一端 放进氟硅烷和光谱级甲醇(Sigma出品)的溶液中。所述氟硅烷通常是 1H，1H，2H，2H-全氟辛基三甲基硅烷(Fluorochem出品)。1H，1H，2H，2H-全氟癸 基三乙氧基硅烷(Fluorochem出品)也被测试，且基本上达到相同的结果。 这里给出的所有结果是针对1H，1H，2H，2H-全氟辛基三甲基硅烷(Fluorochem出 品)的，我们选择它是因为它比较便宜。将硅烷溶液被吸取到所述管中且保留 5分钟，其间我们偶尔振荡所述注射泵以使局部混合。然后将硅烷溶液从所述 管中排空，用氩气流干燥所述管。干燥后的所述管被放到110℃烘箱中约20 分钟，以固定硅烷。然后在进行微滴测试之前用几体积的甲醇和FC-40清洗 所述管。

图19示出了在氩气-硅烷化管中的微滴的结果。对于vol％大于7.5的情 况，我们观察到对于包括至少200个微滴的串而言则没有牵制(pinning)。 在5vol％时，所述微滴呈现出一开始不润湿，但是最终被牵制(pin)到壁上。 在vol％较低时，微滴总是将壁润湿。我们得出：当反应在氩气下进行时，7.5 vol％氟代硅烷是形成稳定的不润湿表面的必要条件。

14D：在空气气氛下硅烷化处理的硅酮管内在没有添加含氟表面活性剂的FC-40中的TBE微滴。

为了简化硅烷化的过程，将所述管在空气中硅烷化。为了更好地保存纯硅 烷，硅烷/甲醇混合物首先在氩气下进行，但是反应的剩余物在通风柜(hood) 内采用基本与上述相同的规程进行。硅烷的体积百分比vol％和使硅烷与所述 管反应的时间(反应时间)是变化的。在一个例子中，HCl活化步骤用等离子 体活化代替。

对于10vol％硅烷且反应时间5分钟，在空气中的硅烷化与氩气中的情形 没有区别(图20a)。对于7.5vol％硅烷且反应时间5分钟，微滴一开始不润 湿但是最终会润湿壁(图20b)。已发现在5vol％硅烷的情况时微滴仍润湿壁， 但是当反应时间增加到30分钟时，在整个串(大于200微滴，图20c)中的 微滴均不会润湿壁。测试相同的参数(5vol％硅烷且反应时间30分钟)，但 是所述管放在等离子中1分钟、而不是用HCl填充。如图20d所示，等离子 体活化没有导致不润湿表面。由于等离子体必须扩散通过所述管以用于活化， 因此与可以通过抽吸到所述管中的HCl进行的液体活化相比效率低。已经测 试进一步降低硅烷浓度至2.5vol％硅烷同时保持30分钟的反应时间。如图20e 所示，壁有轻微的润湿。

与在氩气下硅烷化相比，在空气中硅烷化可能在表面上产生均匀性较差的 涂层，因为空气中的水与硅烷竞争活化的表面位置。大体上，空气硅烷化不能 像氩气硅烷化那样降低水-固体张力。然而，空气规程可更简单地进行且更适 于自动化。

14E：在空气气氛下硅烷化处理的硅酮管内在添加有含氟表面活性剂的FC-40中的TBE微滴。

已验证强力降低FC-40/水的界面张力的含氟表面活性剂是否足以克服在 空气-硅烷化表面上产生的不均匀性(和伴随地降低水-固体张力)。如图21 所给出的，小浓度的表面活性剂(0.5wt％)足以避免在2.5vol％硅烷和5vol％ 硅烷的润湿，甚至在形成一个200个微滴的串之后。

实例15：通过定量PCR检验在实例14中制备的本发明装置中运输的微滴间的DNA污染。

为了检测是否未牵制住的(unpinned)微滴形状不会引起污染，使用定量 PCR进行一组实验，以对不同微滴中的DNA浓度进行敏感性测试。

根据下面规程中的一个制备所述管：

1.无硅烷：仅用几体积蒸馏水清洗所述管。载液是FC-40(3M)，根据实 例14A制备。

2.硅烷：清洗所述管，然后根据实例14D的规程在空气中用5vol％硅烷 硅烷化，反应时间30分钟。载液是FC-40。

3.硅烷+表面活性剂：清洗所述管，然后根据实例14E的规程在空气中 硅烷化。载液是具有0.5wt％1H，1H，2H，2H-全氟正癸醇的FC-40。

4.成块含氟聚合物+表面活性剂：根据实例13制备一串微滴：使用生产 者提供的Teflon毛细管。载液是具有0.5wt％1H，1H，2H，2H-全氟正癸醇的 FC-40。

