检测猪流行性乙型脑炎病毒和/或猪繁殖与呼吸综合征病毒的基因芯片以及试剂盒

摘要

本发明公开了一种检测猪流行性乙型脑炎病毒和/或猪繁殖与呼吸综合征病毒的基因芯片和试剂盒。本发明基因芯片和检测试剂盒可以准确、有效的检测猪流行性乙型脑炎病毒和猪繁殖与呼吸综合征病毒，且特异性强、灵敏度高、耗时短，检测快速，应用前景良好。

说明书

技术领域

本发明涉及一种检测猪流行性乙型脑炎病毒和/或猪繁殖与呼吸综合征病毒的基因芯片以及试剂盒。 

背景技术

多病原混合感染是当前猪场疫病的普遍现象，猪繁殖与呼吸综合征猪流行性乙型脑炎这三种猪病毒引起的疾病症状相似且常常呈混合感染,是当前危害养猪业的2种重要病毒性疾病，因此早期鉴别诊断并及时了解流行状况对控制这2种病的流行显得尤其重要。目前对这2种病的诊断多采用病原的分离及常规的血清学方法，但需时间较长。最近国外和国内均建立了病原的分离鉴定、免疫胶体金技术、酶联免疫吸附试验、血清中和实验、聚合酶链反应等，但是还不能更加快速的检测多种病原的混合感染。 

基因芯片技术是近年来新兴起的一种生物高新技术，该技术可以同时定量或定性的检测成千上万个基因信息，具有无选择性、客观、高通量的特点。基因芯片计划开展后,许多部门、大学、重点实验室及制药公司参与了该项目的研发,我国相继也成立了一大批基因芯片公司。随着基因组数据的增长以及分子生物学相关学科的快速发展,基因芯片技术得到迅猛发展和广泛应用。但生物芯片技术发展时间较短，很多技术还处于初级研发阶段，要成为实验室研究或临床可以普遍采用的技术仍有诸多关键问题亟待解决。(1)基因芯片的特异性的提高；(2)增加信号检测的灵敏度；(3)简化样品制备和标记操作；(4)设备与操作人员的要求较高；(5)应用标准的统一。 

目前，昊时友等，“猪病毒性繁殖障碍综合征基因芯片诊断方法的建立”，中国畜牧兽医学会动物传染病学分会第十二次学术研讨会，2007年公开了检测日本乙型脑炎病毒、猪繁殖与呼吸综合征病毒等6种病毒的基因芯片，但是该文件中没有芯片灵敏度试验，不能说明其可以灵敏地检出乙型脑炎病毒和猪繁殖与呼吸综合征病毒。 

发明内容

为了解决上述问题，本发明提供了一种新的特异性强、灵敏度高的可同时检测猪流行性乙型脑炎病毒和猪繁殖与呼吸综合征病毒的基因芯片和试剂盒。 

基因芯片，是指指通过不同方法将生物分子(寡核苷酸、cDNA、genomic DNA、多肽、抗体、抗原等)固着于硅片、玻璃片(珠)、塑料片(珠)、凝 胶、尼龙膜等固相递质上形成的生物分子点阵，其突出的特点是微型化、集成化、平行化和高通量。 

本发明检测猪流行性乙型脑炎病毒和/或猪繁殖与呼吸综合征病毒的基因芯片，它包括固相载体以及固定在固相载体上的探针；所述探针包括SEQ ID NO：1或2所示任意一个或者两个寡核苷酸片段，和/或SEQ ID NO：3或4所示任意一个或者两个寡核苷酸片段。 

优选地，它还包括定位探针，定位探针是SEQ ID NO：13所示的基因片段。 

本发明检测猪流行性乙型脑炎病毒和/或猪繁殖与呼吸综合征病毒的试剂盒，它包括前述的基因芯片与扩增猪流行性乙型脑炎病毒和/或猪繁殖与呼吸综合征病毒的基因的试剂；其中，扩增猪流行性乙型脑炎病毒基因的试剂包括SEQ ID NO：5～6和/或SEQ ID NO：7～8所示引物对；扩增猪繁殖与呼吸综合征病毒基因的试剂包括SEQ ID NO：9～10和/或SEQ ID NO：11～12所示引物对。 

