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猪圆环病毒2型抗原亚型鉴定试纸卡

摘要

PCV2抗原亚型鉴定试纸卡适用于猪PCV2亚型鉴定。其反应试剂载体吸附层包括纤维层,金标纤维层,纤维素膜层和吸水材料层;金标纤维层为吸附胶体金标记的识别PCV共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体的金标玻璃棉,纤维素膜层上印制检测印迹T1、T2、T3和对照印迹C;检测印迹T1为识别1767PCV2亚型特异性抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体溶液印制的印迹,检测印迹T2为识别1766PCV2和1767PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体溶液印制的印迹,检测印迹T3为识别PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体溶液印制的印迹,对照印迹C为抗小鼠IgG多克隆抗体溶液印制的印迹。试纸卡特异性强,敏感性高,检测结果直观,易于推广应用。

著录项

  • 公开/公告号CN101413950A

    专利类型发明专利

  • 公开/公告日2009-04-22

    原文格式PDF

  • 申请/专利权人 浙江大学;

    申请/专利号CN200810162444.X

  • 发明设计人 周继勇;颜焰;金玉兰;

    申请日2008-11-13

  • 分类号G01N33/577(20060101);G01N33/558(20060101);

  • 代理机构33212 杭州中成专利事务所有限公司;

  • 代理人冯子玲

  • 地址 310029 浙江省杭州市江干区凯旋路268号浙江大学动物科学学院

  • 入库时间 2023-12-17 21:49:12

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2015-08-19

    专利实施许可合同备案的生效 IPC(主分类):G01N33/577 合同备案号:2015330000175 让与人:浙江大学|浙江同点生物科技有限公司 受让人:浙江诺倍威生物技术有限公司 发明名称:猪圆环病毒2型抗原亚型鉴定试纸卡 申请公布日:20090422 授权公告日:20130410 许可种类:普通许可 备案日期:20150624 申请日:20081113

    专利实施许可合同备案的生效、变更及注销

  • 2013-04-10

    授权

    授权

  • 2009-06-17

    实质审查的生效

    实质审查的生效

  • 2009-04-22

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明属于生物技术领域,涉及一种猪圆环病毒2型(PCV2)抗原亚型鉴定试纸卡。

背景技术

猪圆环病毒2型(porcine circovirus 2,PCV2)是猪圆环病毒病(PCVD)的病原,导致猪群免疫抑制,给养猪业造成了巨大的经济损失;是目前发现的最小的动物病毒,病毒粒子直径约17nm,为共价闭合,环状,单股DNA病毒。在DNA水平上,已发现基因组全长分别为1768nt、1767nt、1766nt三种PCV2病毒。已知PCV2 ORF1编码与病毒复制相关的Rep蛋白,ORF2编码PCV2免疫相关的衣壳蛋白,ORF3编码与PCV2复制无关、与致病性有关的蛋白。1766PCV2在1059位缺失一个核苷酸G,引起ORF2C末端密码子移位,使得1766PCV2缺失1767PCV2的特异性抗原表位。该特征性抗原表位可作为血清学标志,用于1766PCV2、1767PCV2和1768PCV2的抗原分型鉴定。

目前,国内外采用的PCV2抗原和抗体检测技术主要有:病毒分离培养,间接免疫荧光(IFA),免疫酶单层试验(IMPA),酶联免疫吸附试验(ELISA),原位杂交(ISH),聚合酶链式反应(PCR)等等。上述技术和方法虽然可以检测PCV2病毒,在实践中也取得一定的效果,但均无法实现对PCV2实现抗原分型的鉴别诊断,并且存在试验操作复杂,耗时长,需要特定的专业技能和仪器设备等,常限于实验室内进行,很难在基层普及和推广。因此,在分析鉴定PCV2亚型抗原表位特征的基础上,研制开发适用于养殖基层的快捷、简便的PCV2鉴别诊断和抗原分型检测器具,对诊断、监控猪群PCV2感染,有效控制PCVD的发生和危害有重要意义。