所述管的一端连接于Y型连接器，且利用电夹紧阀选择所述Y型连接器 的出口。一个出口连到哈佛毫升模式注射泵和5ml Hamilton气密注射器，第 二出口连接于100μl Hamilton气密注射器的Hamilton PSD/2注射泵。Hamilton PSD/2用于制造所有微滴(通过吸取)或从所述管中分配微滴(通过泵送)。 Hamilton毫升模式用于在所述管中进行微滴振荡。在每个实验之前，毛细管 完全填充所述载液并且开口端置于所述载液的贮存器中。

微滴是用于定量PCR的Taqman PCR混合物的混合物，Taqman PCR含有 Gold Taq聚合酶(Applied Biosystems出品)、qPCR核心试剂盒(Eurogentec)、 特定的引物、和荧光探针(3’-ATCTGCTGCATCTGCTTGGAGCCC A-5’， Applied Biosystems出品)。“混合物”样品含有除模板外的所有用于PCR的 成分。“DNA”样品含有从细胞系A549分离出的浓度6.25ng/μl的cDNA。 所述片断的扩增在与RPLPO基因使用Proligo引物(上游引物 3’-GGCGACCTGGAAGTCCAACT-5’；下游引物3’- CCATCAGCACCACAGCCTTC-5’)对应的149bp上进行。我们为每个实验做 了两个贮存器，一个贮存器具有针对每个对照微滴(一般为30μl)的足够混 合物，而第二贮存器具有针对cDNA微滴(一般为22μl)的足够混合物和模 板。

已经通过如下步骤测试在注射过程中的污染。从DNA贮存器中吸取2μl， 然后从载液贮存器中吸取4μl。然后通过将针尖浸在蒸馏水的贮存器中并用 ChemWipe干燥，以清洗所述端部。随后通过从混合物的贮存器中吸取2μl， 并从载液贮存器中吸取4μl，以形成连续的5个微滴。所有微滴形成后，我们 将所述步骤反向，并且在单独的Eppendorf管中收集每一微滴。在进行定量 PCR之前在-80℃下储存Eppendorf管。

在Taqman 7700qPCR机(Applied Biosystems出品)上，通过定量PCR来 分析每一微滴的含量。在这些实验中，值35表示在微滴中没有可检测到的 cDNA的量(即不具有超出噪音阈值的荧光信号的35个扩增循环)，且每个 整数增量对应cDNA质量的减半。

表1表示进口污染实验的结果。在未处理的毛细管中有明显的污染，正如 从微滴的形状可以预计的那样。在硅烷化的毛细管中也存在污染。然而，在混 合物贮存器中没有污染，所以我们可以得出：污染发生于微滴在毛细管中运输 时。对于具有含氟表面活性剂的硅烷化毛细管，我们观察到在第一清洗微滴中 有污染，且在混合物贮存器中有相同的污染。这使得我们相信：在转移期间污 染发生在针尖上，且在吸取DNA微滴后强力清洗针尖足以消除使用硅烷化毛 细管和表面活性剂的进口处的污染。使用Teflon针尖没有污染。

然后我们测试表面活性剂和硅烷化毛细管在微滴运送中避免污染的能力。 利用所述表面活性剂和硅烷化毛细管，采用与上述基本相同的吸取步骤，我们 先做了两个混合物微滴，然后是一个cDNA液滴，再后是两个混合物微滴。 本注射规程和上述规程的不同在于：为了降低针尖处的污染，我们在注射DNA 液滴后在两个单独的蒸馏水贮存器中清洗针尖。在步骤结束时，我们获得任一 侧带有两个2μl混合物微滴的2μlcDNA液滴(前面的对照1和2，后面的对照3 和4)，其中每个微滴由4μl载液间隔开。

然后我们使用哈佛毫升模块吸取，使得微滴处于Olympus双筒显微镜下 方的毛细管的直段中。使用计算机控制，我们振荡哈佛毫升模块使其以 1mm/sec的平均速度将毛细管中的微滴拉5cm，然后以1mm/sec的平均速度推 微滴5cm，使得单个循环不会产生微滴的净移动。我们进行了50次这样的循 环，使得微滴行进的总距离(5m)与我们连续流动PCR机中所要求的距离相当。 通过振荡微滴而不是以恒定速率推着它们穿过5m毛细管，我们模拟在高产出 操作下的条件。我们偶尔用显微镜观察微滴以确保它们没有润湿壁。

完成50次循环以后，我们在单独的eppindorf毛细管中收集微滴。在排除 每个微滴后，我们吸取2μl的蒸馏水洗涤微滴以清洗针尖。所述洗涤微滴也被 收集。通过定量PCR按照上述的方法分析所有微滴和混合物贮存器。

表2给出定量PCR的结果。在任何对照液滴中没有可检测到的污染。此 外，在所述清洗微滴中没有可检测到的污染。在所述混合物贮存器中有一些污 染，但是这不会导致在任何对照微滴中的污染。我们得出：所述含氟表面活性 剂和硅烷化毛细管的结合应该足以防止在高产出应用中的污染。