它还包括SEQ ID NO：14～15所示引物对。 

优选地，所述引物对中，SEQ ID NO：5、7、9、11所示上游引物与SEQ ID NO：6、8、10、12所示下游引物的摩尔比分别为50:1、40:1、20:1、10:1。 

SEQ ID NO：1或2所示任意一个或者两个寡核苷酸片段，和/或SEQ ID NO：3或4所示任意一个或者两个寡核苷酸片段在制备检测猪流行性乙型脑炎病毒和/或猪繁殖与呼吸综合征病毒的基因芯片中的用途。 

优选地，所述基因芯片还包括定位探针，定位探针是SEQ ID NO：13所示的基因片段。 

SEQ ID NO：5～6和/或SEQ ID NO：7～8所示引物对与SEQ ID NO：1或2所示任意一个或者两个寡核苷酸片段，和/或SEQ ID NO：9～10和/或SEQ ID NO：11～12所示引物对与SEQ ID NO：3或4所示任意一个或者两个寡核苷酸片段在制备检测猪流行性乙型脑炎病毒和/或猪繁殖与呼吸综合征病毒的试剂盒中的用途；其中，引物对为扩增试剂；SEQ ID NO：1～4为检测探针。 

优选地，所述试剂盒还包括SEQ ID NO：14～15所示引物对以及SEQ ID NO：13所示定位探针。 

优选地，所述引物对中，SEQ ID NO：5、7、9、11所示上游引物与SEQ ID NO：6、8、10、12所示下游引物的摩尔比分别为50:1、40:1、20:1、10:1。 

本发明基因芯片和试剂盒可以有效检测猪流行性乙型脑炎病毒和猪繁殖与呼吸综合征病毒，敏感性高，两种病毒的最低检测浓度均为10⁴copies/μL，特异性强，耗时短，检测快速，具有良好的应用前景。 

以下通过实施例形式的具体实施方式，对本发明的上述内容作进一步的详细说明。但不应将此理解为本发明上述主题的范围仅限于以下的实施例。凡基于本发明权利要求书记载的内容所实现的技术均属于本发明的范围。 

附图说明

图1DNA微阵列的矩阵排列情况； 

图2Prm/M基因荧光与非荧光引物工作浓度的优化； 

图3JEV-C基因荧光与非荧光引物工作浓度的优化； 

图4PS9基因荧光与非荧光引物工作浓度的优化； 

图5Y11基因荧光与非荧光引物工作浓度的优化； 

图6特异性实验检测结果。 

具体实施方式

一、实验材料和仪器 

毒株： 

猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)毒株和猪流行性乙型脑炎病毒(JEV)毒株，购自中国兽药监察所。 

试剂： 

总RNA抽提试剂盒，为天根(北京)生化科技有限公司产品；PrimeScriptTMRT reagent Kit(Perfect Real Time)，为宝生物工程(大连)有限公司产品；小量质粒提取试剂盒、小量胶回收试剂盒，均为OMEGA(美国)生物技术公司产品。 

氨基载玻片、2×点样缓冲液、预杂交缓冲液、杂交缓冲液,均购自上海百傲科技有限公司；Cy3-dCTP：25nmol，PA53021，Lot300989，Amersham Biosciences，UK；洗液Ⅰ：0.1％SDS 2×SSC；洗液Ⅱ：0.1％SDS 0.2×SSC；洗液Ⅲ：0.2×SSC；洗液4：双蒸水。 