发明内容

本发明的目的是:提供一种适用于猪PCV2抗原亚型鉴定的试纸卡,在生产实践中易于推广应用。

本发明的PCV2抗原亚型鉴定试纸卡,包括用不吸水薄片条制成的支撑层1,反应试剂载体吸附层固定在支撑层1上,从样品端12到手柄端13的反应试剂载体吸附层依次为:纤维层2,金标纤维层3,纤维素膜层4和吸水材料层5,金标纤维层3为吸附胶体金标记的识别PCV共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体的金标玻璃棉,纤维素膜层4为从样品端12至手柄端13依次印制检测印迹T1 6、检测印迹T2 7、检测印迹T3 8和对照印迹C 9的硝酸纤维素膜,试纸卡固定在塑料卡11内,在样品端12设有加样孔10;检测印迹T1 6为以识别1767PCV2亚型特异性抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体溶液在纤维素膜上印制的1767亚型条状检测印迹,检测印迹T2 7为以识别1766PCV2和1767PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体溶液印制的1766和1767亚型条状检测印迹,检测印迹T3 8为以识别PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体溶液印制条状检测印迹,对照印迹C 8为以抗小鼠IgG多克隆抗体溶液印制的条状对照印迹,上述4条印迹按序平行排列。

以上方案详述如下:

PCV2抗原亚型鉴定试纸卡含有支撑层和反应试剂载体吸附层,支撑层为不吸水薄片条,反应试剂载体吸附层粘贴于支撑层上,由样品端到手柄端依次为纤维层、金标纤维层、纤维素膜层和吸水材料层,纤维素膜层为从样品端至手柄端依次印制检测印迹T1,检测印迹T2,检测印迹T3和对照印迹C的硝酸纤维素膜,试纸卡固定在塑料卡内,在样品端设有加样孔。

支撑层的不吸水薄片条可用硬质塑胶片条,或不吸水的硬纸条,纤维层可用玻璃棉,吸水材料层可用吸水纸,纤维素膜层可用硝酸纤维素膜,金标纤维层可用吸附金标蛋白玻璃棉,简称金标玻璃棉,金标蛋白为胶体金标记的识别PCV共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb1,检测印迹T1为以识别1767PCV2型特异性抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb2溶液在纤维素膜上印制的1767PCV2检测印迹“|”,检测印迹T2为以识别1766PCV2和1767PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb3溶液印制的1766PCV2和1767PCV2检测印迹“|”,检测印迹T3为以识别PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb4溶液印制的PCV2检测印迹“|”,对照印迹C为以抗小鼠IgG多克隆抗体pAb溶液印制的对照印迹C“|”,其组合排列为“||||”。

试纸卡具有下列各项优点:

(1)特异性强,敏感性高。PCV2抗原亚型鉴定试纸卡以高亲和力单克隆抗体为基础制备而成,抗衣壳蛋白单克隆抗体分别特异性识别PCV2共同抗原表位,以及PCV2抗原亚型特异性抗原表位,有效区分PCV2不同抗原亚型,有高度的特异性。

(2)操作简便快速。使用PCV2抗原亚型鉴定试纸卡检测PCV2,能有效鉴别检测不同抗原亚型PCV2感染,在5-10分钟内即可判定检测结果。

(3)显示检测结果形象、直观准确。PCV2抗原亚型鉴定试纸卡以红棕色“|”,“||”,“|||”或“||||”作为阴性,1768亚型,1766亚型和1767亚型PCV2检测标记,通过PCV2抗原亚型鉴定试纸卡可鉴别检测不同抗原亚型PCV2感染,即在PCV2抗原亚型鉴定试纸卡上显示一条棕红色“|”印迹表示在被检测样品中未检出PCV2,两条棕红色“||”印迹表示被检样品1768亚型PCV2阳性,三条棕红色“|||”印迹表示被检样品1766亚型PCV2阳性,四条棕红色“||||”印迹表示被检样品1767亚型PCV2阳性,试纸卡无显色印迹则表示检测失败或试纸卡失效,结果判定形象、直观、准确,简单明了,不易出现假阴性和假阳性误判。

(4)成本低,投资少。PCV2抗原亚型鉴定试纸卡可在检测现场完成操作,检测一步到位,成本低廉,投资少,见效快。

本发明有益的积极效果是:操作简单,普通技术人员可以操作,能满足各种需要,如疫病诊断、疫病监测、口岸检疫、卫生防疫、集约化养殖到个体养殖等,易于大范围推广,具有广阔的市场前景。

附图说明

图1是PCV2抗原亚型鉴定试纸卡结构示意图。图中,1.支撑层,2.样品端的纤维层,3.金标纤维层(金标玻璃棉),4.纤维素膜层,5.手柄端的吸水材料层,6.检测印迹T1,7.检测印迹T2,8.检测印迹T3,9.对照印迹C,10.加样孔,11.塑料卡,12.样品端,13.手柄端。

