法律状态公告日
法律状态信息
法律状态
2017-09-15
专利权的转移 IPC(主分类):G01N33/577 登记生效日:20170825 变更前: 变更后: 申请日:20111111
专利申请权、专利权的转移
2015-05-27
授权
授权
2012-07-18
实质审查的生效 IPC(主分类):G01N33/577 申请日:20111111
实质审查的生效
2012-06-20
公开
公开
技术领域
本发明属于生物分析化学、纳米生物技术领域,具体地说,涉及一种基于免疫磁珠的CEA时间分辨荧光免疫分析试剂盒。
背景技术
癌胚抗原(CEA)是1965年Gold和Freedman首先从胎儿及结肠癌组织中发现的。CEA的编码基因位于19号染色体,是一种分子量为22000的多糖蛋白复合物,45%为蛋白质。一般情况下,CEA是由胎儿胃肠道上皮组织、胰和肝细胞所合成。通常在妊娠前6个月内CEA含量增高,出生后血清中含量已很低。正常情况下,CEA经胃肠道代谢,而肿瘤状态时的CEA则进入血液和淋巴循环,引起血清CEA异常增高。目前认为,CEA广泛存在于内胚叶起源的消化系统癌中,如胃癌、大肠癌、肝癌、胰腺癌,也可存在于小细胞肺癌、乳腺癌、甲状腺髓样癌中。因此,检测血清中CEA含量对上述癌症的诊断具有辅助价值。
目前常规的癌胚抗原检测大多采用酶免疫分析(Enzymatic immunoassay,EIA)、化学发光免疫分析(Chemilinescent immunoassay,CLIA)和时间分辨荧光免疫分析(Time-resolved fluoroimmunoassay,TRFIA)等。
酶联免疫法试剂盒为定性或半定量试剂,不能为临床医生提供精确的定量,很难有效指导临床的治疗。
CLIA与其它标记技术相比有许多优点:①无放射性辐射的危害;②灵敏度高,检测线性范围宽;③稳定性好、自动化程度高;④应用范围宽,可检测不同分子大小的抗原、半抗原和抗体,又可以用于核酸探针的检测。缺点是发光过程短、样品不能重复检测、本底较高及易受环境物质干扰。目前国内使用大部分为Roche、Abbott、Beckman为代表的进口试剂。
TRFIA技术是继放射免疫分析之后标记物发展的一个新里程碑,已成为生物医学研究和临床超微量生化检验中一项最有发展前景的分析手段。TRFIA以稀土离子作为标记物,具有制备简便、储存时间长、无放射性污染、标准曲线范围宽、不受样品自然荧光干扰和应用范围十分广泛等优点。然而,目前国内外厂家均采用基于微孔板TRFIA技术,由于微孔板的固液相反应面积小,需要的免疫反应时间较久;微孔板包被抗体或抗原是通过物理吸附包被,包被抗体或抗原很难标准化,使得检测结果精密度较差;微孔板TRFIA技术主要为半自动检测,或前处理加上TRFIA检测仪的准全自动检测,使得样本需要积累到一定量后才能检测。
免疫磁珠是免疫学和磁载体技术相结合而发展起来的一类新型材料,是一种磁珠表面包被特异性配基,可与抗体/抗原特异性的结合形成磁珠-抗体/抗原复合物,然后通过外加磁场的作用,使磁珠和溶液快速分离,磁珠与传统的微孔板相比具有以下的特点: 表面积更大,能结合更多的蛋白分子;可以通过共价键与探针分子连接,比聚苯乙烯为材料的微孔板的物理吸附作用更牢固;是一种小型的、流动的固相载体,使反应能更快的达到动态平衡,从而加快反应速度;表面结合的密度高,使荧光信号更集中;可以和不同的探针分子结合,使检测同一样本中不同的待测物成为可能;磁珠的外观和包被过程的灵活性更大,可以根据不同的实验要求进行选择。
磁珠的上述特点与时间分辨荧光免疫分析结合后可以减少反应所需的样本量,加快反应时间,易自动化,实验样本随到随做功能。
目前免疫磁珠在化学发光免疫分析、核酸提取等领域已有广泛的应用,但免疫磁珠结合时间分辨荧光免疫分析检测一些肿瘤相关抗原尚无文献报道。
发明内容
本发明的目的在于提供一种基于免疫磁珠的CEA时间分辨荧光免疫分析试剂盒。
本发明检测方法的基础是双抗体夹心的免疫反应:通过磁珠与抗体连接形成复合物,即免疫磁珠,用免疫磁珠、铕标记抗体及样本中CEA抗原在反应管中经过震荡孵育后形成免疫磁珠-CEA抗原-铕标抗体复合物。加入增强液震荡反应后,在紫外光的激发下发射出很强的荧光,用时间分辨仪器测定其荧光强度。荧光强度与样品中的CEA浓度成正比,对照标准曲线即可确定样品中抗原的量。
