法律状态公告日
法律状态信息
法律状态
2017-03-29
授权
授权
2014-12-17
实质审查的生效 IPC(主分类):C12N15/11 申请日:20140808
实质审查的生效
2014-11-19
公开
公开
技术领域
本发明属于食品技术领域,涉及猪肉DNA溯源的SNP分子标记即单核苷酸多态性标记, 具体涉及利用HRM法即高分辨率熔解曲线分析方法进行猪肉DNA溯源的方法。
背景技术
随着人们生活水平的提高,食品的安全性越来越受到人们的关注。肉制品作为人类食物 中蛋白质的主要来源,其安全性自然也备受关注,溯源技术越来越成为肉品安全保障和监管 的重要手段。
肉类食品溯源的技术方法有很多,如标签溯源技术、虹膜溯源技术和DNA溯源技术等。 与其他溯源技术相比,DNA溯源技术具有易分型、便于规模化自动化检测等优点。它不仅可 以对活体动物进行溯源,还可以对胴体分割后的每一块肉,甚至是经过加工后的熟肉进行溯 源,能够真正的做到从生产到餐桌的全程溯源。可以大大强化政府部门的肉品质量安全监管, 提供有用的信息处理食品安全应急事件,将有助于社会的稳定。
DNA溯源技术的产生源于DNA的遗传与变异。它是通过分析特定的DNA分子标记, 获得动物个体的DNA指纹图谱从而达到鉴别个体、品种或是物种的目的。本研究选取了第 三代分子标记——SNPs标记(单核苷酸多态性标记)。目前,国内外相关的研究中,对于SNPs 标记的检测,主要采用两种方法,RFLP-PCR法和TaqMan探针法。但是RFLP-PCR法检测 时间长,TaqMan探针法检测费用高的缺点,这成为了DNA溯源技术广泛应用的一个障碍。 因此,若能找到一种简单、快捷、低成本的检测方法,来代替这两种检测方法,将有助于DNA 溯源技术的大规模推广。
发明内容
本发明的目的在于解决现有技术中,猪肉DNA溯源方法操作复杂,检测周期长,成本高 等问题,通过HRM法即高分辨率熔解曲线分析方法检测取自猪肉的SNPs分子标记,达到快速 准确检测猪肉来源的目的。
本发明的目的通过以下方法获得
本发明提供一种用于猪肉DNA溯源的SNP分子标记,分别为:
SNP1:序列如SEQ ID NO.1所示,等位基因突变位点为:A/G;
SNP2:序列如SEQ ID NO.2所示,等位基因突变位点为:C/T;
SNP3:序列如SEQ ID NO.3所示,等位基因突变位点为:C/G;
SNP4:序列如SEQ ID NO.4所示,等位基因突变位点为:A/G
SNP5:序列如SEQ ID NO.5所示,等位基因突变位点为:C/T
SNP6:序列如SEQ ID NO.6所示,等位基因突变位点为:A/G
SNP7:序列如SEQ ID NO.7所示,等位基因突变位点为:A/G
SNP8:序列如SEQ ID NO.8所示,等位基因突变位点为:A/G
SNP9:序列如SEQ ID NO.9所示,等位基因突变位点为:A/G
SNP10:序列如SEQ ID NO.10所示,等位基因突变位点为:A/G
序列表中的n分别代表各个分子标记的突变位点。
本发明还提供一种利用HRM法进行猪肉DNA溯源的方法,包括如下步骤:
1)从已发表文献或NCBI中选取SNPs位点,其中,SNPs位点应满足以下要求:A.任意 相邻的SNP间的距离≥1Mb,保证SNPs间相互独立,不存在连锁现象;B.任意SNP位点与 其他SNP位点不存在任何关联;3)SNP侧翼序列不存在任何变异;
2)取猪肉、猪血或猪毛发样品≥299个,提取其DNA;
3)根据选取的SNPs位点,设计引物,利用HRM法对每个样品进行SNPs位点基因型 分析;计算出每个单核苷酸多态性SNP的等位基因频率及杂合度;
4)记录每一样品的SNPs位点信息;
5)后期,选择的步骤2)中的猪有问题,将有问题的猪肉按照步骤2)到4)的方法,对 作为DNA溯源的SNPs位点进行检测;
6)将步骤5)得到的SNPs位点信息与步骤4)中记录的信息进行对比;
7)根据溯源标记的SNPs的特征信息追溯猪肉来源。
其中,步骤1)中选择的文献为Rohrer G A,Freking B A,Nonneman D.Single nucleotide polymorphisms for pig identification and parentage exclusion[J].Animal Genetics,2007,38(3): 253-258.