仪器： 

超净工作台：SW-CJ-2FD，苏州安泰空气技术有限公司； 

超纯水仪：Milli Qplus，法国产； 

梯度PCR仪：P×2，Thermo hybaid，美国产； 

高速冷冻离心机3K18型：德国产； 

Mini-SUB凝胶电泳装置：意大利产； 

电泳仪:POWER Pac300，意大利产； 

凝胶电泳图像分析系统2000型：意大利产； 

恒温摇床：Thermo Forma，美国产； 

核酸蛋白检测仪：Bio-RAD，SmartSpaee TM 3010； 

分子杂交仪：Thermo，美国产； 

多样品围栏、多样品围栏粘贴工具、多样品围栏盖片，芯片杂交盒均为北京博奥生物公司； 

晶芯SmartArrayer^TM48，微阵列芯片点样系统：Capitalbio Corporation，北京博奥生物公司； 

晶芯LuxScan^TM10K微阵列芯片扫描仪：Capitalbio Corporation，北京博奥生物公司； 

真空机：SinBo，香港； 

CO₂恒温培养箱：Thermo，美国产。 

实施例1 本发明基因芯片的制备 

1、材料和仪器 

同前述实验材料和仪器。 

2、实验方法 

2.1PCR引物、检测探针的制备 

(1)设计病原特异性探针：通过对GenBnak中收录的猪流行性乙型脑炎病毒、猪繁殖与呼吸综合征病毒核酸序列对位排列分析，选定保守区域序列：JEV C、M、E、NS1、NS5；PRRSV 5’UTR、ORF1b、ORF5、ORF6、ORF7。针对保守序列设计检测探针，从中挑选出特异性强的探针序列。 

(2)设计探针序列的特异性引物：针对上述保守探针序列，利用生物信息学软件Primer5设计特异性引物。特异性引物由大连宝生物公司合成。 

(3)探针制备：用小量病毒/液体样本RNA/DNA抽提试剂盒提取猪流行性乙型脑炎病毒、猪繁殖与呼吸综合征病毒，利用上述特异性引物对三种病原核酸进行PCR扩增，纯化浓度测定。 

PCR扩增体系及条件： 

反应条件：l)94℃变性2min；2)94℃变性30S，50℃退火30S，72℃延伸30S，共35个循环；3)72℃延伸10min，4℃保持。 

(4)探针的筛选:将合成好的探针溶解并适量稀释后用基因芯片点样仪 点在氨基化玻璃基片上制成基因芯片，通过杂交试验进行探针筛选，最终得到用于制备本发明检测基因芯片所需的特异、灵敏的探针：JEV JEV-C(C)、Prm/M(M)；PRRSV PS9(5’UTR)、Y11(ORF6)。 

(5)探针基因组的建立：将胶回收纯化的JEV JEV-C(C)、Prm/M(M)；PRRSV PS9(5’UTR)、Y11(ORF6)用pMD 18-T Vector进行连接，连接体系为pMD 18-T Vector 0.5ul，胶回收探针5.0ul，连接液4.5ul，总量10.0ul。连接反应在16℃下进行16h；将10.0ul探针连接产物加入氯化钙法制备的200ul感受态细胞JM109中，轻轻混匀后冰浴30min，42℃热休克90s后立即放入冰浴中冷却5min，加入800ul LB液体培养基，37℃轻微振荡培养3h。取200ul培养物涂布于含有X--Gal、IPTG、含氨苄的LB琼脂平板培养基，37℃培养过夜，挑选白色菌落进行增菌培养及质粒PCR鉴定并送宝生物测序。 

(6)探针基因组的保存：将测序正确的质粒进行扩增培养，并用20％脱脂牛奶作为保护剂进行冻干，至于-80℃保存。 

引物和探针的核苷酸序列如下： 

SEQ ID NO：1(Prm/M) 

源基因来源：JEV SA14-14-2株 

基因大小及序列：451bp 

catcaacaac acggacattg cagacgttat cgtgattccc acctcaaaag gagagaacag atgctgggtc cgggcaatcg acgtcg gcta catgtgtgag gacactatca cgtacgaatg tcctaagctt accatgggca atgatccaga ggatgtggat tgctggtgtg acaaccaaga agtctacgtc caatatggac ggtgcacgcg gaccaggcat tccaagcgaa gcaggagatc cgtgtcggtc caaacacatg gggagagttc actagtgaat aaaaaagagg cttggctgga ttcaacgaaa gccacacgat atctcatgaa aactgagaac tggatcataa ggaatcctgg ctatgctttc ctggcggcgg tacttggctg gatgcttggc agtaacaacg gtcaacgcgt ggtatttacc atcctcctgc tgttggtcgc t 

SEQ ID NO：2(JEV-C) 

源基因来源：JEV SA14-14-2株 

基因大小及序列：238bp 

gcttgttgga cggcagaggg ccagtacgtt tcgtgctggc tcttatcacg ttcttcaagt 

ttacagcatt agccccgacc aaggcgcttt caggccgatg gaaagcagtg gaaaagagtg 

tggcaatgaa acatcttact agtttcaaac gagaacttgg aacactcatt gacgccgtga 

acaagcgggg cagaaagcaa aacaaaagag gaggaaatga aggctcaatc atgtggct 

SEQ ID NO：3(PS9) 