本发明的基于免疫磁珠的CEA时间分辨荧光免疫分析试剂盒包括:
1) 校准品
2) 连接抗CEA抗体的磁珠
3) 铕标记抗CEA抗体
4) 分析缓冲液
5) 洗涤液(25x)
6) 增强液
上述连接抗CEA抗体的磁珠的制备步骤为:磁珠活化→与抗CEA单克隆抗
体连接→洗涤→封闭→保存等步骤制备得到偶联有高特异性的抗-CEA单克隆抗体的免疫磁珠。
上述铕标记抗CEA抗体的制备步骤为:选用抗CEA-单克隆抗体进行Eu3+标记,抗体与Eu3+标记物的比例为5:1(质量比)为最佳比例,标记率太高,影响被标记抗体的免疫活性;标记率太低,信号强度不够,降低检测灵敏度。
上述校准品的制备步骤为:用含2 g/L BSA及1 g/L NaN3的50 mmol/l pH7.8 Tris-Hcl缓冲液,将CEA抗原配制成0、1、5、10、100及560 ng/mL系列浓度的校准溶液,按每瓶1mL分装冻干,4℃保存备用。
上述分析缓冲液配方为:Tris-HCl(50mmol/L,)、PEG6000(1.5%)、BSA(0.2%)、Proclin300(0.1%)、牛IgG(0.02%)、Tween 20(0.1%)和NaCl(0.84%) pH7.8缓冲液。
上述洗涤液(25x)配方为:Tris-HCl(1.25mmol/L,)、Tween 20(2.5%)和NaCl(21%) pH7.8缓冲液。
上述增强液配方为:由β2二酮体、三辛基氧化磷(TOPO) 、Triton200、醋酸和邻苯二甲酸氢钾(pH 2. 0~3. 2) 组成。
本发明的测定方法为:往反应管中加入用分析缓冲液以体积比为1:25稀释的免疫磁珠50 μl,然后加入CEA校准品或样品25 μl,再加入用分析缓冲液以体积比为1:50稀释的Eu3+标记抗体200 μl;室温震荡孵育反应30 min,运用磁性分离技术将吸附CEA的免疫磁珠与上清分离洗涤,最后每孔加入200 μl增强液振摇5 min后在时间分辨荧光检测仪上按所编程序测定。
与现有技术相比,本发明具有如下有益效果:
1、本发明首先对所用的原材料进行筛选试验和质量检定,包括免疫磁珠和铕标标记抗体的活性、标记物和抗体的比例、标记物的稀释度等通过反复探索和试验比对最终找到了简便、效率高、成本低、质量可靠的连接和标记方法。
2、本发明公开了基于上述探索试验得到的各种试剂配方,包括:洗涤液配方、分析缓冲液配方、增强液配方,进一步公开了铕标记抗体及免疫磁珠的制备过程。
3、本试剂盒采用磁分离技术并结合TRFIA技术,除拥有TRFIA技术的灵敏度高、储存时间长、无放射性污染、标准曲线范围宽等诸多优点外,还通过免疫磁珠的富集作用以及磁珠在液体中充分扩散使得结合表面积扩大,大大缩短反应时间,提高检测灵敏度。磁珠与抗体通过化学基团定向连接,大大减少配对抗体用量以及提高检测的精密度。另外该技术容易实现自动化,克服了传统微孔板式TRFIA技术需要样本累积到一定数量才能检测,实现了样本即时检测。
附图说明
图1为实施例3基于免疫磁珠CEA时间分辨荧光免疫分析试剂盒定标品标准曲线(双对数拟合)。
图2为实施例3基于免疫磁珠CEA时间分辨荧光免疫分析试剂盒国家标准品标准曲线(双对数拟合)。
图3为实施例4本发的试剂盒与Roche公司CEA电化学发光试剂盒检测血清CEA的相关性(回归分析)
图4为实施例4本发的试剂盒与广州市达瑞抗体工程技术有限公司微孔板式TRFIA试剂盒检测血清CEA的相关性(回归分析)。
具体实施方式
实施例1 本发明的试剂盒的制备
(1)免疫磁珠的制备具体步骤:
第一步,磁珠的预处理:用涡旋混合器充分混匀悬浮磁珠(Merck公司产品,编号: 39572001),取1ml(10mg)悬浮液于离心管中,并置于磁分离器上1min(或更长时间),小心移去上清。加入1ml Binding Buffer,用涡旋混合器充分混匀悬浮磁珠,并置于磁分离器上1min(或更长时间)小心移去上清,重复该步骤2次后加入25 μl EDC(10mg/ml)和40 μl NHS(10mg/ml),用样本旋转混合器,室温旋转30min。加入1ml Binding Buffer,用涡旋混合器充分混匀悬浮磁珠,并置于磁分离器上1min(或更长时间)小心移去上清,重复该步骤2次。