SNPs位点均为猪DNA基因组中的突变位点;猪肉、猪血或者猪毛的样品均取自不同猪 体,即每头猪身上要么取猪肉要么取猪血要么取猪毛发,猪样品均取自江苏淮安苏食屠宰场。 当然,本发明所用的猪肉样品的来源并无限制,任何需要进行跟踪溯源的猪肉都可以作为检 测样品,记录其SNPs位点信息,从而对猪肉样品进行溯源追踪,检测其质量。
利用HRM法对每个样品进行SNPs位点基因型分析指的是利用设计好的测序引物在实时 荧光PCR扩增仪上进行荧光PCR扩增,通过获得的熔解曲线,进行分析从而得到每个样品 的每个SNP位点的基因型。本发明只提供10个SNP位点,即每个样品将获得10个SNP位 点的基因型。
步骤6)中的SNPs位点信息指的是该猪肉样品中,在步骤1)中选择的10个SNP位点 上的基因型。
3.上述2提供的利用HRM法进行猪肉DNA溯源的方法,其中,步骤3)中所用引物分别为:
SNP1:上游引物snp1-f如SEQ ID NO.11所示;下游引物snp1-r如SEQ ID NO.12所示;
SNP2:上游引物snp2-f如SEQ ID NO.13所示;下游引物snp2-r如SEQ ID NO.14所示;
SNP3:上游引物snp3-f如SEQ ID NO.15所示;下游引物snp3-r如SEQ ID NO.16所示;
SNP4:上游引物snp4-f如SEQ ID NO.17所示;下游引物snp4-r如SEQ ID NO.18所示;
SNP5:上游引物snp5-f如SEQ ID NO.19所示;下游引物snp5-r如SEQ ID NO.20所示;
SNP6:上游引物snp6-f如SEQ ID NO.21所示;下游引物snp6-r如SEQ ID NO.22所示;
SNP7:上游引物snp7-f如SEQ ID NO.23所示;下游引物snp7-r如SEQ ID NO.24所示;
SNP8:上游引物snp8-f如SEQ ID NO.25所示;下游引物snp8-r如SEQ ID NO.26所示;
SNP9:上游引物snp9-f如SEQ ID NO.27所示;下游引物snp9-r如SEQ ID NO.28所示;
SNP10:上游引物snp10-f如SEQ ID NO.29所示;下游引物snp10-r如SEQ ID NO.30所 示。
4.上述3提供的利用HRM法进行猪肉DNA溯源的方法,其中,步骤3)中进行SNPs位点 基因型分析时,反应条件为:95℃热启动反应10min;95℃反应10s,touchdown程序20s,72℃ 反应20s,20s末收集单个荧光,共进行40个循环;95℃反应1min,60℃反应2min,同时收集 荧光信号,1个循环;60-95℃读取熔解曲线,20次/℃。
touchdown程序又叫递减程序。
5.上述4提供的利用HRM法进行猪肉DNA溯源的方法,其中,步骤3)中touchdown程序 为:
SNP1:64℃-56℃,每个循环下降0.5℃;
SNP2:65℃-56℃,每个循环下降0.5℃;
SNP3:65℃-56℃,每个循环下降0.5℃;
SNP4:64℃-54℃,每个循环下降0.5℃;
SNP5:65℃-56℃,每个循环下降0.5℃;
SNP6:64℃-54℃,每个循环下降0.5℃;
SNP7:64℃-54℃,每个循环下降0.5℃;
SNP8:62℃-52℃,每个循环下降0.5℃;
SNP9:64℃-54℃,每个循环下降0.5℃;
SNP10:62℃-52℃,每个循环下降0.5℃;
6.上述5提供的利用HRM法进行猪肉DNA溯源的方法,其中,步骤3)中计算每个单核 苷酸多态性SNP的公式为
