人CXCL1蛋白质的免疫学测定方法

摘要

本发明的课题在于高灵敏度地检测人CXCL1蛋白质。本发明提供了一种人CXCL1蛋白质的免疫学测定方法，所述人CXCL1蛋白质的免疫学测定方法通过使用2种以上的抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，测定样品中的人CXCL1或其片段，所述2种以上的抗人CXCL1单克隆抗体或其片段特异性识别构成CXCL1蛋白质的氨基酸序列的部分序列即序列号1～3表示的氨基酸序列中的任一序列区、且特异性识别各个不同的序列区，另外，本发明提供一种具有新氨基酸序列的单克隆抗体或其片段，所述新氨基酸序列特异性识别序列号1～3表示的氨基酸序列中的任一序列区。

说明书

技术领域

本发明涉及一种测定人CXCL1蛋白质(以下记作人CXCL1) 的方法。更详细而言，本发明涉及一种测定人CXCL1的免疫学测定 方法，所述免疫学测定方法组合使用单克隆抗体或其片段，所述单 克隆抗体或其片段与构成人CXCL1的氨基酸序列上的特定3处的部 分序列区中的任一个特异性结合。另外，本发明涉及可以在上述测 定人CXCL1蛋白质的方法中使用的、与人CXCL1特异性结合的单 克隆抗体或其片段。

背景技术

人CXCL1是属于CXC家族的趋化因子的一种。已知该蛋白质 在血液中存在于血小板内，与其他CXC家族同样地在炎症反应时过 量表达。

近年来，有报道称上述人CXCL1作为肿瘤相关因子发挥作用。 因此，人们期待通过从尿中定量地检测可以成为尿路上皮癌的标记 物(非专利文献1、专利文献1)。进而，有报道指出在大肠癌、卵 巢癌、恶性黑色素瘤等其他恶性肿瘤患者的组织或血液中，人CXCL1 在基因水平、蛋白质水平上发生变化(非专利文献2、非专利文献3、 非专利文献4)，潜在地可以极早期及/或早期检测出尿路上皮癌及 上述癌。

然而，在使用现有的酶免疫学测定法的测定法中，检测上述癌 所需要的灵敏度不足。例如，专利文献1中记载的R&DSYSTEMS 公司(以下R&DSYSTEMS公司)制的人CXCL1测定用试剂盒的 检出限浓度为20pg/mL左右，而健康人的尿中的人CXCL1浓度达 不到上述检出限。因此，期待更高灵敏度的人CXCL1的测定法。

专利文献1：WO2007/026895

非专利文献1：Hiroaki Kawanishi et al，2008，Clinical Cancer  Research，vol.14，No.9，2579-2587

非专利文献2：Gong Yang et al，2006，PNAS，vol.103，No.44， 16472-16477

非专利文献3：Yu Wen et al，2006，Clinical Cancer Research， vol.12，No.20，5951-5959

非专利文献4：Jing Luan et al，1997，Journal of Leukocyte Biology， vol.62，No.5，588-597

发明内容

因此，本发明的一个方案的目的在于提供一种以更高灵敏度检 测人CXCL1的免疫学测定法。更具体而言，本发明的目的在于，通 过组合抗体或抗原识别部分的免疫学测定法，获得以更高灵敏度检 测人CXCL1的方法，所述抗体或抗原识别部分与构成人CXCL1的 氨基酸序列中的特定3处的序列中的任一个特异性结合。

另外，本发明的另一个方案的目的在于提供特异性识别人 CXCL1的单克隆抗体或其片段。更具体而言，本发明的另一个目的 在于提供一种单克隆抗体或其片段，所述单克隆抗体或其片段可以 用于上述以更高灵敏度检测人CXCL1的方法、且含有特异性识别人 CXCL1的新氨基酸序列、并且与现有抗体相比具有较高亲和性。

本发明人等为了解决上述课题进行了深入研究，结果发现通过 组合单克隆抗体或抗原识别部分进行免疫学测定，能够以比现有技 术更高的灵敏度检测人CXCL1，所述单克隆抗体或抗原识别部分与 构成人CXCL1的氨基酸序列中的特定3处的部分序列区特异性结 合。另外，成功地制备了含有与上述人CXCL1上的3处部分序列特 异性结合的新氨基酸序列的单克隆抗体、及产生该抗体的杂交瘤。 进而，分离了编码构成该抗体的氨基酸序列的基因，确定其碱基序 列。由此，可以制备重组抗体及其重组片段。本发明是基于上述发 现而完成的，即，提供以下(1)～(15)。

(1)一种人CXCL1蛋白质的免疫学测定方法，其特征在于， 使用2种以上的抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，测定样品中的人 CXCL1或其片段，所述2种以上的抗人CXCL1单克隆抗体或其片 段特异性识别构成人CXCL1蛋白质的氨基酸序列的部分序列即序 列号1～3表示的氨基酸序列中的任一序列区、且特异性识别各个不 同的序列区。

(2)如(1)所述的人CXCL1蛋白质的免疫学测定方法，其特 征在于，使用特异性识别序列号3表示的氨基酸序列区的抗人 CXCL1单克隆抗体或其片段，测定样品中的人CXCL1蛋白质或其 片段。

(3)如(1)或(2)所述的人CXCL1蛋白质的免疫学测定方 法，其特征在于，使用特异性识别序列号1表示的氨基酸序列区的 抗人CXCL1单克隆抗体或其片段及特异性识别序列号3表示的氨基 酸序列区的抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，测定样品中的人 CXCL1蛋白质或其片段。

(4)如(1)或(2)所述的人CXCL1蛋白质的免疫学测定方 法，其特征在于，使用特异性识别序列号2表示的氨基酸序列区的 抗人CXCL1单克隆抗体或其片段及特异性识别序列号3表示的氨基 酸序列区的抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，测定样品中的人 CXCL1蛋白质或其片段。

(5)如(1)～(4)中任一项所述的人CXCL1蛋白质的免疫 学测定方法，其中，所述样品为术后收集的组织、血液、血清、血 浆、尿、脊髓液、唾液、淋巴液、泪液或精液。

(6)一种抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，是特异性识别序 列号3表示的构成人CXCL1蛋白质的氨基酸序列的部分序列的单克 隆抗体或其片段，在其轻链上，CDR1含有序列号4表示的氨基酸序 列，CDR2含有序列号5表示的氨基酸序列，及CDR3含有序列号6 表示的氨基酸序列，在重链上，CDR1含有序列号7表示的氨基酸序 列，CDR2含有序列号8表示的氨基酸序列，及CDR3含有序列号9 表示的氨基酸序列。

(7)如(6)所述的抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，其中， 轻链可变区含有序列号10表示的氨基酸序列，重链可变区含有序列 号11表示的氨基酸序列。

(8)一种抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，是特异性识别序 列号1表示的构成人CXCL1蛋白质的氨基酸序列的部分序列的单克 隆抗体或其片段，在其轻链上，CDR1含有序列号12表示的氨基酸 序列，CDR2含有序列号13表示的氨基酸序列，及CDR3含有序列 号14表示的氨基酸序列，在重链上，CDR1含有序列号15表示的氨 基酸序列，CDR2含有序列号16表示的氨基酸序列，及CDR3含有 序列号17表示的氨基酸序列。

(9)如(8)所述的抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，其中， 轻链可变区含有序列号18表示的氨基酸序列，重链可变区含有序列 号19表示的氨基酸序列。

(10)一种抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，是特异性识别序 列号3表示的构成人CXCL1蛋白质的氨基酸序列的部分序列的单克 隆抗体或其片段，在其轻链上，CDR1含有序列号20表示的氨基酸 序列，CDR2含有序列号21表示的氨基酸序列，及CDR3含有序列 号22表示的氨基酸序列，在重链上，CDR1含有序列号23表示的氨 基酸序列，CDR2含有序列号24表示的氨基酸序列，及CDR3含有 序列号25表示的氨基酸序列。

(11)如(10)所述的抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，其中， 轻链可变区含有序列号26表示的氨基酸序列，重链可变区含有序列 号27表示的氨基酸序列。

(12)一种抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，是特异性识别序 列号2表示的构成人CXCL1蛋白质的氨基酸序列的部分序列的单克 隆抗体或其片段，在其轻链上，CDR1含有序列号28表示的氨基酸 序列，CDR2含有序列号29表示的氨基酸序列，及CDR3含有序列 号30表示的氨基酸序列，在重链上，CDR1含有序列号31表示的氨 基酸序列，CDR2含有序列号32表示的氨基酸序列，及CDR3含有 序列号33表示的氨基酸序列。

(13)如(12)所述的抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，其中， 轻链可变区含有序列号34表示的氨基酸序列，重链可变区含有序列 号35表示的氨基酸序列。

(14)一种抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，是特异性识别序 列号3表示的构成人CXCL1蛋白质的氨基酸序列的部分序列的单克 隆抗体或其片段，在其轻链上，CDR1含有序列号36表示的氨基酸 序列，CDR2含有序列号37表示的氨基酸序列，及CDR3含有序列 号38表示的氨基酸序列，在重链上，CDR1含有序列号39表示的氨 基酸序列，CDR2含有序列号40表示的氨基酸序列，及CDR3含有 序列号41表示的氨基酸序列。

(15)如(14)所述的抗人CXCL1单克隆抗体或其片段，其中， 轻链可变区含有序列号42表示的氨基酸序列，重链可变区含有序列 号43表示的氨基酸序列。

根据本发明，能够以比现有技术更高的灵敏度测定人CXCL1的 浓度。另外，可以提供一种特异性识别人CXCL1的高亲和性的抗人 CXCL1单克隆抗体或其片段。

附图说明

[图1]表示采用现有方法进行的免疫学测定，所述现有方法使 用夹心ELISA法和市售试剂盒，所述夹心ELISA法使用特异性识别 序列号1～3表示的氨基酸序列中的任一个的单克隆抗体。

[图2]使用特异性识别序列号3表示的氨基酸序列的单克隆抗 体作为标记抗体的夹心ELISA。

[图3]使用特异性识别序列号1、或2表示的氨基酸序列的单 克隆抗体、及特异性识别序列号3表示的氨基酸序列的单克隆抗体、 检测尿中人CXCL1的夹心ELISA。

[图4]检测缓冲液中的人CXCL1的曲线图，在该检测中将特 异性识别序列号2表示的氨基酸序列的市售抗体固相化，并采用夹 心ELISA法，该夹心ELISA法使用生物素标记的识别序列号3表示 的氨基酸序列的本发明的抗体、或市售的生物素标记抗人CXCL1多 克隆抗体。

[图5]检测缓冲液中的人CXCL1的曲线图，在该检测中将本 发明的5种抗体(IgG1-1、IgG1-3、IgG1-10、IgG1-14、IgG2b -1)、及市售抗体固相化，并采用使用生物素标记抗人CXCL1多 克隆抗体的夹心ELISA法。

