公开/公告号CN103740728A
专利类型发明专利
公开/公告日2014-04-23
原文格式PDF
申请/专利权人 中国人民武装警察部队后勤学院;
申请/专利号CN201310755745.4
申请日2013-12-30
分类号C12N15/12;C07K14/47;C07K16/18;
代理机构天津市北洋有限责任专利代理事务所;
代理人陆艺
地址 300309 天津市东丽区津汉路汇智环路1号
入库时间 2024-02-19 22:44:42
法律状态公告日
法律状态信息
法律状态
2018-02-16
未缴年费专利权终止 IPC(主分类):C12N15/12 授权公告日:20160817 终止日期:20161230 申请日:20131230
专利权的终止
2016-08-17
授权
授权
2014-05-21
实质审查的生效 IPC(主分类):C12N15/12 申请日:20131230
实质审查的生效
2014-04-23
公开
公开
技术领域
本发明属于基因工程领域,特别是涉及一种改造的基因及其表达和应用。
背景技术
动脉粥样硬化(atherosclerosis,AS)是严重危害人类健康的常见病,是缺血性心脑血管 疾病的重要病理基础。AS斑块的主要特征是病灶中细胞内及细胞外脂质聚集、单核/巨噬细 胞浸润、泡沫细胞形成、主动脉平滑肌增生以及结缔组织成分聚集。近些年来,随着人们生 活方式和饮食结构的变化,AS所致的心脑血管疾病发病率在我国有上升趋势。AS是一种环 境因素与遗传因素所诱发的多基因病,目前还缺少十分有效的治疗措施。应用分子生物学技 术对心脑血管疾病患者和动物模型的大量研究,已经克隆出100多个AS相关基因,例如 apoAI、apoB、apoCI、apoCⅡ、apoCⅢ、LPL、LCAT、CEPT、ABBP-1、Ath-1、Ath-2、Ath-6 等等,并利用转基因及基因敲除动物证实它们的生理功能。然而,AS作为一种复杂的多基因 病,牵涉到一个庞大的基因调控网络,其发病机制至今尚未完全阐明,随着人类及各种模式 生物基因组序列测序的完成,未来一个重要的目标是阐明人体约3.5万个基因的功能。为了 有效防治AS,有必要深入研究与AS相关基因的功能。血浆低密度脂蛋白(low density lipoprotein,LDL)水平持续升高与动脉粥样硬化的发病率呈正相关,血管内皮细胞是AS形成 及发展的始动环节。张文成等人以致动脉粥样硬化因素LDL诱导人脐静脉内皮细胞系 ECV304,采用差异显示逆转录PCR技术进行分析,以差异表达的新ESTs为探针,筛选人主 动脉cDNA文库,得到一个全长为1726bp的新基因cDNA全长(Genbank注册号:AF184939), 该基因由人类基因命名委员会定名为ZNF580,ZNF580基因用SEQ ID NO.3所示。ZNF580 基因cDNA748-1266位碱基序列构成一个完整的开放阅读框架,该cDNA开放阅读框全长为 519bp,编码172个氨基酸组成的蛋白质,分子量约为18.7564kDa。经分子生物学网站进行 蛋白质的功能基序分析:其氨基端5-88位氨基酸序列为脯氨酸富含域,羧基端94-172位氨 基酸序列中含有三个串联重复的C2H2型锌指蛋白结构域,三个锌指符合C2H2型锌指蛋白 基序CX2CX3FX5LX2HX3H(其中X代表保守性差的氨基酸)。多组织Northern杂交证实 ZNF580基因在人多种组织中均有表达,其中在心肌、肾脏、胰腺组织中的表达量最高,大脑 表达次之,在胎盘、肝脏、骨骼肌、肺组织中表达量较低。LDL诱导内皮细胞使ZNF580基 因表达明显下调。ZNF580基因定位于人19号染色体19q13.42。将ZNF580编码区克隆到真 核表达载体pEGFP-C1上,转染人胚肾上皮细胞系HEK293、胃癌细胞系MGC803进行瞬时 表达,融合有绿色荧光蛋白EGFP的目的蛋白定位于细胞核。前期研究工作表明:ZNF580 基因编码一种与AS相关的具有调控作用的C2H2型锌指核蛋白转录因子。检索基因表达数 据库中有关ZNF580的相关信息显示,ZNF580受多条信号通路的调控,并通过调节靶基因的 开关或转录水平参与细胞增殖、分化与凋亡等过程。为了深入研究ZNF580蛋白在基因表达 调控及信号转导中的作用,有必要利用基因工程技术表达并纯化ZNF580蛋白,制备多克隆 抗体,从而为研究ZNF580基因的功能奠定基础。