克隆基因的源基因来源：PRRS US,5'UTRPS9-primer,C14-2分离株基因大小及序列：174bp 

cgtataggtg ttggctctat gccttggcat ttgtattgtc aggagctgtg accattggca cagcccaaaa  cttgccgcac agaaacaccc ttctgtgata gcctccttca ggggagctta gggtttgtcc ctagcacctt gcttccggag ttgcactgct ttacggtctc tcca 

SEQ ID NO：4(Y11) 

源基因来源：C14-2分离株，ORF6，PRRS-US type 

基因大小及序列：155bp 

tcacctccag atgccgtttg tgcttgctag gccgcaagta cattctggcc cctgcccacc acgttgaaag tgccgcaggc tttcatccga ttgcggcaaa tgataaccac gcatttgtcg tccggcgtcc cggctccact acggtcaacg gcaca 

SEQ ID NO：5～6(Prm/M-primer) 

F 5’CATCAACAACACGGACATTGC3’ 

R 5’AGCGACCAACAGCAGGAG 3’ 

SEQ ID NO：7～8(JEV-C-primer) 

F 5’GCTTGTTGGACGGCAGAG3’ 

R 5’AGCCACATGATTGAGCCTTC3’ 

SEQ ID NO：9～10(PS9-primer) 

F 5’CGTATAGGTGTTGGCTCTATGC3’ 

R 5’TGGAGAGACCGTAAAGCAGTG3’ 

SEQ ID NO：11～12(Y11-primer) 

F 5’TCACCTCCAGATGCCGTTTG3’ 

R 5’TGTGCCGTTGACCGTAGTG3’ 

定位基因(λDNA)的序列(SEQ ID NO：13) 

SEQ ID NO：14～15(定位基因互补序列的扩增引物) 

F：AAAGCGACGCAATGAGGCACT 

R：GTTCCACGACCGCAACTGC 

2.2标准质粒的构建 

2.2.1基因组的抽提 

总RNA抽提采用天根的总RNA提取试剂盒，参照说明，具体操作方法如下： 

1)直接取200μL病毒尿囊液于1.5mL离心管中，加入600μL裂解液，充分振荡混匀； 

2)将匀浆样品在15-30℃放置5min； 

3)4℃，12000r/min离心5min，把上清液吸到新离心管中； 

4)加200μL氯仿，剧烈上下振荡15sec，室温静置3min； 

5)4℃，12000r/min离心10min，样品会产生分层，轻轻地将最上层无色的水相转到新管中； 

6)加0.5倍体积无水乙醇，混匀，转移到吸附柱内，4℃，12000r/min离心30sec； 

7)加500μL去蛋白液，4℃，12000r/min离心30sec； 

8)加600μL漂洗液，静置2min，4℃，12000r/min离心30sec；重复一次 

9)4℃，12000r/min离心2min，弃掉残余液体； 

10)将吸附柱转到RNase-Free离心管中，加50μL RNase-Free超纯水，室温静置2min，4℃，12000r/min离心2min。离心液即得到的病毒RNA，于-20℃下保存备用或直接进行反转录。 

2.2.2探针基因的RT-PCR及PCR扩增 

以抽提的RNA为模板，以Random 6primers为引物合成cDNA，反应体系如下： 

RT Enzyme Mix>0.5μL>Random 6primers>0.5μL>5×PrimeScript RT Buffer>2.0μL>RNA>2.0μL>RNase-Free超纯水>5.0μL>Total>10.0μL>

将上述体系混匀后按下面程序进行cDNA合成：反应程序为37℃，15min；85℃，5sec；4℃，保存。 

以反转录合成的cDNA为模板，进行PCR反应，反应体系如下： 

2×Taq PCR MasterMix>12.5μL>cDNA/DNA>2.0μL>上游特异性引物(25.0μmol/L)>0.5μL>下游特异性引物(25.0μmol/L)>0.5μL>超纯水>9.5μL>Total>25.0μL>