第二步,磁珠偶联:在第一步去除上清的磁珠中加入100 mg抗体(芬兰Medix公司产品,编号:5910),用涡旋混合器充分混匀悬浮磁珠,用样本旋转混合器,室温旋转3h。
第三步,洗涤:将第二步中的离心管置于磁分离器上1min(或更长时间),小心移去上清,加入1ml 洗涤液,用涡旋混合器充分混匀悬浮磁珠,并置于磁分离器上1min(或更长时间)小心移去上清,重复该步骤2次。
第四步,封闭:在清洗后的磁珠中加入3ml封闭液,用样本旋转混合器,室温旋转3h离心管置于磁分离器上1min(或更长时间),小心移去上清,加入1ml Binding Buffer,用涡旋混合器充分混匀悬浮磁珠,并置于磁分离器上1min(或更长时间)小心移去上清。
第五步,保存:在磁珠中加入1ml 保存液TBST,2-8℃保存。
第一步中所述Binding Buffer为含有MES(0.1M)、pH 5.0的缓冲液。
第一步中所述EDC为1-乙基-(3-二甲基氨基丙基)碳二亚胺盐酸盐,NHS为N-羟基硫代琥珀酰亚胺。
第三步中所述洗涤液为Tris-Hcl(25mM)、Nacl(0.15M)、Tween20(0.05%)、pH7.2的缓冲液。
第四步中所述封闭液为蔗糖(15%)、小牛血清(10%)、pH7.0的缓冲液。
第五步中所述保存液为Tris-Hcl(25mM)、Nacl(0.15M)、Tween20(0.05%)、pH7.2的缓冲液。
(2)铕标记抗CEA抗体制备步骤为:
抗体纯化和浓缩:将1mg 抗CEA单克隆抗体(芬兰Medix公司产品,编号:5909)加入0.5ml标记缓冲液(50mmol/L, Na2CO3, pH 9.0),混匀后,用Millipore公司带有滤膜的G-50离心管10000rpm离心5min,再重复洗涤6次,倒转离心收集抗体,体积控制在200μl左右。
抗体标记:将纯化的CEA抗体加入0.2mg Eu3+标记试剂(PerKin Elmer公司产品,编号: 1244-302),充分混匀,25℃振荡过夜。
上样与洗脱:用Sephadex G-50层析柱(1x30cm)分离纯化, 洗脱液(含0.9% NaCl的50mmol/l Tris-HCl )洗脱,同时收集流出液(1ml/管),逐管测量吸光度(A280nm),合并峰管,测蛋白含量并计算标记率。
确定稀释度:并管后的铕标记物,进行稀释度摸索,选择线性较好,灵敏度较低的稀释度;分装铕标记物:用连续加样枪分装,体积为1.0 ml/瓶,真空冷冻干燥。
保存:冻干后2℃- 8℃。
(3)校准品制备步骤为:用含2 g/L BSA及1 g/L NaN3的50 mmol/l pH7.8 Tris-Hcl缓冲液,将CEA抗原(美国Biodesign公司产品,编号:A41107H)配制成1、5、10、100及560 ng/mL系列浓度的校准溶液,按每瓶1mL分装冻干,4℃保存备用。
(4)分析缓冲液配方为:Tris-HCl(50mmol/L,)、PEG6000(1.5%)、BSA(0.2%)、Proclin300(0.1%)、牛IgG(0.02%)、Tween 20(0.1%)和NaCl(0.84%) pH7.8缓冲液。
(5)洗涤液(25x)配方为:Tris-HCl(1.25mmol/L,)、Tween 20(2.5%)和NaCl(21%) pH7.8缓冲液。
(6)增强液配方为:由β-萘甲酰三氟丙酮(β-NTA)(15 μmol/L)、三辛基氧化磷(TOPO)(50 μmol/L) 、Triton X-100(0.1%)、醋酸(0.6%)组成,用适量邻苯二甲酸氢钾调整pH为3.0-3.2。
实施例2 本发明的试剂盒的使用方法
(1)样本收集
采静脉血1-2ml于凝血管中,4℃放置2小时以上,待血清析出后取25ml血清即可。血清样品在2-8℃可以保存7天,如果需要长期保存,请在-20℃保存,避免反复冻融。样品需要在含干冰的保温瓶或其它装置条件下运输。
(2)试剂的准备
1) 洗涤液:将50 mL浓缩洗液和1200 mL去离子水混合,作为工作洗涤液。
2) 标记物工作液:使用前一小时将每瓶标记物用1 mL去离子水溶解,用分析缓冲液以1:50倍稀释作为铕标抗体工作液。
3) 免疫磁珠:使用前需震荡悬浮。
(3)操作步骤
1) 每管加入50 μl免疫磁珠,然后加入25 μl校准品或样品,再加入200μl铕标抗体工作液,室温震荡孵育30min。