[图6]检测血浆中的人CXCL1的曲线图，在该检测中将本发 明的5种抗体及市售抗体固相化，并采用使用生物素标记抗人 CXCL1多克隆抗体的夹心ELISA法。

[图7]检测尿中的人CXCL1的曲线图，在该检测中将本发明 的5种抗体及市售抗体固相化，并采用使用生物素标记抗人CXCL1 多克隆抗体的夹心ELISA法。

[图8]表示本发明的5种抗体及市售抗体的膀胱癌细胞侵袭 (invasion)抑制能的图(1)。

[图9]表示本发明的4种抗体及市售抗体的膀胱癌细胞侵袭抑 制能的图(2)。

具体实施方式

以下，详细地说明本发明的实施方式。

1.抗人CXCL1单克隆抗体及其片段

本说明书中使用的术语“人CXCL1”，是指含有GenbankNM_ 001511中记载的氨基酸序列的蛋白质或其天然突变体。此处所谓的 “天然突变体”是自然界存在的突变体，例如，是指在上述氨基酸序 列中缺失、取代、或添加1个或多个氨基酸的突变体，与上述氨基 酸序列具有95％以上、优选98％以上、较优选99％以上的同源性的 突变体等。此处所谓“同源性”，是指在2个氨基酸序列中引入空位 或不引入空位的状态下，进行整列(排列整齐)使其一致度达到最 高时，包含上述空位数在内的、相对于一个氨基酸序列的全部氨基 酸残基数、另一个氨基酸序列的相同氨基酸残基数的比例(％)。 另外，所谓“多个”是指2～10的整数，例如2～7、2～5、2～4、2～ 3的整数。作为天然突变体的具体例子，可以举出SNP(单核苷酸多 态性)等基于多型的突变体和剪接突变体等。上述取代优选为保守 的氨基酸取代。其原因是如果为保守的氨基酸取代，则可以使其具 有与具有上述氨基酸序列的人CXCL1实质上同等的结构或性质。所 谓保守的氨基酸，已知相互为非极性氨基酸(甘氨酸、丙氨酸、苯 丙氨酸、缬氨酸、亮氨酸、异亮氨酸、蛋氨酸、脯氨酸、色氨酸) 及极性氨基酸(除非极性氨基酸之外的氨基酸)、带电荷的氨基酸 (酸性氨基酸(天门冬氨酸、谷氨酸)及碱性氨基酸(精氨酸、组 氨酸、赖氨酸))及不带电荷的氨基酸(除带电荷的氨基酸之外的 氨基酸)、芳香族氨基酸(苯丙氨酸、色氨酸、酪氨酸)、支链氨 基酸(亮氨酸、异亮氨酸、缬氨酸)、以及脂肪族氨基酸(甘氨酸、 丙氨酸、亮氨酸、异亮氨酸、缬氨酸)等。

本说明书中使用的所谓“单克隆抗体”，是指含有来自免疫球蛋 白或其片段的构架区(FR：Frame work region)及互补决定区(CDR： Complementarity determining region)、能够与抗原特异性结合且识 别抗原的多肽。因此，本发明的所谓“抗人CXCL1单克隆抗体”，是 指能够与人CXCL1或其片段特异性结合、且识别人CXCL1或其片 段的多肽。所谓“特异性结合”，是指只与靶抗原(本发明中的人 CXCL1或其片段)结合。

典型的免疫球蛋白分子形成四聚体结构，其中称作重链及轻链 的2条多肽链形成的组通过二硫键2组相互连接。重链含有N末端 的重链可变区(V_H)和C末端的重链恒定区(C_H)，轻链含有N末 端的轻链可变区(V_L)和C末端的轻链恒定区(C_L)。其中，从干 预与抗体的结合特异性的方面考虑，V_H及V_L特别重要。所述V_H及 V_L均由约110个氨基酸残基构成，其内部具有直接干预与抗原的结 合特异性的3个互补决定区(CDR1、CDR2、CDR3)、及作为可变 区的骨架结构发挥作用的4个构架区(FR1、FR2、FR3、FR4)。已 知互补决定区形成与抗原分子互补的立体结构，决定抗体的特异性 (E.A.Kabat et al.，1991，Sequences of proteins of immunological  interest，Vol.1，eds.5，NIH publication)。恒定区的氨基酸序列在种内 抗体间几乎不变，而互补链决定区的氨基酸序列在各抗体间变异性 很高，因此，也称作超可变区(Hypervariable region)。在可变区中， 上述互补决定区与构架区在从氨基酸末端至羧基末端的方向上以 FR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3、FR4的顺序进行排列。在 免疫球蛋白分子内，V_L及V_H通过相互形成二聚体形成抗原结合部 位。免疫球蛋白已知有IgG、IgM、IgA、IgE、及IgD各类，本发明 的抗体可以为任一类，优选为IgG。

本发明中有用的抗体，可以来自于包含鸟及哺乳动物在内的所 有动物源。例如可以举出小鼠、大鼠、豚鼠、兔子、山羊、驴、绵 羊、骆驼、马、鸡或人等。另外，本发明的“单克隆抗体”可以化学 合成或通过使用重组DNA法合成。例如，嵌合抗体及人源化抗体之 类的重组抗体也包含在本发明中。

所谓嵌合抗体是某抗体的恒定区被其他抗体的恒定区取代的抗 体。例如，在抗人CXCL1小鼠单克隆抗体中其恒定区被人抗体的恒 定区替换的抗体。作为更具体的例子，可以举出下述抗体：V_L含有 各个序列号10、18、26、34或42中的任一个表示的抗人CXCL1小 鼠单克隆抗体的V_L中的氨基酸序列、且C_L含有任意人抗体的C_L中 的氨基酸序列、及/或V_H含有各个序列号11、19、27、35或43中 的任一个表示的抗人CXCL1小鼠单克隆抗体的V_H中的氨基酸序列、 且C_H含有任意人抗体的C_H中的氨基酸序列。

所谓人源化抗体，是将来自某抗体(通常为非人抗体、例如小 鼠抗体)的CDR组与人抗体的FR及恒定区人为地组合而形成的嵌 合体抗体(mosaic antibody)。例如，将抗人CXCL1小鼠单克隆抗体 的各CDR、任意的人抗体的各FR和恒定区进行组合得到的抗体。 由于抗体的抗原结合特异性主要由可变区中的CDR组担负，所以在 制备与上述某抗体具有同样的结合特性的重组抗体时，不需要得到 某抗体的全氨基酸序列。即，使用现有的重组DNA技术，制备嵌合 体抗体，使其表达，所述嵌合体抗体中将编码来自某抗体的各CDR 的DNA序列分别取代为编码来自人抗体的对应的CDR的DNA序 列，由此可以得到与某抗体的性质相似的重组抗体。上述技术称作 CDR移植抗体(Nature，1986，Vol.321，522)。需要说明的是，本发 明的抗人CXCL1抗体或其片段用于人CXCL1或其片段的检测时， 不必一定是人源化抗体，使用上述移植抗体技术，FR及恒定区也可 以来自除人之外的任意动物的抗体。

进而，本发明中的“抗体”可以为多重特异性抗体。所谓多重特 异性抗体，是指多价抗体，即在一分子内具有多个抗原结合部位的 抗体中各个抗原结合部位与不同的表位结合的抗体。例如，可以举 出在IgG之类的具有2个抗原结合部位的抗体中各个抗原结合部位 与不同的表位结合的双特异性抗体(Bispecific抗体)。在本发明中， 上述多重特异性抗体优选各个抗原结合部位可以与人CXCL1上存 在的不同表位结合。可以使用重组DNA技术，根据公知方法，通过 人工改变IgG等得到上述抗体。

在本说明书中使用时，“单克隆抗体或其片段”中的“其片段”，是 指上述抗体的部分区域，即，具有与该抗体具有的抗原特异性结合 活性实质上同等的活性的多肽链或其复合体。例如，包含至少一个 上述抗原结合部位的抗体部分，即具有至少1个V_L和至少一个V_H的多肽链或其复合体。作为具体例，可以举出通过用各种肽酶切断 免疫球蛋白产生的多个被充分付与特征的抗体片段等。作为更具体 的例子，可以举出Fab、F(ab’)₂、Fab’等。Fab是通过用木瓜蛋白 酶在比铰合部的二硫键更接近N末端侧切断IgG分子而产生的片段， 由多肽和轻链构成，所述多肽含有V_H及构成C_H的3个结构域(C_H1、 C_H2、C_H3)中与V_H相邻的C_H1。F(ab’)₂是通过由胃蛋白酶在比 铰合部的二硫键更接近C末端侧切断IgG分子产生的Fab’的二聚体。 与Fab相比，Fab’含有铰合部，所以Fab’的H链稍长，但实质上Fab’ 具有与Fab同等的结构(Fundamental Immunology，Paul ed.，3d ed.， 1993)。Fab’可以通过在温和的条件下还原F(ab’)₂、切断铰链区 的二硫键而得到。上述抗体片段均包含抗原结合部位，具有与抗原 (即本发明中的人CXCL1或其片段)特异性结合的能力。

本发明的上述“其片段”可以通过化学合成或使用重组DNA法合 成。例如，可以举出使用重组DNA法新合成的抗体片段。虽然没有 限定，但具体而言可以举出：通过具有适当长度及序列的连接肽等 使本发明抗体的一个以上V_L及一个以上V_H人工连接形成的单体多 肽分子、或其多聚体多肽。作为上述多肽的例子，可以举出单链Fv (scFv：single chain Fragment of variable region)(参见Pierce catalog  and Handbook，1994-1995，Pierce Chemical co.，Rockford，IL)、双抗 体(diabody)、三链抗体(triabody)或四链抗体(tetrabody)等合 成抗体等。在免疫球蛋白分子中，V_L及V_H通常分别位于多肽链(轻 链和重链)上。单链Fv为具有下述结构的合成抗体片段，所述结构 为上述可变区通过具有足够长度的柔性连接体进行连接，包含在1 条多肽链中。在单链Fv内，两可变区可以相互之间自组装，形成1 个功能性的抗原结合部位。单链Fv可以通过使用公知技术将编码单 链Fv的重组DNA参入噬菌体基因组，使其表达而得到。双抗体是 具有以单链Fv的二聚体结构为基础的结构的分子(Holliger et al.， 1993，Proc.Natl.Acad.Sci.USA，90：6444-6448)。例如，上述连接 体的长度约短于12个氨基酸残基时，单链Fv内的2个可变部位不 能自组装，但是通过形成双抗体，即，通过使2个单链Fv相互作用， 一条Fv链的V_L与另一条Fv链的V_H能够组装，可以形成2功能性 的抗原结合部位(Marvin et al.，2005，Acta Pharmacol.Sin.，26：649- 658)。进而，通过向单链Fv的C末端添加半胱氨酸残基，2条Fv 链之间的二硫键可以形成，也可以形成稳定的双抗体(Olafsen et al， 2004，Prot.，Engr，Des.Sel.，17：21-27)。如上所述，双抗体为二价的 抗体片段，但不需要各个抗原结合部位与同一表位结合，可以具有 双特异性，即识别且特异性结合分别不同表位。例如，一个抗原结 合部位可以含有V_L及V_H，所述V_L包含含有序列号36、37、38表 示的氨基酸序列的CDR(分别相当于CDR1、CDR2、CDR3)，所 述V_H包含含有序列号39、40、41表示的氨基酸序列的CDR(分别 相当于CDR1、CDR2、CDR3)，另一个抗原结合部位可以含有V_L及V_H，所述V_L包含含有序列号28、29、30表示的氨基酸序列的CDR (分别相当于CDR1、CDR2、CDR3)，所述V_H包含含有序列号31、 32、33表示的氨基酸序列的CDR(分别相当于CDR1、CDR2、CDR3)。 三链抗体及四链抗体与双抗体同样地具有以单链Fv结构为基础的三 聚体及四聚体结构。分别可以为三价及四价抗体片段、或多重特异 性抗体。

进而，上述“其片段”是使用噬菌体展示文库鉴定的抗体片段(例 如，参见McCafferty et al.，1990，Nature，Vol.348，522-554)，并且 含有具有抗原结合能力的物质。此外，也可以参见例如Kuby，J. Immunology，3rd Ed.，1998，W.H.Freeman&Co.，NewYork。

本发明提供了具有下述氨基酸序列的抗体或其片段，所述氨基 酸序列构成对人CXCL1具备期望结合活性的可变区及其CDR。即， 本发明提供了含有下述免疫球蛋白可变区的抗体或其片段，所述免 疫球蛋白可变区含有序列号4～43中的任一个表示的氨基酸序列。

对于本发明的抗体或其片段，在其轻链上，CDR1、CDR2、CDR3 可以分别含有序列号4、5、6表示的氨基酸序列，在其重链上，CDR1、 CDR2、CDR3可以分别含有序列号7、8、9表示的氨基酸序列。

另外，在本发明的抗体或其片段中，V_L及V_H可以分别含有序列 号10、序列号11表示的氨基酸序列。

对于本发明的抗体或其片段，在其轻链上，CDR1、CDR2、CDR3 可以分别含有序列号12、13、14表示的氨基酸序列，在其重链上， CDR1、CDR2、CDR3可以分别含有序列号15、16、17表示的氨基 酸序列。

另外，在本发明的抗体或其片段上，V_L及V_H可以分别含有序列 号18、序列号19表示的氨基酸序列。

对于本发明的抗体或其片段，在其轻链上，CDR1、CDR2、CDR3 可以分别含有序列号20、21、22表示的氨基酸序列，在其重链上， CDR1、CDR2、CDR3可以分别含有序列号23、24、25表示的氨基 酸序列。