经过研究发现,完全按照人ZNF580基因开放阅读框序列进行基因工程操作,人ZNF580 蛋白在原核中表达不出来。
发明内容
本发明的目的是克服现有技术存在的人ZNF580基因不能进行原核表达的不足,提供一 种能在原核中表达的稀有密码子改造的人ZNF580基因。
本发明的第二个目的是提供用稀有密码子改造的人ZNF580基因进行原核表达产生的 ZNF580蛋白。
本发明的第三个目的是提供用ZNF580蛋白制备的多克隆抗体。
本发明的技术方案概述如下:
稀有密码子改造的人ZNF580基因,是SEQ ID No.1所示。
用SEQ ID No.1所示基因进行原核表达产生的ZNF580蛋白,所述ZNF580蛋白氨基酸 序列由SEQ ID No.2所示,分子量约为18.7564kDa,等电点为10.13。
用ZNF580蛋白制备的多克隆抗体。
本发明的优点:
本发明改造了人ZNF580基因中的稀有密码子,得到稀有密码子改造的人ZNF580基因, 经实验证明改造的基因经原核表达,可以产生大量的ZNF580蛋白,因此解决了现有技术 ZNF580基因在原核中表达不出来的难题;成功地表达并纯化了人ZNF580蛋白;并以ZNF580 蛋白作为抗原成功制备了多克隆抗体。
附图说明
图1为ZNF580融合蛋白诱导表达SDS-PAGE电泳(1:阴性对照:非IPTG诱导表达;2: 阳性结果:IPTG诱导表达;3:MARKER:蛋白质标准)。
图2为不同诱导时间ZNF580融合蛋白表达SDS-PAGE电泳。(1:1.5h诱导表达结果; 2:2.5h诱导表达结果;3:3.5h诱导表达结果;4:MARKER:蛋白质标准)
图3为亲和层析纯化ZNF580融合蛋白SDS-PAGE电泳。(1:MARKER:蛋白质标准; 2:对沉淀进行亲和层析纯化;3:对上清进行亲和层析纯化;4:凝胶扩散法纯化ZNF580融 合蛋白)
图4为肠激酶作用后纯化的ZNF580蛋白SDS-PAGE电泳。1:MARKER:蛋白质标准; 2:纯化的ZNF580融合蛋白;3:肠激酶作用后凝胶扩散法纯化的ZNF580目的蛋白)
图5为多克隆抗体Western blot分析。(ZNF580为目的蛋白;GAPDH为内参照蛋白)
具体实施方式
下面结合具体实施例对本发明作进一步的说明。本发明的实施例是为了使本领域的技术 人员能够更好地理解本发明,但并不对本发明作任何限制。
实施例1
以人ZNF580cDNA为依据,根据大肠杆菌对密码子的偏好性,并在确保表达蛋白质的 氨基酸序列不变的情况下,进行了密码子改造,获得了稀有密码子改造的人ZNF580基因, 是SEQ ID No.1所示。
实施例2
一、材料与方法
1.1材料
PCR试剂盒,琼脂糖凝胶DNA提取试剂盒,大肠杆菌BL21(DE3),T4DNA连接酶及 限制性内切酶等均购自大连宝生物工程有限公司。高纯度质粒小提试剂盒及肠激酶购自 TIANGEN BIOTECH,His·band蛋白纯化试剂盒购自德国Novagen公司。
1.2方法
1.2.1构建表达质粒
根据所应用表达质粒pET30a的特性,设计相应的肠激酶序列及限制性内切酶位点,由 上海生工生物技术服务有限公司进行全序列合成并连接到质粒pET30a中,命名为 pET30a-ZNF580。成功地构建了原核表达载体pET30a-ZNF580。
1.2.2表达目的蛋白
1.2.2.1大肠杆菌BL21(DE3)感受态的制备
取5ml大肠杆菌BL21于5ml离心管中,冰浴10min。在4℃于4000g离心10min,弃 尽上清。加入0.1M的冰冷CaCl2水溶液0.5ml重悬菌体。冰浴20min,在4℃以4000g离 心10min,弃尽上清。加入0.1M的冰冷CaCl2水溶液0.2ml重悬菌体。于4℃放置16h备用。
1.2.2.2重组质粒转化大肠杆菌BL21
