声明
缩略语表（Abbreviation）
第 1章 引言
1.1 前言
1.2 泰乐菌素概述
1.2.1 理化性质
1.2.2 药物作用机理
1.2.3 耐药性及最高残留限量
1.2.4 国内外检测概况
1.3 食源性致病菌概述
1.3.1 食源性致病菌的危害
1.3.2 食源性致病菌的检测方法研究进展
1.4 杂交链式反应概述
1.4.2 杂交链式反应应用
1.5 研究内容
1.6 研究目的及意义
第 2章 泰乐菌素单克隆抗体的制备及 HCR结合生物素-链霉亲和素信号放大检测方法建立
2.1 前言
2.2 材料与设备
2.2.1 试剂材料
2.2.2 仪器设备
2.2.3 缓冲液配制
2.3 实验方法
2.3.1 TYL 人工抗原合成
2.3.2 小鼠免疫及间接竞争 ELISA 方法监控小鼠血清效价
2.3.3 细胞融合筛选、腹水制备及抗体评价
2.3.4 寡核苷酸序列的设计
2.3.5 mAb-Au-SA 探针制备
2.3.6 生物素化引发链和发夹添加量优化
2.3.7 反应时间优化
2.3.8 HCR 结合生物素-链霉亲和素信号放大检测泰乐菌素
2.3.9 加标样本中检测泰乐菌素
2.4 结果与讨论
2.4.1 泰乐菌素人工抗原合成表征
2.4.2 传统 ELISA 方法检测 PBS中 TYL
2.4.3 寡核苷酸序列的模拟和验证
2.4.4 探针标记参数优化
2.4.5 生物素化引发链和发夹添加量的优化
2.4.6 反应时间优化
2.4.7 PBS 中检测泰乐菌素的灵敏度
2.4.8 特异性分析
2.4.9 加标样本中检测泰乐菌素
2.5 小结
第 3章 构建基于 HCR的荧光多色 ELISA 平台检测多重致病菌
3.1 前言
3.2材料与设备
3.2.1 试剂材料
3.2.2 仪器设备
3.3 实验方法
3.3.1 寡核苷酸序列的设计
3.3.2 寡核苷酸序列的可行性验证
3.3.3 mAb-Au-initiator 探针制备
3.3.4 发夹量与反应时间优化
3.3.5 基于 HCR 的荧光多色 ELISA 检测平台的构建
3.3.6 PBS 中检测多重致病菌
3.3.7 特异性分析
3.3.8 牛奶加标样中检测多重致病菌
3.4 结果与讨论
3.4.1 寡核苷酸序列验证
3.4.2 探针的制备
3.4.3 发夹量与反应时间优化
3.4.4 基于 HCR 的荧光多色 ELISA 检测多重致病菌
3.4.5 PBS 中的检测灵敏度
3.4.6 方法学比较
3.4.7 特异性分析
3.4.8 牛奶加标样中的检测灵敏度
3.5 小结
第 4章 结论与展望
4.1 结论
4.1.2 构建基于 HCR 的荧光多色 ELISA 平台检测多重致病菌
4.2 展望
致 谢
参考文献
附录A试剂材料
附录B仪器设备
附录C实验菌株
个人介绍
获奖情况
攻读学位期间的研究成果
南昌大学;