另外，在本发明的抗体或其片段上，V_L及V_H可以分别含有序列 号26、序列号27表示的氨基酸序列。

对于本发明的抗体或其片段，在其轻链上，CDR1、CDR2、CDR3 可以分别含有序列号28、29、30表示的氨基酸序列，在其重链上， CDR1、CDR2、CDR3可以分别含有序列号31、32、33表示的氨基 酸序列。

另外，在本发明的抗体或其片段上，V_L及V_H可以分别含有序列 号34、序列号35表示的氨基酸序列。

对于本发明的抗体或其片段，在其轻链上，CDR1、CDR2、CDR3 可以分别含有序列号36、37、38表示的氨基酸序列，在其重链上， CDR1、CDR2、CDR3可以分别含有序列号39、40、41表示的氨基 酸序列。

另外，在本发明的抗体或其片段上，V_L及V_H可以分别含有序列 号42、序列号43表示的氨基酸序列。

本发明的抗体或其片段可以进行修饰。此处所述的“修饰”，包 括下述任一种：在本发明的抗体或其片段具有与人CXCL1的特异性 结合活性的方面所需要的功能上的修饰(例如糖基化)、及在检测 本发明的抗体或其片段方面所需要的标记。上述抗体标记中，例如 可以举出采用荧光染料(FITC、罗丹明、德克萨斯红、Cy3、Cy5)、 荧光蛋白质(例如PE、APC、GFP)、酶(例如辣根过氧化物酶、 碱性磷酸酶、葡糖氧化酶)、生物素或(链霉)抗生物素的标记。 另外，为了调节抗体对靶抗原的亲和性，可以改变本发明的抗体的 糖基化。上述改变例如可以通过变更抗体序列内的一个以上的糖基 化部位而达成。更具体地进行说明，例如向构成FR内的一个以上糖 基化部位的氨基酸序列中导入一个以上的氨基酸取代，除去该糖基 化部位，由此可以使所述部位的糖基化丧失。上述脱糖基化在增加 抗体对抗原的亲和性的方面有效(美国专利第5714350号及美国专 利第6350861号)。

对于本发明的测定方法中使用的单克隆抗体或其片段，为了确 保针对人CXCL1或其片段的特异性结合活性，优选在使用前事先验 证与其他抗原(蛋白质或其片段)的交叉反应性。在本发明的抗体 或其片段中，应确认交叉性的抗原可以举出属于CXC家族的蛋白质、 特别是与人CXCL1结构上类似的人CXCL2蛋白质、人CXCL3蛋白 质。另外，除上述蛋白质之外，对于部分结构与人CXCL1共通的其 他蛋白质，也较优选事先确认在本发明的测定方法中使用的抗体或 其片段的交叉反应性。交叉反应的确认中，可以使用以人CXCL1作 为抗原的ELISA法。应试验反应特异性的抗体，即抗人CXCL1单 克隆抗体及其片段与人CXCL1的反应时，如果使应确认交叉性的其 他抗原蛋白质共存，则通过观察两者的竞争状态可以进行交叉性的 确认。利用竞争抑制原理的上述交叉性的确认方法，不需要针对所 有的抗原制备反应体系，因此可以迅速进行筛选。

2.单克隆抗体及杂交瘤制备方法

本发明的抗人CXCL1单克隆抗体或产生其抗体的杂交瘤可以通 过以下记载的方法进行制备。但并不限定于所述方法，也可以使用 本技术领域公知的其他任何方法制备。

A.抗人CXCL1单克隆抗体制备方法

为了制备与构成人CXCL1的氨基酸序列中的序列号1～3中的 任一个氨基酸部分序列区特异性结合的抗人CXCL1单克隆抗体，存 在下述方法：以人CXCL1的全长作为免疫原制备单克隆抗体，之后， 筛选与序列号1～3中的任一个氨基酸部分序列区特异性结合的抗体 的方法；事先以序列号1、2或3表示的人CXCL1的部分序列作为 免疫原，制备单克隆抗体的方法。

A1.人CXCL1的制备

首先，制备用作免疫原(抗原)的人CXCL1。人CXCL1可以 为天然型、重组型、或肽合成等化学合成氨基酸序列的全部或一部 分得到的人CXCL1中的任一种。

天然型人CXCL1可以从血液或尿等人体液为代表的人样品、或 人培养细胞的培养上清中，使用凝胶色谱法、离子交换色谱法、亲 和色谱法等公知的蛋白质分离·纯化技术进行回收。

重组型人CXCL1可以在导入编码该蛋白质的DNA的微生物、 昆虫细胞、或动物细胞中使DNA表达后，使用公知的蛋白质分离·纯 化技术从该细胞中进行回收。

合成人CXCL1例如可以利用公开的人CXCL1氨基酸序列信息， 通过本技术领域公知的手法例如固相肽合成法等进行合成。需要说 明的是，人CXCL1的cDNA序列在GenBank中以登记号X12510公 开。使上述合成人CXCL1与KLH(匙孔血蓝蛋白)、OVA(卵清 蛋白)、BSA(牛血清白蛋白)等载体蛋白质连接进行使用。

另外，最初以序列号1～3表示的人CXCL1的部分序列作为免 疫原时，免疫原与免疫全长序列时同样地，也可以为天然型、重组 型、或化学合成的免疫原。

例如，使用天然型人CXCL1的部分序列作为免疫原时，首先， 将经纯化的人CXCL1用胰蛋白酶等适当的蛋白酶进行处理后，用反 相柱分离得到峰产物。分离得到的各峰中含有的肽的氨基酸序列通 过质谱仪进行确定，可以使用序列号1、2或3表示的部分序列或其 一部分的峰产物作为免疫原。

另外，使用重组型人CXCL1的氨基酸部分序列作为免疫原时， 将编码上述人CXCL1的DNA序列中的序列号1～3表示的氨基酸部 分序列、或进而编码上述人CXCL1的一部分的DNA序列部分，与 制备全长人CXCL1时同样地插入表达用载体中，导入各种细胞中， 由此可以得到序列号1～3表示的氨基酸部分序列或其一部分的重组 型人CXCL1。

以下，针对序列号1～3表示的重组型人CXCL1的氨基酸部分 序列(以下称作人CXCL1部分序列)的制备进行详细说明。

(a)编码重组型人CXCL1部分序列的多核苷酸的制备

关于所述多核苷酸的制备方法，在下述实施例1中详细说明， 故在此处省略。

作为人CXCL1部分序列的表达中使用的载体，可以使用宿主微 生物中能够自主增殖的噬菌体或质粒。例如，作为质粒，可以举出 来自大肠杆菌的质粒(pET16b、pGEX6p、pUC118、pUC119、pUC18、 pUC19等)、来自枯草菌的质粒(pUB110、pTP5等)、来自酵母 的质粒(YEp13、YEp24、YCp50等)等。另外，作为噬菌体，可以 举出λ噬菌体(λgt11、λZAP等)。进而，也可以使用疫苗病毒等动 物病毒、杆状病毒等昆虫病毒载体。

向上述载体中插入编码人CXCL1部分序列的多核苷酸时，有下 述方法：例如，用适当的限制酶切断经纯化的该多核苷酸，使用DNA 连接酶将其连接到用适当的限制酶切断的载体内部。

(b)人CXCL1部分序列表达载体向宿主内的导入

将得到的人CXCL1部分序列表达载体导入能够表达人CXCL1 蛋白质的宿主中，可以得到人CXCL1部分序列表达转化体。使用的 宿主是与所使载体相适合的宿主，只要是能够表达人CXCL1的宿主 即可，没有特别限定。例如，优选使用细菌(大肠杆菌(Escherichia  coli)、枯草菌(例如Bacillus subtilis等)、酵母、昆虫细胞、动物 细胞(COS细胞、CHO细胞(Journal of immunology，1998，Vol.160， 3393-3402)等。向细菌中导入上述载体的方法，只要是向细菌中 导入该载体的公知的方法即可，没有特别限定。例如，可以举出热 休克法、使用钙离子的方法、电穿孔法等。上述技术均在本领域公 知，且记载于各种文献中。例如请参见Sambrook，J.et at.1989， Molecular Cloning：A Laboratory Manual Second Ed.，Cold Spring  Harbor Laboratory Press，Cold Spring Harbor，NewYork。另外，动物细 胞的转化中，优选使用脂质转染法(PNAS，1989，Vol.86，6077)、 (PNAS，1987，Vol.84，7413)、电穿孔法、磷酸钙法(Virology，1973， Vol.52，456-467)、DEAE-Dextran法等。

以细菌作为宿主时，优选人CXCL1部分序列表达载体在该细菌 中能够自主复制，同时由启动子序列、核糖体结合序列、编码人 CXCL1部分序列的DNA序列及转录终止序列构成。另外，也可以 含有编码控制启动子的调节因子的基因。启动子只要能够在大肠杆 菌等宿主中发挥作用即可，可以使用任何启动子。

以酵母、动物细胞、昆虫细胞等真核细胞作为宿主时，同样地 按照本领域公知的方法，也可以得到人CXCL1部分序列表达转化 体。在真核细胞中使用的人CXCL1部分序列表达载体中，除启动子 序列、编码人CXCL1部分序列的DNA序列之外，根据期望也可以 连接增强子等顺式作用元件、剪接信号(供体部位、接受位点、分 支点等)、加polyA信号(polyA addition signal)、选择标记物序列、 核糖体结合序列(SD序列)等。

(c)转化体的培养及重组型人CXCL1部分序列的表达

接着，培养上述制备的转化体。在培养基中培养转化体的方法 按照宿主的培养中使用的通常方法进行。例如，以微生物作为宿主 时，培养基没有特别限定，只要含有微生物可同化的碳源、氮源、 无机盐类等、且能够生长、增殖即可。可以使用天然培养基、合成 培养基中的任一种。作为更具体的例子，可以举出LB培养基，当然 并不限定于此。另外，为了选择性地进行转化体的培养，根据需要， 可以向培养基中添加氨苄青霉素或四环素等抗生素。培养通常在通 气搅拌培养等需气的条件下、在37℃下进行6～24小时。培养期间 中，pH优选保持在中性附近。pH的调节使用无机或有机酸、碱性 溶液等进行。转化体为CHO细胞等动物细胞时，可以将宿主细胞以 1×10⁵细胞/mL接种在Gibco公司制DMEM培养基中，在37℃的5 ％CO₂培养箱中培养。培养中根据需要，可以向培养基中添加氨苄青 霉素或四环素等抗生素。

上述人CXCL1部分序列表达载体为含有蛋白质表达控制系统 (例如宿主为微生物时，相当于阻遏基因及操纵基因等)的蛋白质 表达诱导型载体时，必需对上述转化体进行规定的处理，诱导人 CXCL1部分序列的表达。表达诱导的方法根据载体中所含的蛋白质 表达控制系统而不同，因此只要进行适应其系统的诱导处理即可。 例如，在以细菌作为宿主的蛋白质表达诱导型载体中，最常利用的 蛋白质表达控制系统是含有lac阻遏基因及lac操纵基因的系统。该 系统可以通过IPTG(isopropyl-1-thio-β-D-Galactoside)处理 来诱导表达。在具有含有上述系统的人CXCL1表达载体的转化体 中，为了使作为目标的人CXCL1表达，可以向培养基中添加适当量 (例如终浓度1mM)的IPTG。

(d)重组型人CXCL1部分序列的提取及/或回收

培养后，人CXCL1部分序列在菌体内或细胞内产生时，通过回 收菌体或细胞进行破碎，可以提取蛋白质。另外，人CXCL1部分序 列在菌体外或细胞外产生时，可以直接使用培养液，或可以通过离 心分离等除去菌体或细胞、使用上清。之后，通过单独或适当组合 使用例如硫酸铵沉淀、凝胶色谱法、离子交换色谱法、亲和色谱法 等一般的蛋白质的纯化方法，可以从上述培养物中分离纯化人 CXCL1。可以通过SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳等确认是否得到人 CXCL1部分序列。

