声明
摘要
第一章 绪论
1.1 ARC6和PDV2:叶绿体分裂装置的重要元件
1.1.1 本课题的研究意义
1.1.2 本课题的研究现状
1.2 重组蛋白纯化方法
1.2.1 亲和层析
1.2.2 亲和标签
1.2.3 凝胶过滤层析
1.3 蛋白晶体学
1.3.1 蛋白生长的原理
1.3.2 蛋白晶体的优化
第二章 ARC6和PDV2克隆的构建
2.1 简介
2.2 实验材料
2.2.1 质粒和菌株
2.2.2 主要试剂
2.2.3 培养基
2.2.4 主要仪器
2.3 构建克隆pETDuet-ARC6-PDV2
2.3.1 聚合酶链式反应扩增PDV2和ARC6基因
2.3.2 目的基因和载体的双酶切
2.3.3 连接
2.3.4 转化
2.3.5 重组子pETDuet-PDV2、pGEX6p-1-PDV2的鉴定
2.3.6 构建克隆pETDuet-ARC6-PDV2
2.4 构建关于PDV2的克隆
2.4.1 构建克隆pET28a-PDV2,pGEX6p-1-PDV2
2.4.2 构建克隆pET28a-sumo-PDV2
2.5 构建关于ARC6(76-618aa)的克隆
2.6 实验结果
2.7 小结
第三章 ARC6(646-801aa)和PDV2的表达与纯化
3.1 简介
3.2 实验材料
3.2.1 菌种
3.2.2 主要试剂
3.2.3 培养基
3.2.4 主要仪器
3.3 目的蛋白的表达与鉴定
3.3.1 目的蛋白的小量诱导表达
3.3.2 目的蛋白的试表达与纯化
3.3.3 亲和层析纯化方法
3.3.4 凝胶层析
3.3.5 亲和层析柱的处理
3.4 实验结果与讨论
3.4.1 小量诱导表达pETDuet-ARC6-PDV2
3.4.2 试表达pET28a-PDV2(236-307aa)
3.4.3 试表达pET28a-sumo-PDV2(236-307aa)
3.4.4 试表达pGEX6p-1-PDV2(236-307aa)
3.4.5 提高pGEX6p-1-PDV2(236-307aa)里目的蛋白的表达量
3.4.6 ARC6(646-801aa)和PDV2复合物的获得
3.5 小结
第四章 目的蛋白的结晶以及晶体衍射
4.1 简介
4.2 实验材料
4.2.1 主要试剂和材料
4.2.2 主要仪器
4.3 晶体优化方法
4.4 实验结果与讨论
4.4.1 晶体的发现与优化
4.4.2 Native晶体的获得
4.4.3 硒代晶体的获得
4.5 小结
第五章 ARC6(646-801aa)与PDV2(280-307aa)的共结晶
5.1 简介
5.2 实验材料
5.3 关于获得晶体复合物的一些实验
5.3.1 尝试获得ARC6(674-801aa)和PDV2(236-307aa)的复合物
5.3.2 GST-pull down
5.4 实验结果与讨论
5.4.1 ARC6(674-801aa)和PDV2(236-307aa)的复合物
5.4.2 GST-pull down的实验结果
5.4.3 ARC6(646-801aa)与PDV2(280-307aa)的共结晶
5.5 小结
第六章 ARC6(76-618aa)的纯化与结晶
6.1 简介
6.2 实验材料
6.3 实验结果与讨论
6.4 小结
第七章 结论与建议
参考文献
附录
致谢
作者和导师简介
北京化工大学;