反应条件如下： 

PCR完毕后，分别取7μL扩增产物用琼脂糖凝胶进行电泳分析。 

2.2.3探针基因的胶回收 

探针基因的胶回收，采用OMEGA小量胶回收试剂盒，参照说明进行回收操作，步骤如下： 

1)取20μLPCR产物进行电泳，6V/cm，25min，紫外灯下切胶，称重。按照试剂盒说明进行胶回收； 

2)按1:1的比例加入Binding Buffer(XP2)，55℃-60℃水浴直到胶全部融化，期间每隔2-3min上下颠倒离心管； 

3)将液体加入吸附柱中，室温12000r/min离心1min，倒掉滤液； 

4)加入300Binding Buffer(XP2)，室温12000r/min离心1min，倒掉滤液； 

5)加入700mL漂洗液SPW，室温12000r/min离心1min，倒掉滤液； 

6)室温12000r/min空离2min，倒掉滤液； 

7)将吸附柱放于新离心管中，加入30mL洗脱缓冲液，室温静置1min； 

8)室温12000r/min离心2min，取7μL回收产物进行电泳，验证回收效果，其余回收产物于-20℃保存备用。 

2.2.4探针基因的连接重组 

采用pMD19-T Simple Vector克隆试剂盒，进行探针基因的连接重组，具体步骤按说明进行。连接体系如下： 

pMD19-T Simple载体>0.5μL>胶回收PCR产物>5.0μL>Solution I>4.5μL>Total>10.0μL>

4℃连接过夜，连接产物用于转化DH5α感受态细胞。 

2.2.5感受态细胞的制备及保存 

参考《分子克隆实验指南》氯化钙法^[56]制备DH5α感受态细胞，制备好的感受态细胞分装为100μL/管，直接用于转化或于-70℃保存。 

2.2.6连接产物的转化 

将100μL感受细胞放在冰上，向其中加10μL连接产物，冰浴30min；42℃水浴热休克90s，快速冰浴冷却5min；立即加入600μL 37℃预热的LB液体培养基(无需冰上操作)，37℃，150r/min振荡培养1h，使受体菌恢复正常生长状态；取150μL培养物均匀涂布于LB平板(含100mg/mL Amp)，晾干，于37℃培养约12h，挑取菌落进行鉴定。 

2.2.7探针质粒菌的鉴定及保存 

2.2.7.1探针质粒菌的DNA抽提 

将阳性质粒菌接种于5mL LB(含100mg/mL Amp)液体培养基中，37℃振荡培养12h；按Omega小量质粒提取试剂盒说明方法提取质粒。具体步骤如下： 

1)吸1mL菌液到离心管中，室温12000r/min离心1min，吸弃上清； 

2)加入250μL Solution I(4℃储存)，振荡使菌体悬浮； 

3)加入250μL Solution II，轻轻地颠倒混匀，静置2min； 

4)加入350μL Solution III，温和颠倒数次至形成白色絮状沉淀物，室温12000r/min，离心10min； 

5)将上一步的液体转入吸附柱中，室温12000r/min离心1min，倒掉滤液； 

6)向其加500μL Buffer HB，室温12000r/min离心1min，倒掉滤液； 

7)向其加700μL Buffer Wash Buffer，室温12000r/min离心1min，倒掉滤液；重复一次； 

8)室温12000r/min空离2min，将柱子装于一个干净的离心管中，向其加30μL Elution Buffer，静置2min，12000r/min离心1min，收集的离心液即为提取的质粒DNA。 

2.3.7.2探针质粒菌的PCR鉴定 

对提取的探针质粒菌分别进行PCR鉴定，同时以pMD19-T Simple空白载体作阴性对照，反应体系如下： 

2×Taq PCR MasterMix>7.5μL>上游特异性引物(25.0μmol/L)>0.5μL>下游特异性引物(25.0μmol/L)>0.5μL>质粒(50倍稀释)>2.0μL>超纯水>4.5μL>Total>15.0μL>

反应程序同上。反应完毕，分别取5μL于2.0％的琼脂糖凝胶进行电泳分析。 

2.2.8探针质粒菌的序列测定和分析 

采用Sanger双脱氧末端终止法对经过PCR鉴定为阳性的探针质粒菌进行序列测定，序列测定工作交由上海杰李生物技术有限公司完成。 

得测序正确的质粒菌T/Prm/M、T/JEV-C、T/PS9、T/Yll，分别包含SEQ ID NO：1(Prm/M)、SEQ ID NO：2(JEV-C)、SEQ ID NO：3(PS9)、SEQ ID NO：4(Yll)所述基因片段。 