A2.抗人CXCL1部分序列抗体的产生细胞的制备

将A1中得到的免疫原溶解在缓冲液中，制备免疫原溶液。此时， 为了有效地进行免疫，如果需要可以添加佐剂。作为佐剂的例子， 可以举出市售的完全弗氏佐剂(FCA)、不完全弗氏佐剂(FIA)等， 上述佐剂可以单独使用或混合使用。

接着，对哺乳动物、例如大鼠、小鼠(例如近交系小鼠的BALB /c)、兔子等给与上述制备的免疫原溶液，进行免疫。作为免疫原 的给与方法，例如可以举出使用FIA或FCA的皮下注射、使用FIA 的腹腔内注射、或使用0.15mol/L氯化钠的静脉注射，但不限定于 此。免疫原的1次给与量，根据免疫动物的种类、给与途径等适当 确定，每只动物约为30～200μg。另外，免疫的间隔没有特别限定， 初次免疫后，以数日至数周的间隔进行追加免疫，优选在1～4周的 间隔内进行2～6次、优选进行3～4次追加免疫。从初次免疫后， 通过ELISA(酶联免疫吸附测定(Enzyme-Linked Immuno Sorbent  Assay))法等测定免疫动物的血清中的抗体价，当抗体价达到平台 期时，向静脉内或腹腔内注射免疫原，作为最终免疫。从最终免疫 日开始2～5天后、优选在3天后，收集抗体产生细胞。

B.产生抗人CXCL1部分序列单克隆抗体的杂交瘤制备方法

B1.从免疫动物回收抗体产生细胞及细胞融合

通过将从免疫动物得到的抗体产生细胞与骨髓瘤细胞进行细胞 融合，可以制备产生特异性识别抗人CXCL1部分序列的单克隆抗体 的杂交瘤。作为抗体产生细胞，可以举出脾细胞、淋巴结细胞、末 梢血细胞等，但优选脾细胞或局部淋巴结细胞。作为与抗体产生细 胞融合的骨髓瘤细胞，可以使用通常可购买的来自小鼠等的细胞系。 作为使用的细胞株，优选具有下述性质：具有药剂选择性，在未融 合的状态下不能在HAT选择培养基(含有次黄嘌呤、氨基蝶呤、胸 腺嘧啶脱氧核苷)中生存，只能在与抗体产生细胞融合的状态下生 长。另外，细胞系优选来自于免疫动物同种系的动物。作为骨髓瘤 细胞的具体例子，可以举出来自BALB/c小鼠的次黄嘌呤·鸟嘌呤·磷 酸核糖·转移酶(HGPRT)缺陷细胞株的、P3×62-Ag.8株 (ATCCTIB9)、P3×63-Ag.8.U1株(JCRB9085)、P3/NSI/1- Ag4-1株(JCRB0009)、P3×63Ag8.653株(JCRB0028)或Sp2/0 -Ag14株(JCRB0029)等。

为了使上述骨髓瘤细胞与抗体产生细胞细胞融合，在不含血清 的DMEM、RPMI 1640培养基等动物细胞培养用培养基中，以约1∶ 1～20∶1的比例混合抗体产生细胞与骨髓瘤细胞，在细胞融合促进 剂的存在下进行融合反应。作为细胞融合促进剂，可以以约10～80 ％的浓度使用平均分子量为1,500～4,000Da的聚乙二醇等。另外， 根据情况，为了提高融合效率，可以联用二甲基亚砜等助剂。进而， 也可以使用利用电刺激(例如电穿孔)的市售细胞融合装置使抗体 产生细胞与骨髓瘤细胞融合(Nature，1977，Vol.266，550-552)。

B2.目标杂交瘤的选择

作为从细胞融合处理后的细胞中选择目标杂交瘤、即产生抗人 CXCL1部分序列单克隆抗体的杂交瘤的方法，例如，在含有胎牛血 清的RPMI1640培养基等中将细胞悬浮液适当稀释后，以约2×10⁶个/孔的程度接种在96孔微量滴定板上，各孔中加入选择培养基， 之后适当地交换选择培养基进行培养。培养温度为20～40℃，优选 约为37℃。骨髓瘤细胞为HGPRT缺陷株或胸腺嘧啶胸苷激酶(TK) 缺陷株时，通过使用含有次黄嘌呤·氨基蝶呤·胸腺嘧啶脱氧核苷的选 择培养基(HAT培养基)，可以仅选择性地使抗体产生细胞和骨髓 瘤细胞的杂交瘤生长、增殖，因此，可以选择在选择培养基中培养 开始后约10日开始生长的细胞作为杂交瘤。

对于在HAT培养基中选择的杂交瘤，首先，以针对天然型或重 组型人CXCL1、或序列号1～3表示的氨基酸序列的结合活性作为 指标进行筛选。接着，针对产生与人CXCL1具有结合活性的抗体的 杂交瘤，进行交叉性的试验。即，验证与其他CXC家族等的结合活 性，选择可允许的杂交瘤。所谓“可允许的交叉性”是指在目标抗体 的用途中，可忽视程度的交叉性。例如，是用于免疫学测定的单克 隆抗体时，如果在最终测定体系中由交叉反应产生的信号强度被控 制在小于背景水平中因特异性反应产生的信号强度的1％，则可以认 为事实上没有交叉反应。

为了确认与人CXCL1的反应性、或与其他CXC家族的交叉反 应性，例如可以利用ELISA法。ELISA法中，准备微孔板，在该微 孔板中将作为抗原的人CXCL1或其片段固相化，之后向该微孔板中 加入样品使其反应，该样品是适当稀释上述杂交瘤的培养上清而得 到的。充分反应后，清洗孔，加入针对免疫球蛋白的2次抗体的标 记体，进一步使其反应。再次清洗孔，最终利用与孔结合的2次抗 体的标记进行测定时，可以定量地知晓培养上清中存在的抗体对抗 原的结合活性。

B3.使用杂交瘤产生抗体

本发明中的杂交瘤可以通过使用小鼠进行腹水化，而用于抗体 生产。具体而言，向制备杂交瘤时使用的融合伴侣所用的细胞的来 源的小鼠、或裸鼠的腹腔内接种杂交瘤，适当收集腹水，由此可以 回收含有抗体的腹水液。更具体而言，将以Sp/0细胞作为融合伴 侣的杂交瘤接种在姥鲛烷接种后经过10天的BALB/c小鼠的腹腔 中，由此可以回收含有抗体的腹水液。

另外，本发明的杂交瘤通过使用适合的培养基进行培养，可以 用于抗体生产。具体而言，向Gibco公司制的杂交瘤SFM培养基中 以1×10⁵细胞/mL接种杂交瘤，在37℃的5％CO₂培养箱中培养至 杂交瘤死亡，由此可以得到含有抗体的培养液上清，但并不限定于 此。

3.重组抗人CXCL1部分序列单克隆抗体的制备方法

本发明的抗体或其片段也可以如下得到：利用编码单克隆抗体 的氨基酸序列的cDNA序列，通过重组DNA操作得到，所述单克隆 抗体特异性识别本发明中公开的人CXCL1部分序列。

例如，使用编码氨基酸序列的DNA序列，所述氨基酸序列编码 来自用B2.方法取得的抗人CXCL1部分序列单克隆抗体产生杂交瘤 的该抗体的可变区，V_H及V_L的碱基序列分别与编码任意的C_L及C_H的碱基序列连接，将各个多核苷酸参入适当的表达载体中，导入宿 主细胞后，也可以使其表达为完全的免疫球蛋白分子。另外，使用 CDR移植抗体技术，编码用B2.方法取得的可变区内的CDR的氨基 酸序列的多核苷酸与编码任意的免疫球蛋白的各FR的多核苷酸连 接，参入适当的表达载体，导入宿主细胞后，也可以表达为完全的 免疫球蛋白分子。各多核苷酸可以化学合成，也可以采用作为长链 DNA的合成法已知的藤本等的方法(藤本英也，合成基因的制备法， 植物细胞工程系列7，植物PCR实验说明书，1997，秀润社，p95 -100)合成。另外，本发明中公开的CDR原本来自小鼠的免疫球 蛋白，因此，连接的C_L、C_H及FR区的序列优选来自小鼠，但也可 以来自人等其他任意动物。此时，重链与轻链在同一宿主细胞内表 达，以由重链/轻链构成的二聚体形式生成，十分便利。具体而言， 例如利用轻链表达载体及重链表达载体共转化细胞，从所述转化细 胞也可以得到本发明的抗体。或者，也可以将编码上述氨基酸序列 的多核苷酸直接参入适当的表达载体中，导入宿主细胞后，以免疫 球蛋白分子的片段的形式进行表达。或者，如上所述，利用适当的 连接体连接分别编码含有上述氨基酸序列的V_L及V_H、或轻链及重 链的多核苷酸，参入噬菌体，形成单链Fv，也可以以该单链Fv或 双抗体等的合成抗体片段的形式进行表达。另外，通过利用近年来 开发的基因工程技术使重组抗体在噬菌体表面表达的噬菌体展示抗 体技术(Brinkmann et al，1995，J Immunol Methods，182，41-50，国际 公开WO97/13844号，国际公开WO90-02809号)，人工地改组 编码重链、轻链的基因，多样化的单链Fv抗体以噬菌体融合蛋白的 形式表达，由此也可以得到特异抗体。

编码重组抗人CXCL1部分序列单克隆抗体或其片段的多核苷酸 的制备，参入该多核苷酸的载体、该载体的宿主导入法，可以使用 上述“A.人CXCL1抗体制备方法”中记载的本领域中公知的重组 DNA技术。目标重组抗人CXCL1抗体或其片段可以从转化细胞的 培养液中或该细胞内得到。

作为免疫球蛋白表达载体，例如可以使用质粒、噬菌粒、黏粒、 病毒载体(例如SV40病毒表达载体、EB病毒表达载体、BPV表达 载体)等，但不限定于此。例如，作为BPV表达载体之一的BCMGS Neo载体，是通过转化为COS7细胞等有效表达外来基因的优选载体 (鸟山一“牛乳头瘤病毒载体”、村松正实及冈山博人编，实验医学 分册：基因工程手册，1991，羊土公司(日本)，297-299)。

除编码抗体或其片段的多核苷酸之外，上述载体还可以含有表 达上述抗体或其片段所需要的调控元件(例如启动子、增强子、终 止子、聚腺苷酸化位点、剪接位点)、或根据需要还可以含有选择 标记物。

作为转化的宿主，除上述“A.抗人CXCL1单克隆抗体制备方法” 中记载的宿主之外，还可以优选使用Sp2/0(小鼠骨髓瘤)细胞 (European Journal of Cancer Resarch Preview(1996)Vol.5，512-519； Cancer Resarch(1990)Vol.50，1495-1502)。

本发明中，含有表达抗体或其片段的载体的宿主细胞通过按照 通常方法进行培养，可以使其培养液上清或宿主细胞内产生抗体。 具体而言，以CHO细胞作为宿主时，将宿主细胞以1×10⁵细胞/mL 接种在Gibco公司制DMEM培养基中，在37℃的5％CO₂培养箱中 培养，由此可以得到含有抗体的培养液上清。另外，例如宿主细胞 为大肠杆菌时，通过接种在LB培养基等大肠杆菌培养中使用的一般 的培养基中进行培养，诱导蛋白质的表达，可以使培养液上清或宿 主细胞内产生抗体。

需要说明的是，作为表达产物的抗体或其片段含有恒定区时， 使用蛋白A柱、蛋白G柱、抗免疫球蛋白抗体亲和柱等，可以从培 养液上清、细胞破碎液中纯化·回收。另一方面，以只由可变区构成、 不含有恒定区的状态表达时，上述纯化方法不适用，因此应用其他 适当的纯化方法。例如，以在C末端融合有组氨酸标签等有利于纯 化的标签序列的结构进行表达时，可以通过利用对应配体的亲和色 谱法进行纯化。不是标签融合蛋白质时，可以按照硫酸铵沉淀、离 子交换色谱法、反相色谱法、凝胶过滤色谱法、羟磷灰石色谱法等 蛋白质纯化的通常方法进行纯化。