我们使用Teflon毛细管和含氟表面活性剂进行了基本相同的振荡实验。 唯一的不同在于：在此实验中，我们在收集微滴或使用另外的清洗微滴时没有 清洗针尖。

表3给出了采用Teflon管和含氟表面活性剂的结果。如在进口污染测试 中那样，混合物中没有污染，这表明洗涤足以将DNA从针尖上清除。在液滴 2中有一些污染。我们相信这个污染是由于在收集微滴时没有清洗针尖造成 的。液滴2紧接着cDNA液滴从系统中排出。可能少部分cDNA液滴被牵制 (entrain)在针尖表面的缺陷处，然后将转移到液滴2中。一个自动的微滴收 集或在线检测步骤可以除去这样的污染源。

表1.进口污染的定量PCR结果。35.00对应无可检测到的cDNA，且每个 整数减量对应于加倍的相对cDNA质量。

表2.在具有含氟表面活性剂的硅烷化毛细管内的循环过程中针对污染的 定量PCR结果。35.00对应无可检测到的cDNA，且每个整数减量对应于加倍 的相对cDNA质量。

  微滴   qPCR值   对照1   35.00   对照2   35.00   cDNA   20.17   对照3   35.00   对照4   35.00   清洗1   35.00   清洗2   35.00   清洗3   35.00

  清洗4   35.00   清洗5   35.00   混合物贮存器   33.90

表3.在具有含氟表面活性剂的Teflon毛细管内的循环过程中针对污染的 定量PCR结果。35.00对应无可检测到的cDNA，且每个整数减量对应于加倍 的相对cDNA质量。

  微滴   qPCR值   对照1   35.00   对照2   30.19   cDNA   19.83   对照3   35.00   对照4   35.00   混合物贮存器   35.00

实例16：设计和制造无污染的T型连接器。

此实例给出具有非常低死体积的、无污染地连接于与夹紧阀相适应的三个 不同进口的PDMS T-型连接器100的概念。

连接器100是在PDMS(KODAK SYLGARD 184)中用1∶10比例的固化剂 制造。用于制造连接器100的模具101是PMMA平行六面体(内部长度和宽度 均为9mm，内部高度为8mm)。在平行六面体的三个面103的中心均钻取内 径800μm的孔102。第一毛细管105(外径800μm)的5mm部分104 引入到3cm长的第二毛细管(外径1.5mm，内径800μm)的端部内， 且伸出1.5mm。以这种方式制造三个部件，并将这三个部件引入并保持在所 述平行六面体中，以形成彼此面对的较小管状的T型(见图22)。然后将PDMS 106除气20分钟，注入到这样构造的模具中且放入65℃烤箱3小时。

三小时后，温和地拖拉件104和105以将它们取下，从模具101 中取出得到的T型连接器。T型连接器100有三个孔口108，每个孔口包括彼 此跟随的共轴的柱状空心部分，外面的部分110具有1.5mm的直径且长度 3mm，里面的部分111具有800μm的直径且长度1.5mm。然后将涂有硅橡胶 (Dow Coming出品)的5cm硅烷毛细管109(Cole-Parmer；外径1.8mm，内径 800μm)引入到T型连接器的每个孔口的3mm处(对应外柱体)，且通过在 PDMS T型连接器进口附近的管的周围加入更多橡胶来加强所述连接器。由于 硅烷和PDMS的弹性，可以将外径1.8mm的硅烷管推入到T型连接器的1.5mm 直径的孔口中，从而提供良好的连接紧密性。将得到的连接器放入烘箱2小时。

采用实例14所述的方法将具有硅烷毛细管的T型连接器100进一步硅烷 化。通过这个方法得到具有非常低的死体积且即使在高压下也没有泄漏的固体 连接器。而且，硅烷管的使用允许使用没有死体积的夹紧阀。

应用的实例

根据本发明制造的装置可以用于进行，例如：

-混合，

-核酸筛选，

-核酸扩增，例如通过PCR、NASBA、滚环扩增(rolling circle amplification)，

-RNA反转录

-基因分型(genotyping)，

-蛋白质组(proteomic)分析，

-转录组(transcriptome)分析，

-结晶，且特别是蛋白质结晶，

-寻找和评价药物靶点、药物目标或引药，或药物，

-酶-蛋白反应，

-抗原-抗体反应，

-生物制品的化学库的筛选，

-高产出筛选，

-药物递送，

-诊断，

-至少一个活细胞或死细胞的分解或溶解，

-微生物分析，

-化学反应，

-反应性-催化剂反应

-聚合反应，

-使颗粒例如胶体熔融以形成链，

-胶体、乳剂、泡囊的制备、特别是单分散胶体物质的制备，

-纳米颗粒或微米颗粒的制备，

-环境控制，

-污染物检测，

-工业过程控制。