图2是PCV2抗原亚型鉴定检测结果图。图中,1为PCV2阴性,2为1768亚型PCV2,3为1766亚型PCV2,4为1767亚型PCV2,5为检测失败或试纸卡失效。

具体实施方式

以下结合附图对本发明进一步描述。

PCV2抗原亚型鉴定试纸卡可应用于猪PCV2感染检测并进行PCV2抗原亚型鉴定。制备PCV2抗原亚型鉴定试纸卡,首先需制备PCV2衣壳蛋白重组蛋白,进而制备抗衣壳蛋白单克隆抗体,筛选获得识别PCV2共同抗原表位,1767亚型特异性抗原表位,以及1766和1767亚型共同抗原表位的单克隆抗体,其次需制备羊抗小鼠IgG多克隆抗体,分别用于制备PCV2抗原亚型鉴定试纸卡的金标玻璃棉,PCV检测印迹T3,1767亚型检测印迹T1,1766和1767亚型检测印迹T2,以及对照印迹C。

实施例1 PCV2衣壳蛋白重组蛋白的制备

用基因工程技术高效表达PCV2衣壳蛋白,制备衣壳蛋白重组蛋白。根据1767PCV2分离株HZ0201(GenBank No.AY188355)全基因序列,分别设计PCV2衣壳蛋白特异性引物,上游引物为pG1:5’-GCGGATCCAATGGCATCTTCAACAC-3’,含BamHI酶切位点,下游引物pG2:5’-CCGCTCGAGTTAAGGGTTAAGTGGG-3’,含XhoI酶切位点。以PCV2病毒DNA为模板,扩增579bp的去核定位信号衣壳蛋白基因,反应条件为:95℃预变性5min后,按95℃30s,58或61℃ 30s,72℃ 45s进行30个循环,最后72℃再延伸10min。PCR产物经BamHI和XhoI双酶切,分别连接到原核表达载体pGEX-4T-1的谷胱甘肽-S-转移酶基因(GST)下游BamHI和XhoI位点间,转化E.coli Top10感受态细胞,涂布于含100μg/mL氨苄青霉素(Amp)的LB平板,37℃培养16h,挑取单克隆菌落,碱裂解法抽提重组质粒,以PCR和双酶切鉴定阳性克隆,经序列测定验证鉴定。经PCR和酶切鉴定,构建重组表达质粒pGEX-PCV2-dCap,PCV2衣壳蛋白在N端与GST融合。将重组表达质粒pGEX-PCV2-dCap转化表达菌E.coliE.coli BL21,挑选单克隆接入5mL含100μg/mL Amp的LB培养基中,37℃、250r/min振荡培养10h,然后按1:100转接500mL2×YTA(100μg/mL Amp)的培养基,37℃、250r/min振荡培养3h至A600为0.6-0.8时,加入终浓度为0.1mmol/L的IPTG在37℃诱导表达4h,4℃4000r/min离心10min收集诱导表达菌体。

采用GSTrap FF亲和层析柱(Amersham公司)在天然条件下纯化PCV2 GST-dCap蛋白,主要步骤为:按每毫升培养菌液加入50μL 4℃预冷的Binding buffer(140mmol/L NaCl,2.7mmol/L KCl,10mmol/L Na2HPO4,1.8mmol/L KH2PO4,pH7.3)将收集的细菌沉淀重新悬浮,超声波裂解破碎(0.2-0.3kw,120次)直至菌液呈均一、半透明状或云雾状消失;加入终浓度为1%的Triton X-100,冰上振荡混匀30min,4℃、12000rpm离心30min,取上清液进一步用0.45μm滤器过滤。取上清过用Binding buffer预平衡的GSTrap FF纯化柱,流速为0.5mL/min(中间不能引入气泡)。用20-30倍柱床体积Binding buffer洗涤柱子(流速为1mL/min),用10倍柱床体积的Elution buffer(50mmol/L Tris-HCl,10mmol/L reducedglutathione,pH8.0)洗脱(流速为1mL/min),或者用80U凝血酶(Thrombin)柱上酶解PCV2GST-dCap融合蛋白,纯化重组的dCap蛋白,用eppendorf管收集洗脱液,每管1.0mL,取样作SDS-PAGE分析,并用Bradford法测蛋白含量,计算表达量。结果显示,含pGEX-PCV2-dCap重组质粒的表达菌成功表达分子量为48kDa的GST-dCap融合蛋白,其表达量为6.14mg/L培养物,可用于制备PCV2抗衣壳蛋白单克隆抗体。