4.得到的抗人CXCL1单克隆抗体识别的人CXCL1上的表位的 确认

得到的抗人CXCL1单克隆抗体识别的人CXCL1上的表位，通 过如下所述的方法进行确认。

首先，使还原烷基化的人CXCL1与抗人CXCL1单克隆抗体反 应，形成抗原抗体复合体后，使用胰蛋白酶等适当的蛋白酶进行分 解处理。即使经过分解处理，抗体也难以被胰蛋白酶消化，因此， 可以使用ProteinG琼脂糖等回收抗原抗体复合体。此时，抗原通过 蛋白酶处理，除与抗体结合被保护的部分之外，其余部分被消化， 因此，回收的抗原抗体复合体通过使用LC-MS进行分析，可以鉴 定与抗体结合被保护的部分、即抗体识别的人CXCL1上的表位。

另外，抗人CXCL1单克隆抗体识别的人CXCL1上的表位，例 如也可以通过使用合成肽的竞争法进行确认。首先，通过构成人 CXCL1的氨基酸序列中的每4～8氨基酸的固相合成法等制备合成 肽。在利用上述ELISA法确认针对人CXCL1的结合性的实验中， 在使抗人CXCL1单克隆抗体与固相人CXCL1反应时，使所述合成 肽作用，如果确认抑制了抗人CXCL1单克隆抗体的结合，则可以判 断该合成肽的氨基酸序列为抗人CXCL1单克隆抗体识别的表位。

5.人CXCL1检测方法

本发明中，通过使用如上所述得到的单克隆抗体或其片段，可 以获得人CXCL1的免疫学测定方法。本发明的测定方法针对人 CXCL1的特异性优异，可以提供人CXCL1理想的免疫学测定方法。

本发明的测定方法中使用的所谓“样品”，是指含有人CXCL1的 各种样品。例如，为含有编码人CXCL1的DNA或其片段的培养细 胞、培养细胞破碎液、培养液上清或人样品。所谓人样品是从人体 内收集的组织(例如术后收集的组织)、血液、血清、血浆、尿、 脊髓液、唾液、淋巴液、泪液、精液等体液等所有来自人的生物样 品，优选为血液、血清、血浆或尿。另外，本发明中的样品不仅可 以为液体样品，也可以为固体样品。例如，可以使用组织切片样本 等。对组织切片样本进行本发明的人CXCL1测定方法时，可以在原 位观察人CXCL1的有无或局部存在，因此很方便。

本发明的特征在于，组合2种以上的上述抗人CXCL1部分序列 单克隆抗体或其片段，该2种以上的抗人CXCL1部分序列单克隆抗 体或其片段特异性识别构成人CXCL1的氨基酸序列的部分序列即 序列号1～3表示的氨基酸序列中的任一序列区、且特异性识别各个 不同的序列区，优选组合2种上述抗人CXCL1部分序列单克隆抗体 或其片段，较优选以含有特异性识别序列号3表示的氨基酸序列区 的抗人CXCL1单克隆抗体的组合进行使用。通过组合分别识别人 CXCL1不同的氨基酸序列区的抗人CXCL1部分序列单克隆抗体或 其片段，有助于提高人CXCL1的检测灵敏度。

本发明的免疫学的测定可以通过使用ELISA法、EIA法、荧光 免疫测定法、放射免疫测定法或放射免疫测定法等标记抗体的公知 的免疫学的测定法、或表面等离子体共振法(SPR法)、石英晶体 微天平测定法(QCM法)实施，优选适于使用标记抗体的免疫学的 测定法。

ELISA法也称作酶联免疫吸附分析法，是使用酶标记的抗体或 抗原、利用所述酶的作用，在抗原抗体反应中以显色浓度或荧光强 度的形式检测样品中含有的微量的靶抗原，定量靶抗原的方法。即， 将本发明的抗体或其片段、或者人CXCL1或其片段固定在固相载体 中，酶检测与该抗体等及人CXCL1等的免疫学反应的方法。有直接 法、间接法、夹心法等方法，本发明应用于夹心法。关于ELISA法 的测定方法，请参照公知的方法(日本临床病理学会编“临床病理临 时增刊特集第53号用于临床检查的免疫测定技术及应用-”，临床 病理刊行会，1983年；石川荣治等编“酶免疫测定法”，第3版，医 学书院，1987年；北川常广等编“蛋白质核酸酶分册No.31酶免疫测 定法”，共立出版，1987年，入江宝编“放射免疫测定法”，讲谈社 Scientific，1974年；入江宝编“放射免疫测定法续”，讲谈社Scientific， 1979年)。作为上述固相载体，可以使用聚苯乙烯、聚碳酸酯、聚 甲苯、聚丙烯、聚乙烯、聚氯乙烯、尼龙、聚甲基丙烯酸酯、乳胶、 明胶、琼脂糖、纤维素、琼脂糖、玻璃、金属、陶瓷或磁性体等材 料形成的微珠、微孔板、试管、棒或试验片等形状的不溶性载体。 本发明的抗体或其片段、或者人CXCL1或其片段在固相载体上的固 定，可以通过按照物理吸附法、化学结合法或上述方法的联用等公 知的方法使其结合而达成。

作为上述标记物质，例如在ELISA法的情况，可以使用过氧化 物酶(POD)、碱性磷酸酶、β-半乳糖苷酶、脲酶、过氧化氢酶、 葡糖氧化酶、乳酸脱氢酶、淀粉酶或生物素-抗生物素复合体等； 在荧光免疫测定法的情况，可以使用异硫氰酸荧光素、四甲基罗丹 明异硫氰酸酯、取代罗丹明异硫氰酸酯、二氯三嗪异硫氰酸酯 (dichlorotriazine isothiocyanate)、Alexa480或AlexaFluor488等；在 放射免疫测定法的情况，可以使用氚、碘125或碘131等，但并不 限定于此。

另外，发光免疫测定法可以使用NADH-FMNH2-荧光素酶系 统、氨基苯二酰肼-过氧化氢-POD系统、吖啶酯(acridinium ester) 系统或二氧杂环丁烷化合物系统等。标记抗原与抗体的结合法，在 ELISA法的情况，可以使用戊二醛法、马来酰亚胺法、吡啶二硫醚 (pyridyl disulfide)法或高碘酸法等公知的方法，在放射免疫测定法 的情况，可以使用氯胺T法、Bolton-Hunter法等公知的方法。

进而，本发明的免疫学测定方法，也可以如下进行：对由免疫 比浊法、乳胶凝集反应、乳胶比浊法、红细胞凝集反应或粒子凝集 反应等的免疫复合体凝集物的生成，可以通过光学方法或目视测定 其透射光或散射光。这种情况下，作为溶剂，可以使用磷酸缓冲液、 甘氨酸缓冲液、Tris缓冲液或Good’s缓冲液等，进而，也可含有聚 乙二醇等反应促进剂或非特异性反应抑制剂。

本发明的免疫学测定方法中，优选从3种上述抗人CXCL1部分 序列单克隆抗体或其片段中选择2种使用。关于具体的方法，作为 例子，举出了使用特异性识别序列号1表示的氨基酸序列区的单克 隆抗体、和特异性识别序列号3表示的氨基酸序列区的单克隆抗体 的情况，但本发明的实施方式并不限定于此。

例如，应用于ELISA法的夹心法时，首先，将特异性识别序列 号1表示的氨基酸序列区的单克隆抗体固相化在不溶性的载体上。 固相化的抗体为特异性识别序列号1表示的氨基酸序列区的抗体时， 可以为1种，也可以为多种。接着，在抗体的固相化表面上，使含 有人CXCL1的样品作用，在载体的表面形成固相化抗体与人CXCL1 的复合体。之后，通过使用洗涤液充分清洗，除去样品中存在的除 人CXCL1之外的未结合物质。进而，制备特异性识别序列号3表示 的氨基酸序列区的单克隆抗体的标记体，使该标记抗体与结合有固 相化抗体与人CXCL1的复合体的载体发生作用，使用洗涤液充分清 洗后，利用标记进行检测，由此可以检测样品中存在的人CXCL1。 此时，标记抗体为特异性识别序列号3表示的氨基酸序列区的单克 隆抗体时，可以为1种，也可以为多种，但优选使用2种以上，较 优选使用2种。另外，特异性识别序列号1表示的氨基酸序列区的 单克隆抗体与特异性识别序列号3表示的氨基酸序列区的单克隆抗 体的来源动物种类不同时，即使不对特异性识别序列号3表示的氨 基酸序列区的单克隆抗体进行标记，使用识别特异性识别序列号3 表示的氨基酸序列区的抗体的标记二次抗体，也可以检测。

使用特异性识别序列号2表示的氨基酸序列区的单克隆抗体时， 与上述相同。另外，固相化中使用的抗体与标记中使用的抗体，也 可以分别相反地用于标记和固相化。

另外，预先将标记抗体与含有人CXCL1的样品混合，形成抗原 抗体复合体后，也可以在固相化抗体上作用。对固相化的抗体进行 生物素标记时，将生物素化固相化抗体、含有人CXCL1的样品、实 施除生物素之外的标记的抗体全部混合，形成抗原抗体复合体后， 通过与将抗生物素固相化的载体作用，利用除生物素化之外的标记 可以检测抗原抗体复合体。

进而，本发明的免疫学测定方法，也可以使用免疫色谱法用试 验条带。所谓免疫色谱法用试验条带，例如包括：由易于吸收样品 的材料形成的样品接受部、含有标记的本发明的诊断剂的试剂部、 样品与诊断剂的反应物移动的展开部、捕捉展开的反应物进行显色 的显示部等。市售的妊娠诊断剂等具有与上述相同的形态。本测定 方法的原理如下所述。首先，将样品供给样品接受部，样品接受部 吸收样品，使样品到达试剂部。接着，试剂部中，样品中的人CXCL1 与标记的上述抗人CXCL1部分序列单克隆抗体或其片段发生抗原 抗体反应，形成的反应复合体在展开部中移动，到达显示部。在显 示部中，上述反应复合体和另一种抗人CXCL1部分序列单克隆抗体 发生反应，所述另一种抗人CXCL1部分序列单克隆抗体与标记的单 克隆抗体不同且识别CXCL1部分序列，之后所得的反应复合体被捕 捉，可以呈现出由反应复合体的标记产生的显色。上述免疫色谱法 用试验条带，侵袭性极低，不会对使用者造成痛苦或因使用试剂产 生危险，因此，可以用于家庭监测，基于其结果能够以各医疗机构 的水平进行细查·治疗(外科的切除等)，可以用于预防转移·复发。 另外，目前对于上述试验条带，例如通过如日本特开平10-54830 号公报中记载的制造方法可以低成本大量生产。

举例说明使用特异性识别序列号1表示的氨基酸序列区的单克 隆抗体、及特异性识别序列号3表示的氨基酸序列区的单克隆抗体 的情况时，首先，将含有人CXCL1的样品给予样品接受部，样品接 受部吸收该样品使该样品达到试剂部。接着，在试剂部中，样品中 的来自尿路上皮癌细胞的人CXCL1与特异性识别标记的本发明的 序列号1表示的氨基酸序列区的单克隆抗体发生反应，反应的复合 体在展开部移动，到达显示部。在显示部中，上述反应复合体与特 异性识别序列号3表示的氨基酸序列区的单克隆抗体发生反应，从 而见到显色。

另外，本发明的测定方法也可以使用表面等离子体共振法(SPR 法)。所谓表面等离子体共振现象，是指以特定的入射角度(共振 角)向金属薄膜照射激光时反射光强度显著衰减的现象。利用SPR 现象原理的SPR传感器，可以以高灵敏度测定金属薄膜表面上的吸 附物。因此，在该金属薄膜表面上事先将抗体及/或靶抗原固相化， 通过使样品在该金属薄膜表面上通过，可以检测抗原抗体反应的结 果产生的样品通过前后的金属表面上的吸附物的差。已知取代法、 间接竞争法等，可以使用任一种。本技术在本领域公知。例如，请 参照永田和弘、半田宏，生物物质相互作用的实时分析实验法， Springer·Verlag东京，东京，2000。