根据个体的基因型计算等位基因频率,如位点1的299个样品中有AA型135个,AB型65个, BB型99个,则基因A的等位基因频率为:(2*135+1*65)/(299*2)=0.56;基因B的等位基因频 率为(2*99+1*65)/(299*2)=0.44,位点1的基因杂合度则为1-0.56*0.56-0.44*0.44=0.4928。如 此,得到SNP位点基因杂合度的通用计算公式。
7.本发明还提供上述SNP分子标记在猪肉检测中的应用。
本发明具有如下优点:
1.本发明选择的SNPs分子标记的杂合度均至少是0.4,基因多态性较高,适合应用于猪 肉的DNA溯源中,尤其是其中的SNP1、SNP6、SNP7和SNP8的基因杂合度均在0.49以上, 十分适合应用于DNA溯源中。
2.本发明通过HRM法获得SNPs分子标记的方法,具有快速、简便的特点,整个过程仅 需2个小时完成,而传统的RFLP-PCR法检测时间长,通常需要20个小时。HRM法不需要 合成探针,在PCR结束后直接通过荧光强度与时间曲线获得SNP分子标记,具有快速、准 确、简便的特点。相较TaqMan探针法检测法每个样品检测费用(平均每个样品为5元),HRM 法平均每个样品为2.5元,检测成本较低。因此,本发明是一种简单、快捷、低成本的检测 方法,来代替上述两种检测方法,将有助于DNA溯源技术的大规模推广。
3.利用本发明获得的SNPs分子标记对猪肉DNA进行溯源检测,从猪生长开始进行标识, 可以使其从屠宰、加工和销售过程都达到可检测状态,从而可以随时快速对猪肉质量进行监 控,达到连续动态的目的,为今后食品安全监控系统建立提供基础。
4.每个SNP分子标记,理论上可以检测3个基因型样品,那么,有n个SNP分子标记, 理论上能够检测3n个样品。本发明提供10个可检测的SNP分子标记,理论上可以检测310样品,满足了一批猪肉样品的溯源追踪。并且,通过本发明提供的方法,为今后大规模利用 SNPs分子标记对猪肉DNA溯源奠定了基础。
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明。
实施例1:
(1)SNPs位点的选取
从NCBI上选取SNPs位点,保证①任意相邻的SNP间的距离≥1Mb,保证SNPs间相互 独立,不存在连锁现象;②任意SNP位点与其他分子标记不存在任何关联;③SNPs侧翼序列 不存在任何变异。本研究中选取的SNPs位点见表1。
表1 SNP位点相关信息
如表1所示,选择的10个SNP位点,SNP1位于猪基因组1号染色体,SNP2位于猪基 因组2号染色体,SNP3位于猪基因组12号染色体,SNP4位于猪基因组14号染色体,SNP5 位于猪基因组3号染色体,SNP6位于猪基因组13号染色体,SNP7位于猪基因组17号染色 体,SNP8位于猪基因组8号染色体,SNP9位于猪基因组6号染色体,SNP10位于猪基因组 10号染色体,由此可见,该10个SNP位点均位于猪不同染色体上,保证了彼此独立,不存 在发生连锁反应。等位基因位点表示各个SNP位点的突变基因,具体位置见序列表。其中, SNP1的序列如SEQ ID NO.1;SNP2的序列如SEQ ID NO.2所示;SNP3的序列如SEQ ID NO. 3所示;SNP4的序列如SEQ ID NO.4所示;SNP5的序列如SEQ ID NO.5所示;SNP6的序 列如SEQ ID NO.6所示;SNP7的序列如SEQ ID NO.7所示; SNP8的序列如SEQ ID NO.8所示;SNP9的序列如SEQ ID NO.9所示;SNP10的序列如SEQ ID NO.10所示。
2)猪的DNA样品制备
采集299个猪样品,其中,血样155份,肉样144份;肉样每份采集刚宰杀的猪胴体肌 肉组织5g,标准抗凝血管收集血样,每份样品准确进行编号。用天根试剂盒法从猪的肌肉、 血液提取其总DNA,并经紫外分光光度计检测后稀释,保证每份样品中DNA的浓度为 18ng/ul。
3)HRM法即高分辨率熔解曲线法检测