实施例2 抗PCV2衣壳蛋白单克隆抗体的制备与筛选

分别将重组PCV2衣壳蛋白和纯化PCV2病毒与弗氏佐剂等量混合,充分乳化,以50μg-100μg/只免疫BALB/c系小鼠3次,每次间隔15-30天;第3次加强免疫后3-4天,将免疫小鼠眼球放血,拉颈致死,于75%酒精浸泡5-10min,无菌取其脾细胞;剪碎并经100目尼龙网过滤,1000r/min离心10min,收集脾细胞;将1×108的脾细胞与2-5×107的SP2/0骨髓瘤细胞混合,1000r/min离心10min,弃上清,在37℃的水浴中将0.7-1ml的40%-50%PEG4000(pH8.5-9.0)缓缓加入细胞,温育1min后,缓慢加入无血清1640培养基15ml,以终止PEG的作用,37℃水浴5-10min,1000r/min离心10min,弃上清,将细胞重悬于HAT选择培养基中,并加入96孔培养板(100μL-200μL/孔),置37℃5%CO2培养箱中培养。培养7-10天后,分别用5μg-10μg/ml的PCV1和PCV2衣壳蛋白重组蛋白包被96孔酶标板,以ELISA检测杂交瘤的培养上清,挑取强阳性细胞克隆(OD492=0.8以上),经连续3次的有限稀释法克隆化,建立杂交瘤细胞株,将杂交瘤细胞腹腔注射经降植烷致敏一周的BALB/c系小鼠,每只小鼠注射5×105个细胞,诱生小鼠腹水,制备抗PCV2衣壳蛋白单克隆抗体。所建立的14株杂交瘤细胞株染色体数为92-98,其分泌的单克隆抗体特异识别PCV2衣壳蛋白,与GST及其它菌体蛋白不发生交叉反应,亲和力常数达10-9,轻链亚型为κ或λ,重链亚型为IgG1,IgG2a,IgG2b或IgG3。

实施例3 抗PCV2衣壳蛋白单克隆抗体的筛选

以间接免疫荧光(IFA)对所制备的14株抗衣壳蛋白单克隆抗体进行筛选和鉴定。分别将PCV1分离株,1768PCV2分离株,1767PCV2分离株和1766PCV2分离株按1:10接种胰酶消化的无PCV污染的PK-15细胞,将病毒细胞混合液加入96孔细胞培养板,每孔100μL,37℃ 5%CO2培养96h,加入1:1混合的甲醇丙酮固定液100μL,-20℃固定20min。将固定液弃去,自然干燥。用5%的脱脂奶粉封闭1h,每孔加入待检杂交瘤细胞上清100μL,37℃孵育1h,PBST洗涤5次,加入1:400稀释的FITC标记的羊抗鼠IgG 50μL,37℃孵育40min,PBST洗涤5次。加入50μL PBS,用倒置荧光显微镜观察阳性细胞,筛选识别不同PCV基因型和抗原亚型的单克隆抗体。经IFA检测和筛选,单克隆抗体3F6均能识别感染PK-15细胞的PCV1,1768PCV2,1767PCV2和1766PCV2病毒粒子,为识别PCV共同抗原表位的单克隆抗体mAb1,单克隆抗体8A12仅特异性识别感染PK-15细胞的1767PCV2病毒粒子,而不与其他三株病毒感染细胞反应,为特异识别1767PCV2亚型单克隆抗体mAb2,单克隆抗体6H9识别感染PK-15细胞的1767PCV2和1766PCV2病毒粒子,但不与1768PCV2和PCV1感染细胞反应,为识别1766PCV2和1767PCV2共同抗原表位的单克隆抗体mAb3,单克隆抗体1B9识别感染PK-15细胞的1768PCV2,1767PCV2和1766PCV2病毒粒子,而不与PCV1感染细胞反应,为识别PCV2共同抗原表位的单克隆抗体mAb4,上述识别PCV共同抗原表位,1767PCV2亚型特异性,1766PCV2和1767PCV2亚型特异性,以及PCV2特异性抗衣壳蛋白单克隆抗体分别用于制备PCV2抗原亚型鉴定试纸卡的金标玻璃棉,检测印迹T1,检测印迹T2和检测印迹T3的印制。