进而，本发明的测定方法也可以使用石英晶体微天平测定法 (QCM法)。所述方法利用下述现象：物质吸附在安装在石英振荡 器上的电极表面时，根据其质量石英振荡器的共振频率减少。使用 该方法的QCM传感器，是根据水共振频率的变化量，定量地捕捉极 微量的吸附物的质量测定传感器。本技术在本领域公知。例如，参 见J.Christopher Love，L.A.Estroff，J.K.Kriebel，R.G.Nuzzo，G.M. Whitesides，2005，Self-Assembled，Monolayers of a Form of  Nanotechnology，Chemical Review，105：1103-1169；森泉丰荣、中本 高道，1997，传感器工程，昭晃堂，等。

6.人CXCL1检测试剂盒

另外，本发明可以作为用于实施上述免疫学的测定方法的试剂 盒使用。即，以本发明的抗体或其片段为代表，可以将该抗体或该 片段、标记二次抗体、以及标记的检测需要的基质、阳性对照或阴 性对照、或样品的稀释和清洗中使用的缓冲液等组合，制成试剂盒。

实施例

以下，利用实施例具体地说明本发明，但本发明并不限定于所 述实施例。

(实施例1)使用大肠杆菌制备重组型人CXCL1

(人CXCL1基因的制备)

为了制备用作抗体的免疫原的重组型人CXCL1，首先，使用 HEK293细胞制备人CXCL1mRNA。mRNA的制备使用Qiashredder 及RNeasy mini kit(Qiagen公司制)，按照附带的操作说明进行详 细操作。

然后，使用逆转录酶SuperscriptII(invitrogen公司制)，以得 到的总mRNA为模板合成cDNA，制备人cDNA文库。逆转录反应 按照上述酶附带的操作说明进行操作。

接着，以得到的人cDNA文库为模板，使用由序列号44及45 表示的碱基序列构成的引物集进行PCR。序列号44表示的碱基序列 含有人CXCL1基因的5’末端区的一部分及在其上游的NdeI识别序 列。序列号45表示的碱基序列含有人CXCL1基因的3’末端区的一 部分和在其下游的BamHI识别序列。使用KOD(东洋纺公司制)作 为DNA聚合酶，按照KOD附带的操作说明制备PCR的反应液，使 其含有10ng cDNA文库及10pmol各引物。反应条件为在94℃的温 度下加热10分钟后，在94℃下保持30秒、在55℃下保持30秒、 在72℃下保持1分钟，将上述循环重复30次后，最后在72℃下保 温4分钟。扩增的DNA片段使用Quantum prep PCR Kleen Spin  Columns(Bio-rad公司制)进行纯化。通过上述反应得到全长约 300bp的PCR产物。

为了将得到的DNA片段参入经过HincII切断及BAP处理的开 环pUC118(Takara Bio公司制)内，而进行连接反应。使用Ligation  High(东洋纺公司制)作为DNA连接酶，按照附带的操作说明进行 反应。接着，使用连接反应后的溶液，进行感受态细胞的转化。作 为感受态细胞，使用大肠杆菌株DH5α(Takara Bio公司制)，详细 操作按照附带的操作说明进行。将转化处理后的菌体涂布在含有 100μg/mL抗生素氨苄青霉素的LB平板上，在37℃下培养一夜。 所得的转化体在含有100μg/mL氨苄青霉素的LB液体培养基中于 37℃下培养一夜，通过小量制备(mini-prep)得到目标 pUC118_CXCL1。

然后，使用限制酶NdeI及BamHI切断pUC118_CXCL1，进行 反应溶液的琼脂糖电泳。电泳后，从凝胶切出通过紫外线照射确认 的约300bp的片段，进行DNA片段的提取。使用PCR GFX Column (GE Healthcare Bio-Sciences公司制)进行提取。为了将提取的 DNA片段参入经过NdeI/BamHI切断处理的表达载体pET16b (Novagen公司制)(约6kb片段)内，进行连接反应。接着，使用 连接反应后的溶液进行DH5α的转化、转化体的培养、及小量制备， 得到目标pET16b-CXCL1。各个步骤按照上述方法进行。

(重组型人CXCL1的制备)

为了制备重组型人CXCL1，使用pET16b-CXCL1进行大肠杆 菌株Rosetta-Gami 2(Novagen公司制)的转化。将得到的转化体 在30mL含有氨苄青霉素及氯霉素的LB培养基中、37℃下进行一夜 前培养。然后，将前培养的转化体接种在3L相同培养基中，在37℃ 下培养3小时，添加终浓度1mM的IPTG，在32℃下培养6小时， 诱导目标重组型人CXCL1的表达后，通过离心分离回收菌体。

将得到的菌体用PBS清洗后，使用B-PER(PIERCE公司制) 以沉淀的形成制备得到不溶性级分。具体操作按照附带的操作说明 进行。然后，使用包涵体溶解试剂(Inclusion body soIubilization  Reagent)(PIERCE公司制)将不溶性级分可溶化后，使用TALON 金属亲和性树脂(TALON Metal Affinity Resin)(CLONETECH公 司制)使组氨酸标签融合人CXCL1吸附。将蛋白质吸附的树脂用含 有10mM咪唑的PBS进行清洗后，使用1M咪唑溶液溶出。

接着，利用得到的溶出级分进行蛋白质的重折叠。首先，在加 入6M尿素的PBS溶液中透析一夜后，向透析液中分步地加入PBS 直至透析液中的尿素终浓度为1M，进行稀释。最后，在新配制的 PBS溶液中透析一夜，对得到的重折叠溶液进行聚丙烯酰胺凝胶电 泳，利用考马斯亮蓝染色确认分子量约10,000Da的组氨酸标签融合 人CXCL1的纯化。

(实施例2)针对人CXCL1的小鼠单克隆抗体的制备及选择

(抗人CXCL1抗体产生小鼠的制作)

将实施例1得到的100μL 0.3mg/mL人CXCL1溶液与100μL  MPL+TDM Emulsion(Corixa公司制)混合，将其全部腹腔给与7 周龄的BALB/c小鼠。在2周后及4周后，给与相同量的同样配制 的人CXCL1溶液。接着，从小鼠尾部静脉采集100μL血液，静置一 夜后，以5000×g离心5分钟，回收上清作为血浆。

向96孔聚苯乙烯平板(Greiner公司制)的孔中加入100μL的1μg /mL人CXCL1溶液，固相化一夜。弃去孔中的蛋白溶液后，注入 200μL稀释至4倍的BlockAce溶液(大日本住友制药公司制)，在 室温下静置1小时。之后，用PBS-T清洗，制成人CXCL1固相化 平板。将上述得到的血浆稀释100倍，向上述人CXCL1固相化平板 的孔中加入100μL，在室温下静置1小时。之后，弃去孔中的溶液， 用PBS-T清洗后，加入100μL HRP标记抗小鼠IgG溶液(Dako公 司制)，进而在室温下静置1小时。弃去孔中的溶液，用PBS-T 清洗后，加入100μL TMB溶液，使其反应15分钟。在450nm的吸 光度下确认由反应产生的显色，判断在显色的血液样品中产生了针 对人CXCL1的抗体。

(抗人CXCL1单克隆抗体的制备)

对于已经确认产生了针对人CXCL1的抗体的小鼠，腹腔给与与 上述同样配制的人CXCL1溶液，3天后摘出脾。用注射器在摘出的 脾上开个孔，注入RPMI1640培养基(GIBCO公司制)挤压脾细胞， 得到脾细胞液。得到的脾细胞液在1200rpm下离心7分钟后除去上 清，在RPMI1640培养基中清洗。再次混悬于RPMI1640培养基中， 计算细胞数，配制脾细胞数1/10量的SP2/0骨髓瘤细胞液。将两 细胞液混合，在2200rpm下离心10分钟，弃去上清。用穿刺术 (tapping)使细胞松散，添加将PEG(ROCHE公司制)和HBSS (GIBCO公司制)以5∶1的比例混合得到的溶液1mL，并搅拌。 以后的操作中，除非另作说明，使用的溶液或培养基均在37℃下保 温。

向加入了PEG和HBSS的细胞溶液中，经5分钟添加9mL RPMI1640培养基，慢慢混合后，在2200rpm下离心10分钟，除去 上清。将得到的沉淀细胞混悬在添加有15％FCS及HAT(ROCHE 公司制)的RPMI1640培养基中，以每孔200μL注入96孔细胞培 养平板(Greiner公司制)中，在37℃、5％CO₂的条件下下培养1 周。

将在添加HAT条件下生长的菌群判断为脾细胞与骨髓瘤细胞融 合的杂交瘤，将生长有菌群的孔中的上清稀释5倍，向上述人CXCL1 固相化平板的孔中添加100μL稀释液，用与上述同样的方法确认有 无抗体产生。以确认到抗体产生的孔作为阳性。将阳性孔的菌群混 悬在含有15％FCS和HT(invitrogen公司制)的RPMI培养基中， 利用有限稀释法进行阳性克隆的克隆。将克隆的结果得到的75种杂 交瘤在SFM培养基(GIBCO公司制)中驯化，产生抗体。在60mL  100％SFM培养基中以1×10⁵细胞/mL接种杂交瘤，培养10天直到 细胞死亡，之后将培养液在3000rpm下离心分离15分钟除去细胞。 所得的培养上清用Mab Trap Kit(GE HEALTHCARE BIOSCIENCE 公司制)纯化所含的抗体。

(抗人CXCL1单克隆抗体的筛选)

对于上述75种纯化抗体，用如下所述的方法筛选与人CXCL1 亲和性高的抗体。首先，将各纯化抗体分别制备10μg/mL溶液， 分别以每孔100μL加入96孔聚苯乙烯平板(Greiner公司制)的孔 中，固相化一夜。弃去孔内的纯化抗体溶液后，注入200μL稀释至 4倍的BlockAce溶液(大日本住友制药公司制)，在室温下静置1 小时。之后，弃去溶液，将经过用PBS-T清洗的平板作为纯化抗 体固相化平板。接着，将从1000pg/mL至15pg/mL阶段稀释重组 型人CXCL1的抗原溶液添加到上述纯化抗体固相化平板的各孔中， 每孔100μL，在室温下反应1小时。接着，弃去抗原溶液，用PBS -T清洗后，向孔中加入100μL的50μg/mL生物素标记抗人CXCL1 多克隆抗体(R&DSYSTEMS公司制)，在室温下反应1小时。弃 去孔内的溶液，用PBS-T清洗后，使100μL avidin-HRP溶液(R &DSYSTEMS公司制)在室温下反应30分钟。进而，弃去avidin -HRP溶液，用PBS-T清洗后，加入100μL TMB溶液使其反应15 分钟。通过添加100μL 2N硫酸溶液，使反应停止。通过在450nm处 测定吸光度确认显色。将显色反应强的孔中的纯化抗体判断为与人 CXCL1亲和性高的抗体。其结果，筛选出5种抗体：IgG1-1、IgG1 -3、IgG1-10、IgG1-14、IgG2b-1。

(使用杂交瘤确定单克隆抗体的轻链及重链cDNA序列和氨基 酸序列)

对于筛选出的5种抗体，确定其轻链及重链的cDNA序列和氨 基酸序列。首先，使用添加了15％FCS的RPMI 1640培养基，在37℃、 5％CO₂的条件下对产生各个抗体的杂交瘤进行培养至1×10⁶细胞/ mL。之后，培养液在1200rpm离心分离5分钟，回收细胞。用回收 的杂交瘤制备mRNA。制备中使用Qiashredder及RNeazy mini kit (Qiagen公司制)，按照附带的操作说明进行详细操作。接着，使 用逆转录酶SuperscriptII(invitrogen公司制)，以得到的Total mRNA 为模板、使用Oligo dT引物合成cDNA，制作cDNA文库。

然后，以各杂交瘤得到的cDNA文库为模板，使用Mouse Ig Primer(Novagen公司制)进行PCR，将扩增产物(小鼠免疫球蛋白 可变区cDNA)插入Invitrogen公司提供的ZERO BLUNT PCR TOPO Vector的EcoRI部位进行连接。连接使用Ligation High(东洋纺公 司制)，按照附带的操作说明进行。使用连接反应液进行感受态细 胞的转化。感受态细胞使用DH5α(Takara Bio公司制)，按照附带 的操作说明进行详细操作。将转化处理后的菌体涂布在含有100μg /mL的氨苄青霉素的LB平板上，在37℃下培养一夜。将来自各扩 增产物的转化体接种在含有100μg/mL氨苄青霉素的LB液体培养 基中，分别为4个克隆，在37℃下培养一夜。通过小量制备利用各 培养液制备载体DNA溶液，结果对于各扩增产物，得到4种参入编 码单克隆抗体的DNA的载体溶液。