2.2.9探针质粒菌的保存 

把序列测定正确的探针质粒菌扩大培养，然后以20％脱脂奶粉作为保护剂冻干，-70℃保存。 

2.3芯片制备 

(1)芯片矩阵的设计：每张芯片分为四个区，四个区为四个重复阵列，用杂交围栏隔开，以便同时进行三个不同样本的杂交反应。每个阵列参数为：每排探针基因和定位基因均为12个样点，各样点中心间距650um，样点直径为220um。(图1) 

基因芯片点样缓冲液配制成点样液，将包括猪流行性乙型脑炎病毒、猪繁殖与呼吸综合征病毒RNA探针、定位基因及阴性质控基因定量至使用浓度即为200ng/ul，加热至95℃保持5min，然后置于冰上冷却10min。 

按芯片设计要求在96(384)孔载样板孔内加入稀释变性好的包括猪流行性乙型脑炎病毒、猪繁殖与呼吸综合征病毒RNA探针、定位基因、阴性质控基因及空白质控缓冲液，封住孔板，用基因芯片点样系统(Microarray Printing System，SpotArrayTM 24)在氨基化基片上接触式点样。点样环境相对湿度为55％-65％，温度15-30℃。 

点制好的芯片静置于点样仪上充分干燥过夜(至少6h)，然后用60-80℃水合处理10s，立即于加热至80℃原位PCR仪上烘干，紫外线交联25min后，以0.2％SDS液洗涤5min，再以蒸馏水快速洗涤后离心干燥，密封、室温保存备用。 

实施例2本发明检测方法 

1、核酸抽提 

天根的总RNA提取试剂盒，参照说明书操作，具体步骤如下： 

1)用剪刀剪适当大小的组织病料于研钵中，加入适量RZ裂解液，研磨至匀浆，取300μl于1.5ml EP管，每50-100mg组织加1ml RZ裂解液RZ，样品体积不应超过裂解液RZ体积的十分之一。 

2)将匀浆样品在15-30℃放置5min； 

3)4℃，12000r/min离心5min，取上清，转入一个新的无RNase的离心管中； 

4)加200μL氯仿，剧烈上下振荡15sec，室温静置3min； 

5)4℃，12000r/min离心10min，样品会分三层，轻轻地将最上层无色的水相转到新管中； 

6)缓慢加0.5倍体积无水乙醇，混匀后转移至吸附柱CR3内，4℃，12000r/min离心30sec； 

7)向吸附柱CR3中加500μL去蛋白液，4℃，12000r/min离心30sec，弃废液； 

8)向吸附柱CR3中加600μL漂洗液，静置2min，4℃，12000r/min离心30sec，弃废液；重复一次 

9)4℃，12000r/min离心2min，弃掉残余液体，开盖晾干5min； 

10)将吸附柱CR3转入到RNase-Free离心管中，加50μL RNase-Free超纯水，室温静置2min，4℃，12000r/min离心2min。离心液即得到的病毒RNA，于-70℃保存备用或直接进行反转录。 

将提取的产物用TAKARA反转录试剂盒说明书反转录进行，具体体系如下： 

RT Enzyme Mix>0.5μL>Random 6primers>0.5μL>5×PrimeScript RT Buffer>2.0μL>RNA>2.0μL>RNase-Free超纯水>5.0μL>Total>10.0μL>

将上述体系混匀后设置下面程序进行cDNA合成：反应程序为37℃，15min；85℃，5sec；4℃，保存。 

2、PCR扩增标记 

2.1核酸样本的标记 

引物标记法与掺入标记法 

以λDNA、各探针基因重组质粒为模板，分别加入荧光素Cy3标记修饰的引物进行PCR扩增，扩增体系如下： 

10×Ex buffer(Free Mg²⁺)>5.0ul>25mmol/LMgC1₂4.0ul>10.0mmol/L dNTP Mixture>4.0ul>5U/uL Ex Taq>0.5ul>5’端Cy3标记的上游引物>1ul>5’端Cy3标记的下游引物>1ul>cDNA模板>2ul>dH₂O>加至50ul>