实施例4 抗PCV2衣壳蛋白单克隆抗体识别抗原表位的鉴定

以合成多肽分析鉴定抗衣壳蛋白单克隆抗体识别的抗原表位。根据PCV2 HZ0201衣壳蛋白的氨基酸序列,设计由18肽组成的氨基酸重叠多肽片段,每条肽之间重叠8个氨基酸,移位10个氨基酸(aa),跨越PCV2衣壳蛋白氨基酸位25-233(未包含核定位信号NLS中的前24个氨基酸),共计20条肽,于每条肽N端加一半胱氨酸Cys,用于载体蛋白偶联,所设计多肽由上海波泰生物技术有限公司合成,每条合成多肽10mg,纯度大于90%,冻干保存。

用无菌的蒸馏水或去离子水、无氧水溶解冻干多肽,浓度为1mg/mL,应用异型双功能试剂Sulfo-SMCC(分子量436.37,美国Pierce公司产品)通过多肽N端Cys上的-SH基团与载体蛋白牛血清白蛋白BSA偶联,步骤为:1)称量4mg BSA,溶于500μl偶联缓冲液(0.1Mphosphate,0.15M NaCl,1mM EDTA,pH7.2);2)加入1mg Sulfo-SMCC于载体蛋白溶液;3)RT孵育60min或37℃孵育30min,并不时混匀;4)对偶联缓冲液充分透析,以除去多余的偶联剂,用偶联缓冲液调整蛋白浓度为5mg/ml;5)取20μL(100μg)Sulfo-SMCC活化的载体蛋白,加入N末端含Cys的溶解多肽100μg,充分混匀,于4℃孵育4h或过夜,完成偶联反应,4℃保存备用。

采用Peptide-ELISA分析抗衣壳蛋白单克隆抗体识别的抗原表位。以50mM Tris-HCl缓冲液(pH8.6)作包被液稀释BSA偶联多肽至1μg/mL,包被96孔酶标板,每孔100μl,4℃孵育过夜,PBST洗涤3次;用5%的脱脂奶PBS封闭酶标板,200μL/孔,37℃封闭3h,PBST洗涤3次;加入用5%的脱脂奶1:500-1000稀释的抗衣壳蛋白单克隆抗体,100μL/孔,重复3个孔,37℃孵育1.5h,PBST洗涤6次;加入1:10000稀释的HRP羊抗鼠IgG,100μl/孔,37℃孵育1h,PBST洗涤6次;加入TMB显色溶液100μL,室温孵育10min,观察显色结果,每孔加入50μl2M硫酸溶液终止反应,在酶标仪上读取450nm吸收值。对于Peptide-ELISA阳性多肽,进一步设计合成系列截短多肽,偶联于载体蛋白BSA,同上以Peptide-ELISA分析截短多肽与相应单克隆抗体的反应性,精确定位所获得抗衣壳蛋白单克隆抗体识别的抗原表位。合成多肽的抗原表位分析结果表明,单克隆抗体mAb1识别的PCV共同抗原表位为PCV2衣壳蛋白的156YHSRYFT162,单克隆抗体mAb2识别的1767PCV2亚型特异性抗原表位为PCV2衣壳蛋白C末端226LKDPPLNP233,是1767PCV2新的血清学标志,单克隆抗体mAb3不能识别PCV2衣壳蛋白的任何一条合成多肽,表明该单克隆抗体识别的1766PCV2和1767PCV2共同抗原表位为构象型抗原表位,单克隆抗体mAb4识别的PCV2共同抗原表位为PCV2 Cap蛋白的195HVGLGTAF202

