脂多糖通过Galectin-9/?Tim-3信号通路调控小鼠巨噬细胞M1/M2表型极化

摘要

目的探讨半乳糖凝集素- 9/?T细胞免疫球蛋白黏蛋白-3（Galectin-9/?Tim-3）信号通路在脂多糖（LPS）诱导小鼠巨噬细胞M1/M2表型极化中的意义及分子机制。方法体外培养小鼠腹腔巨噬细胞RAW264.7,待细胞生长至80%～90%时用于实验。①将细胞以无血清DMEM培养基培养,并分别以0（空白对照）、0.01、0.1、1、10、100 mg/L的LPS刺激24 h。采用荧光定量反转录-聚合酶链反应（RT-qPCR）或蛋白质免疫印迹试验（Western Blot）检测巨噬细胞M1型标志物白细胞介素- 6（IL-6）、诱导型一氧化氮合酶（iNOS）和M2型标志物精氨酸酶-1（Arg-1）、白细胞分化抗原206（CD206）以及细胞内Tim-3、Galectin-9的表达。②另取小鼠腹腔巨噬细胞,并分为空白对照组（用无血清DMEM培养基培养24 h）、LPS处理组（用含0.1 mg/L的LPS无血清DMEM刺激24 h）和α-乳糖预处理组（在LPS刺激前1 h用含40 μmol/L Galectin-9信号拮抗剂α-乳糖的无血清DMEM进行预处理）,通过封闭Galectin-9信号以验证Galectin-9在巨噬细胞M1/M2表型极化中的作用。结果①低浓度LPS（0.01 mg/L、0.1 mg/L）刺激24 h后,巨噬细胞M1型标志物的表达仅轻度上调（iNOS mRNA）或无明显变化（IL-6 mRNA）;而M2型标志物Arg-1 mRNA和CD206 mRNA表达则明显升高,并分别于0.1 mg/L和0.01 mg/L的LPS浓度下达到峰值〔与空白对照组比较:Arg-1 mRNA（2-ΔΔCt）为1.85±0.07比1.00±0.02,CD206 mRNA（2-ΔΔCt）为2.03±0.11比1.00±0.05,均P＆0.01〕;随LPS浓度升高,IL-6 mRNA和iNOS mRNA表达持续升高,而Arg-1 mRNA和CD206 mRNA表达则逐渐降低,巨噬细胞M1/M2表型极化状态发生改变。同时,经LPS刺激后,巨噬细胞内Tim-3蛋白表达在0.01 mg/L的LPS刺激后即较空白对照组明显上调（Tim-3/GAPDH:0.84±0.04比0.69±0.02,P＆0.01）,并在0.1 mg/L浓度下达峰值,之后随LPS浓度升高而逐渐下降;细胞内Galectin-9及上清中分泌型Galectin-9（s-Galectin-9）蛋白表达在低浓度LPS（0.01 mg/L、0.1 mg/L）刺激后无明显变化,之后随LPS浓度升高而逐渐降低。②与空白对照组相比,LPS处理组M1型标志物iNOS和M2型标志物Arg-1、CD206的mRNA表达均明显升高,而IL-6 mRNA表达无明显变化。使用α-乳糖预处理后,IL-6 mRNA和iNOS mRNA表达较LPS处理组进一步升高〔IL-6 mRNA（2-ΔΔCt）:1.44±0.02比1.14±0.11,iNOS mRNA（2-ΔΔCt）:2.45±0.04比2.01±0.08,均P＆0.01〕,而Arg-1 mRNA和CD206 mRNA表达明显下降〔Arg-1 mRNA（2-ΔΔCt）:0.75±0.01比1.85±0.02,CD206 mRNA（2-ΔΔCt）:0.58±0.02比2.03±0.14,均P＆0.01〕。同时,Galectin-9信号封闭也可减少Galectin-9胞外分泌〔与LPS处理组比较:s-Galectin-9/GAPDH为0.10±0.01比0.23±0.02,P＆0.01〕,下调胞内Tim-3和Galectin-9的蛋白表达（Tim-3/GAPDH:0.28±0.01比0.43±0.01,Galectin-9/GAPDH:0.21±0.01比0.43±0.01,均P＆0.01）。结论 LPS通过Galectin-9/?Tim-3信号通路调控巨噬细胞M1/M2表型极化,低浓度LPS可通过调节Galectin-9表达及分泌使巨噬细胞向M2表型极化,从而限制炎症发展;高浓度LPS通过下调Galectin-9的表达和分泌使巨噬细胞向M1表型极化,从而促进炎症发展。