扩增条件为：l)94℃变性3min；2)94℃变性30s，58℃退火30s，72℃延伸30s，共35个循环；3)72℃延伸10min，12℃保持。 

2.2基因芯片的不对称标记技术 

(1)不对称PCR引物浓度的确定 

以构建的阳性质粒T/Prm/M、T/JEV-C、T/PS9、T/Y11为模板，用ddH₂O将未进行荧光标记的引物(即上游引物)进行稀释，使得R：F浓度比分别为1︰1、5︰1、10︰1、20︰1、40:1、50︰1、60:1、80:1，T/Prm/M、T/JEV-C、T/PS9、T/Y11为模板的不对称PCR梯度分别记作X1-X6、x1-x6、Z1-Z9、z1-z6。以实验室制备的阳性质粒稀释50倍作为模板。用浓度不同的引物分别进行PCR扩增，反应体系为： 

10×Ex buffer(Free Mg²⁺)>2.5.0ul>25mmol/LMgC1₂2.0ul>10.0mmol/L dNTP Mixture>2.0ul>5U/uL Ex Taq>0.3ul>非荧光标记的上游引物>1ul>5’端Cy3标记的下游引物>1ul>cDNA模板>1ul>dH₂O>加至25ul>

PCR扩增程序按照步骤2.1进行，对照样品λDNA荧光标记反应体系与程序同上参照步骤2.1进行(每种浓度25ul体系平行做3管)。 

不对称PCR扩增产物，经95℃后，与杂交缓冲液混合，取该混合液20-40ul加到芯片区，在48℃杂交温度下与制备好的芯片杂交6h时间。杂交完毕后，进行芯片洗涤，甩干、扫描。以λDNA为标准品对照，试验中同一基因选择同批次制备的芯片，每种浓度平行做3张。应用不对称PCR技术对样品进行标记后，芯片的杂交效率有所提高。 

如图2～5所示，本发明实施例中，Prm/M、JEV-C、PS9、Y11基因片段 的反向引物和正向标记引物比例分别为50:1(图2)、40:1(图3)、20:1(图4)、10:1(图5)，在该条件下进行不对称PCR扩增，杂交检测信号值和信噪比为最强。 

因此，本发明试剂盒中，Prm/M、JEV-C、PS9、Y11基因片段的反向引物和正向标记引物摩尔比优选为50:1、40:1、20:1、10:1。 

3、基因芯片检测 

采用实施例1的基因芯片进行检测。 

芯片的预杂交：取制备保存的DNA微阵列，95-100℃双蒸水中变性1-2min.其间上下抽提以免在玻片表面形成气泡，立即置预冷的95％乙醇中快速冷却后离心干燥，将微阵列置于杂交舱中，于微阵列检测区加入预杂交液25ul，将盖玻片轻放其上，以免形成气泡，使预杂交液均匀覆盖微阵列检测区，将芯片置于密封的湿盒内于44℃下预杂交lh。 

芯片的杂交：吸除预杂交液，利用不对称PCR标记扩增的核酸样品于95℃变性5min后，立即置冰中冷却3min，再与一定量预冷的杂交缓冲液混匀，取该混合液50ul加到微阵列检测区，以盖玻片轻放其上，将微阵列放入杂交舱内于一湿盒内避光杂交，于40、44、48、52℃杂交温度下杂交1、2、3、4、5、6h时间。结果显示，在48℃杂交温度下杂交3h杂交时间条件最优。 

共检芯片的洗涤干操：杂交完毕后，轻轻移去芯片的盖玻片，将芯片放置在玻片架上，立即用温热的洗液1、洗液2、洗液3、洗液4、洗液5分析洗涤5min，.离心干燥后扫描分析。洗涤过程在暗示中完成。 

扫描分析离心干燥的共检芯片用基因芯片扫描仪4000扫描检测。扫描参数为Laserpower 95％，PMT550，分辨率10um，扫描结果以16位TIFF和BMP格式保存图像。 

数据输出与处理：根据结果判定样品的阴阳性。 

实施例3特异性试验 

一、试验方法 

采用实施例1制备的基因芯片，按照实施例2的方法(Prm/M、JEV-C、PS9、Y11的反向引物和正向标记引物摩尔比为50:1、40:1、20:1、10:1，杂交温度为48℃，杂交时间为3h)，检测JEV、PRRSV、PPV、PCV-2，以验证本发明基因芯片和试剂盒的特异性。 