取10μl重组质粒pET30a-ZNF580加入200μl大肠杆菌BL21(DE3)感受态中,轻轻混 匀,冰浴30min,42℃热休克90s,再冰浴90s,加入37℃预热的不含卡那霉素的LB液体 培养基800μl,37℃200rpm振荡培养1h,取200μl培养液均匀涂在含卡那霉素的LB固体 培养基上,凉干后37℃倒置培养16h,结果出现抗性菌落。
1.2.2.3重组质粒的酶切鉴定
将长出的菌落分别接种于含卡那霉素的LB液体培养基中。在37℃140rpm振荡过夜。 在作好标记的每个试管中取5ml菌液提质粒(按照高纯度质粒小提试剂盒操作进行)。
用限制性内切酶Nco I和Xho I双酶切鉴定,酶切反应如下:在灭菌的0.5ml Eppendorf 管中加重组质粒DNA2μg,10×酶切缓冲液2μl,限制性内切酶Nco I和Xho I各1μl,最后 加水至总体积为20μl,在37℃保温6h。酶切产物经1%琼脂糖凝胶电泳鉴定,结果发现酶切 片段与预期的片段长度大小一致,表明重组质粒转化到大肠杆菌BL21中。
1.2.2.4IPTG诱导表达
1.2.2.4.1从含有pET30a空质粒的阴性单菌落的平板上和步骤1.2.2.2获得的固体培养基 上分别挑取含有pET30a空质粒的阴性单菌落和含重组质粒pET30a-ZNF580的阳性单菌落,, 分别接种于6ml含卡那霉素的LB液体培养基中,于37℃200rpm振荡培养过夜。
1.2.2.4.2分别将400μl含有重组质粒pET30a-ZNF580的菌液和含有pET30a空质粒的菌 液接种于4ml含卡那霉素的LB液体培养基中,于37℃200rpm振荡培养至OD600为0.96, 加入异丙基硫代半乳糖苷(IPTG)至终浓度为1mM,继续于30℃200rpm振荡3h,每隔 30min收集含有pET30a-ZNF580的菌液0.5ml,观察随时间变化的表达情况,离心收集沉淀。
1.2.2.5SDS-PAGE电泳鉴定表达产物
取2.5ml的步骤1.2.2.4.1获得的含重组质粒pET30a-ZNF580的菌液,接种于250ml的 含卡那霉素的LB液体培养基中,于37℃200rpm振荡培养至OD600为0.96,加入IPTG至 终浓度为1mM,继续于30℃200rpm振荡3h,10000g离心10min收集菌体,加入5ml结 合缓冲液,超声破碎菌体(300W,每次10s,间歇20s,共20次),14000g离心20min。取 上清和沉淀做SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳,发现预期表达产物存在于上清中。预期表达的蛋白分 子量约为24.3kDa,经电泳可见24.3kDa处有明显的新生区带,表明成功表达了ZNF580融合 蛋白(如图1)。于30℃200rpm振荡3.5h,分别在1.5h、2.5h和3.5h收集含有pET30a-ZNF580 的菌液0.5ml,观察随时间变化的表达情况,结果表明诱导表达2.5h到3.5h,表达产物的量 达到高峰(如图2)
1.2.3分离纯化重组蛋白
1.2.3.1采用His·band蛋白纯化试剂盒纯化重组蛋白
首先将上清用0.45μm的滤膜过滤,随后按下述方法制备层析柱,并进行纯化:
①树脂的准备与平衡
进行柱层析纯化之前需要准备:5倍体积1×离子化缓冲液,13倍体积1×结合缓冲液,6 倍体积的1×漂洗缓冲液以及6倍体积的1×洗脱缓冲液。应用Novagen聚丙烯空色谱柱(货 号69673-3),空柱首先加几毫升灭菌的去离子水,用一只手指(戴手套)轻推柱的上部,浸 湿滤芯部分,使液体能正常流动。
②将HiS-Bind树脂轻柔颠倒彻底重悬树脂。用一个阔口吸头将2.5ml树脂悬液加入一 个准备好的空色谱柱中,待树脂在重力作用下自然沉降。
③当树脂沉降、保存液的液面降至树脂表面时,按以下顺序清洗、离子化和平衡色谱柱;
A:3倍体积灭菌去离子水
B:5倍体积1×离子化缓冲液
C:3倍体积1×结合缓冲液
④待结合缓冲液下降至层析介质表面,小心加入步骤1.2.2.5获得的上清。
⑤10倍床体积1×结合缓冲液洗
⑥6倍体积1×漂洗缓冲液洗