实施例5 抗小鼠IgG多克隆抗体的制备

采取小鼠血液,分离血清,以辛酸-硫酸铵法粗提小鼠血清IgG,并用Superdex 200凝胶层析进行纯化。首先用4倍血清体积的0.06M pH4.8醋酸缓冲液稀释血清,以1M NaOH调pH至4.5;在室温下边搅拌边逐滴加入辛酸,每毫升血清加入25μL辛酸,4℃静置2h,12000r/min离心30min,取上清;在溶液中加10倍体积磷酸盐缓冲液PBS,用5M NaOH调pH至7.4,冰浴至4℃;按每毫升混合液加0.277g硫酸铵并搅拌30min,4℃静置4h,12000r/min离心30min,弃上清;沉淀以0.05M PBS pH7.4重悬于,透析除盐,直至用BaCl2检测无白色沉淀为止,用PEG8000进行浓缩。利用GE公司AKAT purifier蛋白纯化系统以Hiload16/60 Superdex 200prep pg凝胶过滤预装柱纯化粗提的小鼠IgG。用0.22μm滤器过滤粗提的小鼠血清IgG溶液,并经超声波除气;将Hiload 16/60 Superdex 200prep pg凝胶过滤预装柱与AKAT purifier蛋白纯化系统相连接,先用ddH2O清洗柱子,接着用含0.15M NaCl的0.05M磷酸盐缓冲液(PBS,pH8.0)平衡柱子,流速为2mL/min,直至UV280的吸光值和电导值基线稳定,平衡柱子时要清洗各阀位。将过滤的猪血清IgG样品用注射器(上样前注意排空注射器里的气泡,以免损害柱子)注入样品环中,设置洗脱速度和报警压,进行上样和洗脱,流速为1mL/min。观察UV280值基线的变化,收集紫外吸收峰的洗脱峰,每管收集2mL,SDS-PAGE电泳检测脱蛋白,合并收集液,装入透析袋,放入PEG8000中浓缩,用Nanodrop 1000分光光度仪测OD280和OD260吸光值,并根据公式计算IgG含量:蛋白含量(mg/mL)=(1.45×OD280-0.74×OD260)×稀释倍数,测得小鼠IgG的蛋白含量为12.0mg/mL,用于羊抗小鼠IgG多克隆抗体的制备。

以50~100μg/kg体重的小鼠IgG蛋白加弗氏佐剂充分乳化,经皮下和肌肉注射免疫健康山羊3~4次,末次免疫10天后,静脉采血,以ELISA测定其血清抗体效价在1:2000以上时,心脏采血或颈动脉放血,收集高免血清;以辛酸-硫酸铵法粗提免疫山羊血清IgG,并用Superdex 200凝胶层析进行纯化,不重述。所制备的抗小鼠IgG多克隆抗体用于PCV2抗原亚型鉴定试纸卡对照印迹的印制。

实施例6 金标玻璃棉的制备

以柠檬酸钠还原法制备金溶胶,即在沸腾的50-100ml 0.01-0.05%氯金酸水溶液中加入2-4ml的0.5-2%柠檬酸三钠溶液,获得直径15nm左右的胶体金。以0.1mol/L K2CO3调胶体金pH至8.5-9.5,以1:1000-1:1300的标记比将待标记的单克隆抗体mAb1加入pH8.5-9.5金溶胶中,标记10min后,加20% PEG 10000至终浓度0.05%,4℃ 1500-3000g离心20min,除去未结合的金颗粒,4℃ 15000g离心1h,弃上清,获初步纯化金标蛋白混合物后,用丙烯葡聚糖S-400柱层析,分离纯化金标蛋白,获得胶体金标记的抗PCV2衣壳蛋白单克隆抗体。将1:100-1:1500稀释的胶体金标记蛋白吸附于精制玻璃棉中,4℃低温真空干燥,制备PCV2抗原亚型鉴定试纸卡的金标玻璃棉。

实施例7 PCV2抗原亚型鉴定试纸卡的实施结构

PCV2抗原亚型鉴定试纸卡的实施结构参见图1,图中,1为支撑层用不吸水薄片条,实施中可采用塑胶薄片条或采用不吸水的硬质纸片材,反应试剂载体吸附层由2,3,4,5,组合而成,从样品端12开始,到手柄端13依次粘贴在支撑层1上面;其中2为样品端纤维层,实施中可使用玻璃纤维棉简称玻璃棉,3为吸附金标蛋白的纤维层,金标蛋白为胶体金标记的识别PCV共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb1,可采用精制玻璃纤维棉,简称为金标玻璃棉,4为纤维素膜层,实施中可采用硝酸纤维素膜,5为手柄端吸水材料层,采用吸水纸,如滤纸或其它吸水纸均可,2,3,4,5各层彼此之间交界处纤维互相交叉渗透;PCV2抗原亚型鉴定试纸卡的6为识别1767PCV2亚型特异性抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb2溶液在纤维素膜上印制的1767亚型检测印迹T1“|”,7为用识别1766PCV2和1767PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb3溶液印制的1766和1767亚型检测印迹T2“|”,8为用识别PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb4溶液印制的PCV2检测印迹T3“|”,9为用抗小鼠IgG多克隆抗体pAb溶液印制的对照印迹C“|”,在纤维素膜上的检测印迹T1,检测印迹T2,检测印迹T3和对照印迹C组合排列为“||||”,10为样品溶液的加样孔,11为塑料卡,12为样品端,13为手柄端。