对于得到的载体溶液，使用M13引物进行编码单克隆抗体的区 域DNA序列分析。分析使用3130×1遗传分析仪(Applied Biosystems 公司制)进行。将在插入区没有终止密码子的克隆判断为编码目标 单克隆抗体的DNA序列，确定上述5个抗体(IgG1-1、IgG1-3、 IgG1-10、IgG1-14、IgG2b-1)的轻链、重链的DNA序列。对于 经过确定的DNA序列，根据大肠杆菌的密码子使用频度，确定编码 的氨基酸序列，可以得到序列号4～43所示的序列。

作为编码IgG1-1的氨基酸序列，得到序列号36～43表示的氨 基酸序列。更详细而言，序列号36、37、38分别编码IgG1-1的轻 链CDR1、CDR2、CDR3。另外，序列号39、40、41分别编码相同 IgG1-1的重链CDR1、CDR2、CDR3。另外，序列号42、43分别 编码IgG1-1的轻链可变区全长、重链可变区全长。

作为编码IgG1-3的氨基酸序列，得到序列号28～35表示的氨 基酸序列。更详细而言，序列号28～33依次编码IgG1-3的轻链 CDR1～3、重链CDR1～3。另外，序列号34、35分别编码IgG1-3 的轻链可变区全长、重链可变区全长。

作为编码IgG1-10的氨基酸序列，得到序列号4～11表示的氨 基酸序列。更详细而言，序列号4～9依次编码IgG1-10的轻链 CDR1～3、重链CDR1～3。序列号10、11分别编码IgG1-10的轻 链可变区全长、重链可变区全长。

作为编码IgG1-14的氨基酸序列，得到序列号20～27表示的 氨基酸序列。更详细而言，序列号20～25依次编码IgG1-14的轻 链CDR1～3、重链CDR1～3。序列号26、27分别编码IgG1-14的 轻链可变区全长、重链可变区全长。

作为编码IgG2b-1的氨基酸序列，得到序列号12～19表示的 氨基酸序列。更详细而言，序列号12～17依次编码IgG2b-1的轻 链CDR1～3、重链CDR1～3。序列号18、19分别编码IgG2b-1的 轻链可变区全长、重链可变区全长。

(实施例3)筛选出的抗体识别的人CXCL1部分序列的分析

针对实施例2中筛选出的5个抗体，进行识别的人CXCL1氨基 酸序列上的表位分析。

首先，向100μL的1μg/μL人CXCL1溶液中添加DTT，使终 浓度为10mM，在95℃下反应5分钟，进行CXCL1内的二硫键的还 原，接着添加终浓度20mM的碘乙酰胺，在37℃、避光条件下进行 30分钟硫醇基的烷基化反应。向得到的12μg还原烷基化人CXCL 中分别添加20μg实施例2中筛选出的各个抗体，添加100mM Tris -HCl缓冲液(pH8.0)至100μL，一边搅拌混合一边在室温下反应 1小时。

接着，添加胰蛋白酶(Promega公司制)、氨肽酶M(ROCHE 公司制)、羧肽酶Y(ROCHE公司制)使终浓度分别为0.2μg、0.5μU、 0.02μg，在37℃下使其反应2小时以上，然后在事先用1％BSA- PBS封闭、用PBS清洗的ProteinA-玻璃微珠(GE HEALTHCARE BIO-SCIENCES公司制)和NP-40缓冲液(100mM Tris-HCl缓 冲液(pH8.0)5mM EDTA、150mM NaCl、1％NP-40)中混合，在 4℃下反应30分钟。

反应液用25mM碳酸铵缓冲液(pH8.0)清洗后，使用100μL的 0.1％甲酸溶出抗原抗体复合体，溶出液使用Q-TOF Premier(Waters -MicroMass公司制)进行LC-MS分析。按照机器附带的操作说 明进行分析。

其结果，判明了实施例2中得到的各抗体识别的人CXCL1部分 序列，示于表1。

(参考例1)市售抗体识别的人CXCL1部分序列的分析

对于在市售的人CXCL1检测试剂盒即Human CXCL1/GRO alpha DuoSet(R&DSYSTEMS公司制)中作为固相化用抗体添加的 单克隆抗体，与实施例3同样地对识别的人CXCL1氨基酸序列上的 表位进行分析。

其结果，明确了市售抗体识别的人CXCL1部分序列，示于表1。

[表1]

  抗体名   序列   序列号   IgG1-1(实施例3)   NGRKACLNPASPIVKKIIEKMLNSDKSN   3   IgG1-3(实施例3)   SPGPHCAQTEVIATLK   2   IgG1-10(实施例3)   NGRKACLNPASPIVKKIIEKMLNSDKSN   3   IgG1-14(实施例3)   NGRKACLNPASPIVKKIIEKMLNSDKSN   3   IgG2b-1(实施例3)   RCQCLQTLQGIHPKNIQSVNVK   1   市售抗体(参考例1)   SPGPHCAQTEVIATLK   2

(实施例4)使用单克隆抗体IgG2b-1及单克隆抗体IgG1-10 通过夹心ELISA法检测人CXCL1

使用由实施例3判明特异性识别序列号1表示的氨基酸序列区 的抗体IgG2b-1、及判明特异性识别序列号3表示的氨基酸序列区 的抗体IgG1-10的生物素标记体，通过夹心ELISA法进行人CXCL1 的测定。IgG1-10的生物素化使用Sulfo-NHS Biotin(PIERCE公 司制)进行，按照附带的操作说明进行详细操作。首先，配制IgG2b -1的10μg/mL的PBS溶液后，加入96孔聚苯乙烯平板(Greiner 公司制)的孔中，每孔100μL，固相化一夜。次日，弃去上述溶液， 注入200μL 1％BSA-PBS溶液(SIGMA公司制)，在室温下静置1 小时。之后，用PBS-T清洗，制成纯化抗体固相化平板。然后， 向各孔中分别添加100μL使用1％BSA-PBS将重组型人CXCL1 从500pg/mL至7.8pg/mL进行阶段稀释得到的抗原溶液，在室温 下反应1小时。然后，弃去孔内的抗原溶液，用PBS-T清洗后， 在室温下使经过1％BSA-PBS稀释的100μL 1μg/mL生物素标记 IgG1-10反应1小时。清洗后，使100μL avidin-HRP溶液(R& DSYSTEMS公司制)在室温下反应30分钟。Avidin-HRP的稀释也 使用1％BSA-PBS进行。用PBS-T清洗后，加入100μL TMB溶 液，使其反应15分钟后，添加100μL的2N硫酸溶液使反应停止， 测定450nm的吸光度。结果示于图1。

(实施例5)使用单克隆抗体IgG2b-1及单克隆抗体IgG1-14 通过夹心ELISA法检测人CXCL1

使用由实施例3判明特异性识别序列号1表示的氨基酸序列区 的单克隆抗体IgG2b-1、及判明特异性识别序列号3表示的氨基酸 序列区的单克隆抗体IgG1-14的生物素标记体，通过夹心ELISA 法测定人CXCL1。与实施例4同样地实施IgG1-14的生物素化及 夹心ELISA。结果示于图1。

(实施例6)使用单克隆抗体IgG1-3及单克隆抗体IgG1-14、 通过夹心ELISA法检测人CXCL1

使用由实施例3判明特异性识别序列号2表示的氨基酸序列区 的抗体IgG1-3、及判明特异性识别序列号3表示的氨基酸序列区的 抗体IgG1-14的生物素标记体，通过夹心ELISA法进行人CXCL1 的测定。与实施例4同样地实施IgG1-14的生物素化及夹心ELISA。 结果示于图1。

(比较例1)使用市售试剂盒通过夹心ELISA法检测人CXCL1

使用市售的人CXCL1检测试剂盒即Human CXCL1/GRO alpha  DuoSet(R&DSYSTEMS公司制)测定重组型人CXCL1。所述试剂 盒将抗人CXCL1小鼠单克隆抗体(识别序列号2表示的氨基酸序列) 固相化，检测使用生物素化标记山羊多克隆抗体。在Greiner公司制 的96孔聚苯乙烯平板上进行固相化，详细的实验操作按照附带的操 作说明进行。结果示于图1、图4及图5。

根据实施例4～6、比较例1判明：与现有方法的市售人CXCL1 检测试剂盒比较，采用本发明的免疫学的测定法能够检测7.8pg/mL 的人CXCL1，测定灵敏度提高。

(实施例7)使用单克隆抗体IgG2b-1、单克隆抗体IgG1-10 及IgG1-14的混合液通过夹心ELISA法检测人CXCL1

使用由实施例3判明特异性识别序列号1表示的氨基酸序列区 的抗体IgG2b-1、及判明特异性识别序列号3表示的氨基酸序列区 的抗体IgG1-10的生物素标记体、或将IgG-10和IgG1-14分别 进行生物素标记得到的生物素标记体的混合液，通过夹心ELISA法 测定人CXCL1。与实施例4同样地实施抗体的生物素化及夹心 ELISA。其结果示于图2。

通过使用2种特异性识别相同的序列号3表示的氨基酸序列区 的单克隆抗体作为标记抗体，与相同浓度的1种抗体相比，各浓度 的信号强度提高，判明与使用1种识别相同序列的标记抗体相比， 使用2种的标记抗体时人CXCL1的测定灵敏度提高。

(实施例8)使用单克隆抗体IgG2b-1、及单克隆抗体IgG1- 10或IgG1-14通过夹心ELISA法检测尿中添加的人CXCL1

使用由实施例3判明的特异性识别序列号1表示的氨基酸序列 区的抗体IgG2b-1、及判明特异性识别序列号3表示的氨基酸序列 区的抗体IgG1-10的生物素标记体、或使用IgG1-14的生物素标 记体，通过夹心ELISA法测定尿中添加的人CXCL1。使用Sulfo- NHS Biotin(PIERCE公司制)进行IgG1-10及IgG1-14的生物素 化，按照附带的操作说明进行详细操作。首先，配制IgG2b-1的10μg /mL的PBS溶液后，加入96孔聚苯乙烯平板(Greiner公司制)的 孔中，每孔100μL，固相化一夜。次日，弃去上述溶液，注入200μL 1％BSA-PBS溶液(SIGMA公司制)，在室温下静置1小时。之后， 用PBS-T清洗，制成纯化抗体固相化平板。然后，向当日采集的 人尿中加入重组型人CXCL1使其浓度为250pg/mL，将使用相同人 尿阶段性稀释至3.9pg/mL得到的抗原添加尿添加到各孔中，每孔 100μL，在室温下使其反应1小时。然后，弃去孔内的抗原溶液，用 PBS-T清洗后，使用1％BSA-PBS稀释使100μL所得的1μg/mL 生物素标记IgG1-10在室温下反应1小时。清洗后，使100μL avidin -HRP溶液(R&DSYSTEMS公司制)在室温下反应30分钟。Avidin -HRP也使用1％BSA-PBS进行稀释。用PBS-T清洗后，加入 100μL TMB溶液使其反应15分钟后，添加100μL 2N硫酸溶液使反 应停止，测定450nm的吸光度。结果示于图3。

(实施例9)使用单克隆抗体IgG1-3及单克隆抗体1gG1-14 通过夹心ELISA法检测尿中添加的人CXCL1

使用由实施例3判明特异性识别序列号2表示的氨基酸序列区 的抗体IgG1-3、及判明特异性识别序列号3表示的氨基酸序列区的 抗体IgG1-14的生物素标记体，通过夹心ELISA法测定尿中添加的 人CXCL1。与实施例8同样地实施抗体的生物素化及夹心ELISA。 结果示于图3。

(比较例2)使用市售试剂盒通过夹心ELISA法检测尿中人 CXCL1

使用市售的人CXCL1检测试剂盒即Human CXCL1/GRO alpha DuoSet(R&DSYSTEMS公司制)测定尿中添加的重组型人CXCL1。 按照附带的操作说明进行详细操作，与实施例8同样地配制人尿中 添加的CXCL 1溶液。结果示于图3。