二、结果 

实验结果如图6所示，本发明方法可以分别或者同时有效检出PRRSV、JEV，而不会检出其他病毒，如，PPV、PCV-2。 

实验结果说明，本发明试剂盒和基因芯片的特异性强，不会检出其他病 毒。 

实施例4灵敏度试验 

一、试验方法 

取实施例1制备的4种质粒，核酸蛋白仪测定各质粒的OD₂₆₀，换算成DNA的拷贝数，分别作10¹、10²、10³、10⁴、10⁵、10⁶、10⁷、10⁸、10⁹倍比稀释后，采用实施例1制备的基因芯片，按照实施例2的方法检测(Prm/M、JEV-C、PS9、Y11的反向引物和正向标记引物摩尔比为50:1、40:1、80:1、80:1、20:1、10:1，杂交温度为48℃，杂交时间为3h)。 

二、结果 

结果如表1～2所示： 

表1 基因芯片敏感性检测结果 

表2 基因芯片敏感性检测结果 

可以看出，当质粒稀释至10³倍时，信噪比开始下降，当稀释到10⁸倍时，眼观杂交斑点微弱，但仍检测到荧光信号大于1000，此时，模板的浓度分别为：T/Yll，2.20×10⁴copies/ul；T/PS9，3.54×10⁴copies/μL；T/Prm/M，4.25×10⁴copies/μL；T/JEV-C，3.62×10⁴copies/μL，说明PRRSV、JEV的最低检测浓度均为10⁴copies/ul。 

实验结果说明，采用本发明试剂盒和基因芯片检测，PRRSV、JEV的最低检测浓度均为10⁴copies/ul，灵敏度高。 

实施例5 稳定性试验 

以病原JEV的阳性样品各3分，阴性样品各1份，提取核酸后反转录为cDNA，以cDNA为模板进行不对称PCR扩增，扩增的荧光标记产物与芯片进行杂交，在同一试验中进行5次芯片杂交检测的批内重复试验，在不同时间(间隔15天)进行芯片杂交的批间重复试验。 

结果3种病毒的批内重复试验的平均变异系数CV值(CV＝σ/μ)小于5.0％，批间重复性小于10.0％，具有良好的批内和批间重复性。 

实验结果说明，本发明试剂盒和基因芯片的稳定性好。 

实施例6 采用本发明基因芯片检测病料 

一、检测方法 

1、病料的采取与预处理： 

1)病料的采取：采集临床送检的猪繁殖与呼吸综合征发病猪各3头(已测定含相应的病毒，本实验室保存)，采集部位包括肺、脾、肾、心、肝、淋巴结等组织。 

2)病料的预处理：器脏组织的处理：将采集的病料用灭菌PBS研磨，加入终浓度1000单位/ml的双抗，37℃下作用30分钟，反复冻融3次并用超声波处理，离心，上清液加体积分数50％氯仿作用15分钟，期间不停振摇，离心，取上清用0.45um微孔滤膜过滤，-20℃保存。 

2、从186份临床样本中随机抽取50份，采用实施例1制备的基因芯片，按照实施例2的方法检测(Prm/M、JEV-C、Erns、CSF1、PS9、Y11的反向引物和正向标记引物摩尔比为50:1、40:1、80:1、80:1、20:1、10:1，杂交温度为48℃，杂交时间为3h)。 

二、检测结果 

表3 猪乙型脑炎病毒单一感染 

样品>microarrays>流产胎儿样>4/10>蚊虫样品>4/10>总检出率>40％(8/20)>

表4 猪繁殖与呼吸综合征病毒单一感染 

样品>microarrays>肺>9/10>淋巴结>7/10>总检出率>80％(15/20)>

表5 混合感染 

类别>microarrays>检出率>PRRSV+JEV>0>0>

采用试剂盒和基因芯片，20份样品中，流行性乙型脑炎样品的总检出率为40％；20份样品中，猪繁殖与呼吸综合征的总检出率为80％；10份样品 中，两种病毒的混合感染的检出率为0。 

实验结果说明，本发明试剂盒和基因芯片可以有效检测猪流行性乙型脑炎病毒和猪繁殖与呼吸综合征病毒。 

综上，本发明试剂盒和基因芯片可以有效检测猪流行性乙型脑炎病毒和猪繁殖与呼吸综合征病毒，特异性强、敏感性高、耗时短，检测快速，具有良好的应用前景。