⑦1倍体积1×洗脱缓冲液洗脱结合蛋白。
洗脱液分段收集,1ml收集一管。首先采用PAGE和SDS-PAGE进行电泳,观察蛋白分 离情况,结果表明蛋白被纯化,然后对每管蛋白液进行定量测定,得出每管的蛋白(融合蛋 白)浓度值,进行SDS-PAGE电泳,从凝胶中切下所需目的条带,可见ZNF580融合蛋白被纯 化(如图3)。
1.2.3.2制备纯化的ZNF580蛋白
取融合蛋白1.5mg/ml加入10×缓冲液10μl,加入重组肠激酶3U,于23℃作用10h,进 行SDS-PAGE电泳,电泳后,将凝胶条带冷冻后研碎,放入制备好的磷酸盐缓冲液100ml中, 密封静置48h,4000rpm离心后,取上清冷冻,经真空干燥重新溶于缓冲液中,利用BCA 法进行蛋白测定,结果蛋白浓度为1.2046mg/ml。蛋白纯化后做SDS-PAGE,可见ZNF580 蛋白被纯化(如图4),纯化的蛋白分子量与预期的18.7564kDa相一致。
实施例3
一、制备多克隆抗体方法
1.1抗原准备
将实施例2获得的纯化的ZNF580蛋白,用pH=7.4的0.01M PBS将其稀释到0.5mg/ml。 抗原乳化采用双注射器互推法。
1.2免疫程序
取4只新西兰兔,其中2只作为对照组,对照组用灭菌的三蒸水(使用量与实验组的体 积相同),按下述实验组相同的免疫程序进行免疫。
1)取1ml纯化的ZNF580蛋白(0.5mg/ml),加入等体积弗氏完全佐剂乳化后,新西兰 兔背部皮下多点注射;
2)经一个月第二次免疫,取1ml纯化的ZNF580蛋白(0.5mg/ml),加入等体积弗氏不 完全佐剂乳化后,新西兰兔背部皮下多点注射;
3)第二次免疫后的第10天进行第三次免疫,取1ml纯化的ZNF580蛋白(0.5mg/ml), 加入等体积弗氏不完全佐剂乳化后,新西兰兔背部皮下多点注射;
4)第三次免疫后的第10天进行第四次免疫,取1ml纯化的ZNF580蛋白(0.5mg/ml), 加入等体积弗氏不完全佐剂乳化后,新西兰兔背部皮下多点注射;
5)第四次免疫后1个月进行冲击免疫,取2ml纯化的ZNF580蛋白(0.5mg/ml),新西 兰兔腹腔注射;
6)冲击免疫后的第3天,兔耳静脉采血液2ml,室温凝固后,分离血清,用琼脂扩散法 测定多抗滴度。
7)冲击免疫后的第4天,新西兰兔颈动脉放血,收集血液,4℃放置过夜,待血块收缩 后分离血清,分装保存。
1.3抗ZNF580多抗效价测定
多抗用ELSIA法测定效价
l)包被酶标板:用包被液稀释纯化的ZNF580蛋白至0.025μg/ml,100μl/孔,4℃过夜。
2)封闭:次日用PBST洗涤液洗涤2次,每次2min,之后用10%小牛血清封闭液封闭酶 标板,37℃水浴l h,PBST洗涤液洗涤。
3)加样:加入稀释过的多抗100μl/孔(稀释倍数见表1,多抗为本实施例步骤1.2中的7) 获得的血清),37℃水浴2h,PBST洗涤液洗涤。
4)加二抗:加入1:4000的山羊抗兔IgG-HRP,37℃水浴45min,PBST洗涤液洗涤。
5)底物:分别加入显色液A和显色液B各50μl,37℃水浴15min。
6)终止:加入终止液100μl,酶标仪450nm读数。
二、结果
多克隆抗体效价的测定
纯化后的抗ZNF580蛋白的多抗用0.025μg/ml ZNF580蛋白包被的酶标板测定多克隆抗 体的效价,用不同稀释倍数的抗ZNF580蛋白的多抗作为一抗,山羊抗兔HRP/IgG为二抗得 结果如下,抗体效价在1/16000。
表1多克隆抗体效价的测定
多克隆抗体特异性的测定
经Western blot分析,结果发现,对照组家兔血清中不存在抗ZNF580蛋白的抗体,实验 组家兔血清进行Western blot分析,在18kDa附近出现条带如图5,说明多克隆抗体具有很 好的特异性,本实验成功制备了兔抗ZNF580蛋白的多克隆抗体。
机译: 原核表达基因改造抗体的激活
机译: 原核表达基因改造抗体的激活
机译: 编码嵌合受体亚基igalfa B细胞的转基因构建体;从含有所述constRucto的非人转基因动物中分离的人或人源化免疫球蛋白及其生产方法; b细胞分离