根据实施例8～9、比较例2判明：与现有方法的市售人CXCL1 检测试剂盒比较，采用本发明的免疫学的测定法甚至可以检测在尿 中为31.25pg/mL的人CXCL1，测定灵敏度提高。

(实施例10)使用市售试剂盒单克隆抗体及单克隆抗体IgG1- 10、通过夹心ELISA法检测CXCL1

使用实施例3中判明特异性识别序列号2表示的氨基酸序列区 的市售试剂盒Human CXCL1/GRO alpha DuoSet(R&DSYSTEMS 公司制)附带的小鼠单克隆抗体、及判明特异性识别序列号3表示 的氨基酸序列区的抗体IgG1-10的生物素标记体，通过夹心ELISA 法测定缓冲液中添加的人CXCL1。使用Sulfo-NHS Biotin(PIERCE 公司制)进行IgG1-10的生物素化，按照附带的操作说明进行详细 操作。首先，配制市售试剂盒附带的小鼠单克隆抗体的4μg/mL的 PBS溶液后，加入96孔聚苯乙烯平板(Greiner公司制)的孔中，每 孔100μL，固相化一夜。次日，弃去上述溶液，注入200μL 1％BSA -PBS溶液(SIGMA公司制)，在室温下静置1小时。之后，用PBS -T清洗，制成纯化抗体固相化平板。然后，使用1％BSA-PBS将 重组型人CXCL1从500pg/mL阶段稀释至7.8pg/mL，将所得的抗 原溶液添加到各孔中，每孔100μL，在室温下使其反应1小时。然 后，弃去孔内的抗原溶液，用PBS-T清洗后，使用1％BSA-PBS 稀释，使100μL所得的1μg/mL生物素标记IgG1-10在室温下反 应1小时。清洗后，使100μL avidin-HRP溶液(R&DSYSTEMS 公司制)在室温下反应30分钟。Avidin-HRP也使用1％BSA-PBS 进行稀释。用PBS-T清洗后，加入100μL TMB溶液使其反应15 分钟后，添加100μL 2N硫酸溶液使反应停止，测定450nm的吸光度。 结果示于图4。

由此可以判明：即使在使用市售试剂盒附带的单克隆抗体作为 识别序列号2的抗体时，在与识别序列号3的抗体组合的夹心ELISA 法中，也能够检测7.8pg/mL的人CXCL1。另外，判明了在将市售 试剂盒附带的单克隆抗体与识别序列号3的抗体组合进行夹心 ELISA法时，与用市售试剂盒测定的情况(比较例1)相比，测定灵 敏度提高。

(实施例11)使用取得的抗体通过ELISA法检测人CXCL1

对于实施例2中筛选出的5种抗体IgG1-1、IgG1-3、IgG1- 10、IgG1-14、IgG2b-1，分别制备它们的10μg/mL的PBS溶液， 之后，以每孔100μL加入到96孔聚苯乙烯平板(Greiner公司制) 的孔中，固相化一夜。次日，弃去上述溶液，注入200μL 1％BSA- PBS溶液(SIGMA公司制)，在室温下静置1小时。之后，用PBS -T清洗，制成纯化抗体固相化平板。然后，使用1％BSA-PBS将 重组型人CXCL1蛋白质从125pg/mL阶段性稀释至15pg/mL，将 由此所得的抗原溶液添加到各孔中，每孔100μL，在室温下使其反 应1小时。然后，弃去孔内的抗原溶液，用PBS-T清洗后，使用1 ％BSA-PBS稀释得到50ng/mL生物素标记抗人CXCL1多克隆抗 体(R&DSYSTEMS公司制)，将100μL所得的生物素标记抗人 CXCL1多克隆抗体在室温下反应1小时。清洗后，使100μL avidin -HRP溶液(R&DSYSTEMS公司制)在室温下反应30分钟。Avidin -HRP也使用1％BSA-PBS进行稀释。用PBS-T清洗后，加入 100μL TMB溶液反应15分钟后，添加100μL 2N硫酸溶液使反应停 止，测定450nm的吸光度。结果示于图5。

根据实施例10、11及比较例1可以判明：本发明的抗体IgG1 -1、IgG1-3、IgG1-10、IgG1-14、IgG2b-1信号均强于市售抗 体，人CXCL1的检测能力高。

(实施例12)使用取得的抗体检测血浆中的人CXCL1

使用实施例2中筛选出的5种抗体IgG1-1、IgG1-3、IgG1- 10、IgG1-14、IgG2b-1，进行血浆中溶解的人CXCL1的检测。

首先，将各抗体分别配制成10μg/mL的PBS溶液后，加入96 孔聚苯乙烯平板(Greiner公司制)的孔中，每孔100μL，固相化一 夜。次日，弃去上述溶液，注入200μL稀释至4倍的1％BSA-PBS 溶液(SIGMA公司制)，在室温下静置1小时。之后，用PBS-T 清洗，制成纯化抗体固相化平板。

然后，配制500pg/mL重组型人CXCL1蛋白质的血浆溶液， 用相同血浆阶段稀释至125pg/mL制成抗原血浆溶液的稀释系列。 将抗原血浆溶液以每孔100μL添加到各孔中，在室温下反应1小时 后，弃去抗原溶液，用PBS-T清洗。

接着，添加100μL用1％BSA-PBS稀释的50ng/mL生物素标 记抗人CXCL 1多克隆抗体(R&DSYSTEMS公司制)，在室温下反 应1小时。清洗后，使100μL经过用1％BSA-PBS稀释的avidin- HRP溶液(R&DSYSTEMS公司制)在室温下反应30分钟。用PBS -T清洗后，加入100μL TMB溶液反应15分钟后，添加100μL 2N 硫酸溶液使反应停止，测定450nm的吸光度。结果如图6所示。

(比较例3)使用市售抗体检测血浆中的人CXCL1

使用市售的抗人CXCL1单克隆抗体即MAB275(R& DSYSTEMS公司制)，检测血浆中溶解的人CXCL1。配制用PBS 稀释的10μg/mL的MAB275溶液，分别以每孔100μL加入96孔聚 苯乙烯平板(Greiner公司制)的孔中，固相化一夜。之后用与实施 例6同样的方法进行。结果示于图6。

由实施例12、比较例3可知本发明的5种抗体均能够检测血浆 中溶解的人CXCL1。

(实施例13)使用取得的抗体检测尿中的人CXCL1

使用实施例2中筛选出的5种抗体IgG1-1、IgG1-3、IgG1- 10、IgG1-14、IgG2b-1，检测尿中溶解的人CXCL1。

首先，将各抗体分别配制成10μg/mL的PBS溶液后，以每孔 100μL加入96孔聚苯乙烯平板(Greiner公司制)的孔中，固相化一 夜。次日，弃去上述溶液，注入200μL稀释至4倍的1％BSA-PBS 溶液(SIGMA公司制)，在室温下静置1小时。之后，用PBS-T 清洗，制成纯化抗体固相化平板。

然后，配制500pg/mL重组型人CXCL1蛋白质的尿溶液，用 相同的尿阶段稀释至125pg/mL制成抗原尿溶液的稀释系列。将上 述溶液以每孔100μL添加到各孔中，在室温下反应1小时，之后弃 去抗原溶液，用PBS-T清洗。

接着，添加100μL用1％BSA-PBS稀释的50ng/mL生物素标 记抗人CXCL1多克隆抗体(R&DSYSTEMS公司制)，在室温下反 应1小时。清洗后，使100μL经过用1％BSA-PBS稀释的avidin- HRP溶液(R&DSYSTEMS公司制)在室温下反应30分钟。用PBS -T清洗后，加入100μL TMB溶液使其反应15分钟，添加100μL 2N 硫酸溶液使反应停止，测定450nm的吸收。结果示于图7。

(比较例4)使用市售抗体检测尿中的人CXCL1

使用市售的抗人CXCL1单克隆抗体即MAB275(R& DSYSTEMS公司制)，检测尿中溶解的人CXCL1。配制用PBS稀 释的10μg/mL的MAB275溶液，分别以每孔100μL加入96孔聚苯 乙烯平板(Greiner公司制)的孔中，固相化一夜。之后用与实施例 13同样的方法进行。结果示于图7。

由实施例13、比较例4可知本发明的5种抗体中有4种抗体也 能够检测尿中溶解的人CXCL1。

(实施例14)使用单克隆抗体IgG1-1、IgG1-3、IgG1-10、 IgG1-14、IgG2b-1的膀胱癌细胞进行的侵袭能力的中和活性测定 实验

对于实施例2中筛选出的5种抗体IgG1-1、IgG1-3、IgG1- 10、IgG1-14、IgG2b-1，进行抑制膀胱癌细胞的侵袭能力的中和 活性的测定。

首先，将膀胱癌细胞T24细胞接种在添加了10％FCS、12.5mM HEPES的RPMI 1640培养基中，使浓度为1.0×10⁵细胞/mL，进行 40小时前培养。培养后回收细胞，对于与各抗体混合的细胞溶液， 使用Matrigel侵袭室(MatrigelInvasion Chamber)(BD Falcon)测 定侵袭能力。按照附带的操作说明进行详细操作。向Matrigel侵袭 室中添加100μL的2.0×10⁵细胞/mL的PBS悬浮液及终浓度为10μg /mL的各抗体，在37℃、5％二氧化碳的条件下，进行侵袭培养5 小时。培养后，用快速染色(Diff-Quick)试剂(Sysmex公司制) 将小室下部染色，计算侵袭至小室下部的膀胱癌细胞数。用显微镜 进行计数，以0.8cm×0.6cm作为1个视野，测量5个视野并合计。 测定进行2次(n＝2)，将合计值平均，将所得结果示于图8。

(比较例5)使用市售抗体的膀胱癌细胞的侵袭能力的中和活性 测定实验

对于市售的抗人CXCL 1单克隆抗体即MAB275(R& DSYSTEMS公司制)，进行抑制膀胱癌细胞的侵袭能力的中和活性 的测定。方法与实施例14同样地进行。结果示于图8。

由实施例14及比较例5可知：本发明的5个抗体显示与市售抗 体同等或更高的中和活性，特别是IgG1-1、IgG1-10、IgG1-14、 IgG2b-1显示出高活性。

(实施例15)使用单克隆抗体IgG1-3、IgG1-10、IgG1-14、 IgG2b-1进行的膀胱癌细胞的侵袭能力的中和活性测定实验2

对于实施例2中筛选出的5种抗体中的IgG 1-3、IgG1-10、IgG1 -14、IgG2b-1的4种，进行抑制膀胱癌细胞的侵袭能力的中和活 性的测定。需要说明的是，与实施例14不同，抗体不是在即将测定 侵袭能力之前混合，而是从前培养的阶段开始混合。

首先，将膀胱癌细胞T24细胞接种在添加了10％FCS、12.5mM HEPES的RPMI1640培养基中，使浓度为1.0×10⁵细胞/mL，添加 各抗体使终浓度为10μg/mL后，进行培养40小时。培养后回收细 胞，对于与各抗体混合的细胞溶液，使用Matrigel侵袭室(BD Falcon) 测定侵袭能力。之后进行与实施例14同样的实验，只是将侵袭培养 时间变更为6.5小时。侵袭的细胞数的测量也与实施例14同样地进 行，结果示于图8。

(比较例6)使用市售抗体的膀胱癌细胞的侵袭能力的中和活性 测定实验2

对于市售的抗人CXCL1单克隆抗体即MAB275(R& DSYSTEMS公司制)，进行抑制膀胱癌细胞的侵袭能力的中和活性 的测定。与比较例7不同，抗体不是在即将测定侵袭能力前混合、 而是从前培养的阶段开始混合。方法与实施例15同样地进行。结果 示于图9。

由实施例15、比较例6可知，本发明所含的4个抗体均显示出 比市售抗体更高的中和活性。

产业上的可利用性

根据本发明，能够以比现有技术更高的灵敏度测定人CXCL1的 浓度，因此，本发明可以用于尿路上皮癌等癌症的检测。