实施例8 PCV2抗原亚型鉴定试纸卡实施检测的反应原理

PCV2抗原亚型鉴定试纸卡检测的反应原理为:待检测样品溶液加入样品孔后,待检溶液通过虹吸带动待检抗原与金标蛋白一起向硝酸纤维素膜扩散,并最终渗透到滤纸层中,在扩散过程中PCV2病毒抗原与胶体金标记的识别PCV共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb1相结合,形成金标蛋白-抗原复合物,1767PCV2形成的复合物与检测印迹T1中的识别1767PCV2亚型特异性抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb2相结合,生成红棕色“|”标记,同时也分别与检测印迹T2中的识别1766PCV2和1767PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb3,以及检测印迹T3中的识别PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb4相结合,生成另两条红棕色“||”标记,部分未与抗原结合的金标蛋白不能与检测印迹结合而继续扩散,在纤维膜上与对照印迹C中的抗小鼠IgG多克隆抗体pAb相结合,生成红棕色标记“|”,四种标记组合叠加,形成四条红棕色阳性标记“||||”,代表样品为1767亚型PCV2病毒阳性;同理,1766PCV2形成的金标蛋白-抗原复合物不能与检测印迹T1中的识别1767PCV2亚型特异性抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb2识别,不能形成红棕色标记,复合物继续扩散与检测印迹T2中的识别1766PCV2和1767PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb3,以及检测印迹T3中的识别PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb4相结合,生成两条红棕色“||”标记,部分未与抗原结合的金标蛋白不能与检测印迹结合而继续扩散,在纤维膜上与对照印迹C中的抗小鼠IgG多克隆抗体pAb结合,生成红棕色标记“|”,从而形成三条红棕色阳性标记“|||”,代表样品为1766亚型PCV2病毒阳性;1768PCV2形成的金标蛋白-抗原复合物不能被检测印迹T1中的识别1767PCV2亚型特异性抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb2,以及检测印迹T2中的识别1766PCV2和1767PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb3所识别,但能与检测印迹T3中的识别PCV2共同抗原表位的抗衣壳蛋白单克隆抗体mAb4相结合,生成一条红棕色“|”标记,部分未与抗原结合的金标蛋白不能与检测印迹结合而继续扩散,在纤维膜上与对照印迹C中的抗小鼠IgG多克隆抗体pAb结合,生成红棕色标记“|”,从而形成两条红棕色阳性标记“||”,代表样品为1768亚型PCV2病毒阳性,相反,如果样品溶液中不含PCV2病毒,则没有金标蛋白-抗原复合物形成,不能与检测印迹T1,T2或T3结合,只有金标蛋白与对照印迹C相结合,生成一条红棕色标记“|”,代表样品为PCV2病毒阴性。如果纤维素膜上没有红棕色标记显现,则表明检测失败或试纸卡失效。

实施例9 PCV2抗原亚型鉴定试纸卡检测的实例操作方法

采集待检猪淋巴结或脾脏,以样品稀释液或生理盐水1:5倍稀释,充分研磨,制备样品溶液。取50μL样品溶液分别加入PCV1和PCV2鉴别检测和PCV2亚型鉴定检测试纸卡,水平放置约2-5分钟,检测结果见图2。PCV2抗原亚型鉴定试纸卡的显现一条红棕色标记“|”为PCV2阴性,显现两条红棕色标记“||”为1768亚型PCV2阳性,显现三条红棕色标记“|||”为1766亚型PCV2阳性,显现四条红棕色标记“||||”为1767亚型PCV2阳性,如果PCV2抗原亚型鉴定试纸卡没有标记显示,则表明检测失败或试纸卡失效。

序列表:

<110>浙江大学

<120>猪圆环病毒PCV2亚型鉴定试纸卡

<160>2

<210>1

<211>25

<212>DNA

<213>人工序列

<223>PCV2上游引物pG1

<400>1

<210>2

<211>25

<212>DNA

<213>人工序列

<223>PCV2下游引物pG2

<400>2

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