根据选取的SNPs分子上下游序列的信息,设计HRM法检测的引物。本发明中所用的引 物信息见表2,由生工生物(上海)有限公司合成。
表2 HRM法检测的引物信息
其中,长度指的是经过PCR扩增后的核苷酸序列。
实时荧光PCR反应条件见表3:
表3 HRM法PCR反应体系
Evagreen qPCR Master Mix是一种荧光定量PCR中使用的DNA结合染料。
实时荧光PCR反应条件为:95℃热启动反应10min;95℃反应10s,touchdown程序20s, 72℃反应20s,20s末收集单个荧光,共进行40个循环;95℃反应1min,60℃反应2min,同 时收集荧光信号,1个循环;60-95℃读取熔解曲线,20次/℃
其中,touchdown程序为:
SNP1:64℃-56℃,每个循环下降0.5℃;
SNP2:65℃-56℃,每个循环下降0.5℃;
SNP3:65℃-56℃,每个循环下降0.5℃;
SNP4:64℃-54℃,每个循环下降0.5℃;
SNP5:65℃-56℃,每个循环下降0.5℃;
SNP6:64℃-54℃,每个循环下降0.5℃;
SNP7:64℃-54℃,每个循环下降0.5℃;
SNP8:62℃-52℃,每个循环下降0.5℃;
SNP9:64℃-54℃,每个循环下降0.5℃;
SNP10:62℃-52℃,每个循环下降0.5℃。
4)基因杂合度分析
利用提取的猪DNA样品对选取的位点进行基因杂合度分析。基因杂合度大于0.3的位点 即可应用于猪肉的DNA溯源中。基因杂合度越接近于0.5,说明该位点的基因多态性越丰富, 也就越适合应用于DNA溯源中。本研究选取了299个样品对10个SNP位点进行了杂合度分 析。基因杂合度的计算公式如下:
根据公式个体的基因型计算等位基因频率,如位点1的299个样品中有AA型135个, AB型65个,BB型99个,则基因A的等位基因频率为:(2*135+1*65)/(299*2)=0.56;基 因B的等位基因频率为(2*99+1*65)/(299*2)=0.44,位点1的基因杂合度则为 1-0.56*0.56-0.44*0.44=0.4928。如此,得到SNP位点基因杂合度的通用计算公式 计算结果详见表4。SNP1分子中的突变位点中1代表纯合子AA型,2代 表杂合子AG型,3代表纯合子GG型,该突变位点的基因杂合度为0.4975;SNP2分子突变 位点中1代表纯合子TT型,2代表杂合子CT型,3代表纯合子CC型,该突变位点的基因 杂合度为0.4805;SNP3分子中突变位点1代表纯合子CC型,2代表杂合子CG型,3代表 纯合子GG型,该突变位点的基因杂合度为0.4527;SNP4分子中突变位点1代表纯合子AG 型,2代表杂合子AA型,3代表纯合子GG型,该突变位点的基因杂合度为0.4250;SNP5 分子中突变位点中1代表纯合子CC型,2代表杂合子CT型,3代表纯合子TT型,该突变 位点的基因杂合度为0.4799;SNP6分子中突变位点1代表杂合子AG型,2代表杂合子GG 型,3代表纯合子AA型,该突变位点的基因杂合度为0.4996;SNP7分子中突变位点1代表 杂合子AG型,2代表纯合子GG型,3代表纯合子AA型,该突变位点的基因杂合度为0.4962; SNP8分子中突变位点1代表纯合子GG型,2代表杂合子AG型,3代表纯合子AA型,该 突变位点的基因杂合度为0.4999;SNP9分子突变位点1代表纯合子AA型,2代表纯合子 GG型,3代表杂合子AG型,该突变位点的基因杂合度为0.4026;SNP10分子中突变位点1 代表纯合子GG型,2代表杂合子AG型,3代表纯合子AA型,该位点的基因杂合度为0.4831。 等位基因1分别表示1所代表基因型的基因频率,等位基因2分别表示2所代表基因型的基 因频率。
表4 各位点基因杂合度信息