2) 将反应管置于磁力分离架上2分钟,使磁珠凝集。
3) 吸弃上清,用洗涤液冲洗4次,洗涤液加入量为300 μl,每次加入洗涤液后需静置30秒,使磁珠重新凝集。
4)吸弃洗液,每孔加增强液200 μl,震荡孵育5分钟。
5)测定。
实施例3 本发明的试剂盒的方法学检定
按照本领域中常规的制造和检定规程对通过实施例1中制备成的试剂盒进行检定,结果如下:
1)准确度
对校准品与相应浓度的国家标准品同时进行分析测定后,用双对数数学模型(log-log)拟合,两条剂量-反应曲线基本平行(图1:为国家标准品的剂量-反应曲线; 图2:为校准品的剂量-反应曲线;Cps为每秒钟荧光计数),两条曲线的斜率分别为0.461和0.458(t检验P>0.05)。以CEA国家标准品为对照品,校准品的实测效价与标示效价的比值在0.9~1.1之间。剂量-反应曲线的线性相关系数(r)=0.998。
2)分析灵敏度和线性范围
以零参考标准品当作样品测量8次,计算其荧光值及标准差。以该点荧光测定平均值加2倍标准差所得的荧光值代入标准曲线方程计算得出的浓度值为其灵敏度,经测定本试剂分析灵敏度为0.15ng/ml。将抗原稀释成不同浓度进行测定,测得标准曲线线性范围为0.15~1000ng/ml。
3) 精密度(CV%)
用本发明试剂盒对自制的CEA质控品(质控品Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ,预期浓度分别为8.76、25.8、84.9ng/ml)进行测定,各设10个复孔。结果本发明试剂盒的批内变异系数(CV%)为3.3%-6.8%和批间变异系数(CV%)为5.5%-8.5%。较杭建锋等报道的微孔板CEA TRFIA批内和批间的变异系数(CV%)为7.2%-8.6%和8.9%-13.2%要好。
表1 批内精密度测试结果(n=10)
表2 批间精密度测试结果(三批,n=3*10 )
4) 特异性
将高浓度的AFP、CA125、CA19-9及人白蛋白当作样品用本试剂盒测定,结果表明无明显交叉反应,见表3。
表3 CEA特异性检测结果
5) 正常值范围值
用自制试剂对400例健康查体者(男200例,年龄3~65岁;女200例,年龄8~80岁)血清CEA的水平检测表明,最低值为0 μg/L,最高值为10.8 μg/L,平均浓度()为3.14 μg/L,标准差(SD)为1.66 μg/L。从表4的结果可以看出,大多数样本(96.0%)中的CEA浓度值在6.0 μg/L以下,均值加2个SD等于6.46 μg/L;96.75%的标本CEA的浓度值在6.5 μg/L以下。综合其他人的研究及临床参考值,我们建议采用本试剂检测时,血清CEA水平的正常参考值范围应定为0~6.5 μg/L。各医院使用本试剂检测时,根据各地区样本的差异,建议设立自己的参考值范围。
表4 正常人血清CEA水平检测结果的统计学分析 (n=400)
实施例4 本发明的试剂盒与国内外相关试剂盒临床血样测值比较
用本发明的试剂盒和罗氏公司的电化学发光CEA试剂盒以及广州市达瑞抗体工程技术有限公司微孔板式TRFIA CEA试剂盒同时对239份血清样本进行检测。以本发明方法测定血样的CEA浓度结果为横坐标,以罗氏公司电化学发光法测定的CEA浓度结果为纵坐标做回归分析,相关方程为:Y= 0.873X-3.802,相关系数r=0.976(图3);以本发明方法测定血样的CEA浓度结果为横坐标,以广州市达瑞抗体工程技术有限公司微孔板式TRFIA法测定的浓度结果为纵坐标做回归分析,相关方程为:Y= 1.049X+1.696,相关系数r=0.985(图4)。经统计学处理结果表明,本发明方法与罗氏电化学发光试剂和广州市达瑞抗体工程技术有限公司微孔板式TRFIA试剂临床血样测值均具有显著相关性。
机译: 增加t细胞中外源序列表达的方法,基于该试剂盒的试剂盒,包含至少一种共刺激剂的药物组合物和包含外源序列的腺病毒载体
机译: 用于预测药物代谢的多核苷酸,包括NR1I2基因的单核苷酸多态性,一种试剂盒和一种基于其的药物代谢预测方法
机译: Elisa试剂盒的装置基于一种抗原:一种蛋白m dbp,ebv病毒,特别是用于诊断癌症血清学npc的ebv病毒,以及该蛋白的制备方法