从计算结果可以看出10个SNP位点的基因杂合度均在0.4以上,其中SNP1、SNP6、SNP7 和SNP8的基因杂合度均在0.49以上,十分适合应用于DNA溯源。而SNP9的基因杂合度仅 为0.40,相对来说,比其他位点低,但仍可用于猪肉的DNA溯源中。
本试验利用HRM法检测技术对299个样品的10个SNP标记分别进行了检测。在这些样 品中有个别样品的个别位点没能检测到相应的基因型,这些样品为SNP1位点的样品47,SNP4 位点的样品284和样品289,SNP6位点的样品241和样品282。造成这种结果的原因可能是 由于提取的DNA不够完整或是DNA浓度过低所引起的,此外也有可能是由于在采样或是提 取过程中造成了交叉污染,使得无法检测出样品的基因型。其余各位点各样品的基因型如表 5所示。从表5中可以看出,除上述已经说明的个别情况外,选取的299个样品中,均检测 到各SNP突变位点中存在的基因型。说明选择的10个SNP分子标记稳定广泛的存在于猪基 因组DNA中。利用选择的10个SNP分子标记记录在养殖生产中各头猪的基因型,获得基因 信息,利用HRM法快速获得相应待检测猪样品中的10个SNP位点的基因型,从而能快速实 时监测猪肉动态,保证猪肉安全质量。
实施例2:
1)猪DNA样品制备
选择上述299个样品中的1、2、5、6、30、31、40、48、49、53号的新鲜猪肉个体, 在实施例1采集猪肌肉组织和血液的同时,于此10个猪个体上切取带猪毛的猪皮样本10个, 记录每个样本的个体编号,标记样本,并打乱待检测样本。
从每份样品的猪皮上拔取带有完整毛囊的猪毛15根,尽量剪短只剩下毛囊的部分,放 入干净的1.5ml离心管中,加入200ulDNA裂解液及蛋白酶K10ul,充分混匀。56℃消化2h, 期间用手指轻弹样品以加速消化过程。加入5mol/L NaCl60ul,充分混匀;加入饱和酚/氯仿/ 异戊醇(25:24:1)260ul,颠倒混匀5min,使蛋白质充分变性,1000r/min离心5min,取上清 液于另一新离心管中,加入2倍上清液体积的冰乙醇,轻轻颠倒混匀5min,置于冰上静置 30min,使DNA成沉淀析出,1200r/min离心5min,使DNA沉淀至离心管管底,弃掉上清液。 将沉淀用乙醇70%漂洗2此,吸除剩余乙醇,自然晾干得DNA,溶于50ul的TE缓冲液中, -20℃保存。
2)HRM法检测
选择实施例1中的10个SNP检测位点作为分子标记,进行HRM法检测。实时荧光PCR 反应体系和过程同实施例1。
3)记录每一个样品的10个SNP位点信息。与表4中获得的299样品中的10个SNP位 点基因型进行比较,确定每个样品对应的个体编号,与采样时记录的样品对应的个体编号进 行比较,检验结果相一致。即通过HRM法检测样品,确定的样品号为1、2、5、6、30、31、 40、48、49、53号,对应的样品在采集过程中的个体编号为1、2、5、6、30、31、40、48、 49、53号。检测结果准确,用HRM法可有效进行猪肉DNA溯源。
本实验共选取10个SNP检测位点,理论上可以检测310个个体,当一批待监控的猪个 体数>310个时,可以按照本发明提供的方法选择SNP检测位点个数>10个。
表5 选择的299样品中对于10个SNP位点的基因型。
可以知道,上述实施例仅为了说明发明原理而采用的示例性实施方式,然而本发明不仅 限于此,本领域技术人员在不脱离本发明实质情况下,可以做出各种改进和变更,这些改进 和变更也属于本发明的保护范围。
机译: PNA DNA SNP方法用PNA探针和熔解曲线分析法分析线粒体DNA的SNP
机译: PNA探针和熔解曲线分析法分析线粒体DNA的SNP
机译: DNA标记物,用于检测特定于肌肉的MICRORNA-208B区域中利用SNPS改善猪肉品质的方法